resistencia a insecticidas en tetranychus urticae
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Resistencia a insecticidas en Tetranychus urticae Koch (Acari: Tetranichydae)
Juan Felipe Peña Mojica
Daño e importancia económica de la plaga
• Es una plaga de amplia distribución mundial, asociada a un gran número de plantas hospedantes, como hortalizas, ornamentales, frutales y malezas, en las cuales causa daños de importancia económica (Regev y Cone 1980, Ferro y Southwick 1984, Bolland et al. 1998, Calvitti 2000).
• Estos alteran los procesos fisiológicos de las plantas como la fotosíntesis y la respiración, y afectan el crecimiento, la floración y la fructificación en las plantas que infestan (Hall y Ferree, 1975, citado por Monetti, 1999).
• El daño causado por este ácaro es producido en el sitio de alimentación al romper aquel la superficie de las hojas y destruir células del mesófilo (Tanigoshi y Davis 1978).
www.backyardnature.net/www.insectimages.org/browse/detail.cfm?imgnum=5443165www7.inra.fr/hyppz/IMAGES/7033197.jpg
www.apsnet.org/publications/apsnetfeatures/Pages/InsectandMites.aspx
Daño e importancia económica de la plaga
http://uspest.org/potato/tspotspmite.htmlhttp://www.agf.gov.bc.ca/cropprot/mites.htm
Ciclo de vida
Antecedentes de resistencia a insecticidas
• Insecticidas a los cuales la plaga es resistente Abamectin, acephate, acequinocyl, acrinathrin, aldicarb, amidithion, amitraz, azinphos-methyl, azobenzene, azocyclotin, benzoximate, BHC/cyclodienes - Unspecified In Literature, Bifenazate, bifenthrin, binapacryl, bromophos, bromopropylate, Carbamates, carbophenothion, chinomethionate, chlorbenside, chlordimeform, chlorfenapyr, Chlorfenson, chlorfensulfide, chlorobenzilate, chloropropylate, chlorpyrifos, clofentezine, cyenopyrafen, cyhexatin, DDT, deltamethrin, demeton, demeton-S-methyl, diazinon, Dicofol, dicrotophos, dienochlor, dimefox, dimethoate, disulfoton, EPN, ethion, ethoate-methyl, etoxazole, famphur, fenazaquin, fenbutatin oxide, fenpropathrin, fenpyroximate, Fluacrypyrim, flucycloxuron, formetanate, formothion, hexythiazox, hexythiazox + organotin, malathion, mephosfolan, methamidophos, methidathion, methomyl, mevinphos, Milbemectin, monocrotophos, naled, omethoate, Organophosphates, parathion, parathion-methyl, permethrin, phenkapton, phenthoate, phorate, Phosalone, phosmet, phosphamidon, pirimiphos-methyl, profenofos, propargite, Prothoate, pyridaben, selenium sulfide, spirodiclofen, spiromesifen, spirotetramat, sulfotep, tau-fluvalinate, tebufenpyrad, TEPP, tetradifon, thiometon, trichlorfon, Vamidothion
Antecedentes de resistencia a insecticidas
• Número de casos reportados: 138.
• Lugares donde se han reportado los casos de resistencia:
Argentina, Australia, Austria, Belgium, Brazil, Bulgaria, Canada, Chile, Czechoslovakia, Denmark, Egypt, Finland, France, Germany, Greece, Iran, Israel, Italy, Japan, Korea, Lebanon, Netherlands, New Zealand, Norway, Poland, South Africa, Sweden, Switzerland, Taiwan, Turkey, United Kingdom, USA, USSR, Venezuela, Zimbabwe.
Panonychus ulmi Panonychus citri
http://www.magrama.gob.es/ministerio/pags/Biblioteca/Revistas/pdf_plagas%2FBSVP-07-01-065-077.pdfhttp://www3.syngenta.com/country/es/sp/cultivos/citricos/plagas/Paginas/acaros.aspx
Materiales
• Discos de Petri (9 cm de diámetro).• Algodón absorbente.• Hojas sin tratar (Tetranychus spp. (Frijol Kindey); para P. ulmi (manzana o
ciruela); para P. citri (Citrus aurantium o Citrus sinensis), • Tijeras.• Pinzas.• Pinceles.• Vasos o frascos de vidrio (250 ml ) para líquidos de prueba. • Agral o agente humectante similar.• Microscopio.• Equipos para preparar soluciones estándar .• Termómetro.
Recolección ácaros
adultos en campo.
Mínimo 10 por hoja
Corregir para la mortalidad
sin tratamiento
con la fórmula de Abbott’s
Recolección de hojas no tratadas de manzano y
ciruelo
Preparar la prueba de
líquidos
Agitar la prueba de líquidos y sumergir
hojas individuales
por 5 s
Colocar la hoja tratada
sobre algodón húmedo
Colocar capa de algodón
sobre la caja de Petri.
Añadir agua
Mínimo 5 repeticiones
por trat
Cortar tiras de algodón
de 1 cm, colocar en la perisferia de
la hoja
Evaluar la mortalidad después de 72 ó 96 h
Pruebas a 21 °C, 65-90%
de humedad relativa y sin exponer a luz
directa
Colocar 10 ácaros adulto hembra en la superficie de
cada hoja tratada
Resultados se
expresarán como
porcentaje de
mortalidad
Estudio de caso
• Abamectina (Kraft 36 EC) (sistémico local y translaminar).
• Bifenthrin (Talstar CE) (PIRETROIDE) (Contacto).
• Carbosulfan (Marshal 400 SC) (Sistémico).
Acaricidas evaluados
http://www.adapar.pr.gov.br/arquivos/File/defis/DFI/Bulas/Inseticidas/KRAFT_36_EC.pdfhttp://www.fmcagroquimica.com.mx/sites/default/files/downloads/Talstar100CEN232.pdf
Materiales y métodos
1. Monitoreo de la toxicidad de abamectina a T. urticae en dos viñedosObtención y mantenimiento de las poblaciones de T. urticae
• 2 propiedades del Municipio de Petrolina, estado de Pernambuco, con antecedentes de fracaso utilizando abamectina.
• Las muestras se obtuvieron de julio 2011 a septiembre 2013, con dos o tres intervalos mensuales entre colectas.
• Las muestras de hojas fueron trasladados al Laboratorio de Acarología del Federal Universidad Rural de Pernambuco.
• En el laboratorio, los ácaros se transfirieron a plantas de Canavalia ensiformis L. se mantuvieron a 25 C ± 1 C T y HR 85 ± 10 % con un fotoperiodo de 12 h.
Materiales y métodos
Bioensayo Abamectina
• Método N 4 (IRAC, 2009).
• Los datos de mortalidad se sometieron al análisis Probit (Finney, 1971). Se corrección con la mortalidad control (Abbott, 1925).
• Las relaciones de resistencia (RR50) se calcularon usando el método descrito por Robertson y Preisler (1992).
Materiales y métodos
2. Monitoreo de la resistencia a abamectina en T. urticae en poblaciones de la zona del Valle
Obtención y el mantenimiento de las poblaciones de T. urticae
• Hojas de vid se obtuvieron de 35 plantaciones comerciales en el Valle Bajo Medio Sao Francisco. Georeferenciados.
• Las muestras de hojas fueron transportados a la Embrapa.
• En el laboratorio, los ácaros se transfirieron a C. ensiformis y se mantuvieron a T 25 ° C ± 1 C y HR 85 ± 10% y 12 h de fotoperiodo.
• La población T. urticae susceptible se colecta de Gossypium hirsutum L.
Materiales y métodos
• Las concentraciones de diagnóstico de la abamectina fueron de 1 mg/L y 9 mg/L se usaron para CL50 yCL95.
• Método N 4 (IRAC, 2009).
• Cada bioensayo correspondió una población con tres tratamientos; de dos correspondieron a las concentraciones de diagnóstico (1 mg / L y 9 mg / l) y otra correspondieron con agua destilada (control).
• La población que tenía menos de 80% de mortalidad cuando se expone a la concentración de diagnóstico abamectina 9 mg/L se consideró resistente a este acaricida.
Bioensayo
Materiales y métodos
Bioensayos de toxicidad de bifentrina y carbosulfán a T. urticae resistentes a la abamectina
• Para las poblaciones consideradas resistentes a la abamectina (mortalidad <80% en el la concentración de diagnóstico 9 mg/L).
• Las pruebas de toxicidad se realizaron de acuerdo con el Método No 4.
• Una correlación se llevó a cabo entre los LC50s y LC95s de bifentrina y abamectina para cada población resistente a ambos acaricidas utilizando el Procedimiento PROC CORR en el programa SAS (SAS Institute, 2002; Cary, EE.UU.).
Materiales y métodos
Resultados
Table 1. Abamectin toxicity over time for two T. urticae populations collected in grapevines of the Lower Middle Sao Francisco Valley from July 2011 to September 2013.
1. Monitoreo de la toxicidad abamectina a T. urticae en el tiempo en dos viñedos.
1.79 - 15.55 mg/L
2.90 - 21.91 mg/L
Fig 1. Locations of collections of T. urticae populations in grapevine plantations in the Lower Middle Sao Francisco Valley. Vineyards monitored over time (represented by black circle); vineyards with populations considered resistant (represented by white circle); vineyards with populations considered susceptible to (represented by gray circle) and vineyards with no T. urticae populations (represented by circle with x).
2. Monitoreo de la resistencia de T. urticae a abametina en dos viñedos.
Resultados
Resultados
Fig. 2. Percentage mortality of T. urticae populations collected in vineyards of the Lower Middle Sao Francisco Valley subjected to diagnostic concentrations of ~ abamectin 1.0 mg/L (black bar) and 9.0 mg/L (gray bar).
2. Monitoreo de la resistencia de T. urticae a abametina en el tiempo, en dos viñedos.
1.0 mg/L -50%+50%
-80%+80%
9.0 mg/L
Resultados
Table 2. Abamectin toxicity for T. urticae populations considered resistant in the Lower Middle Sao Francisco Valley.
2. Monitoreo de la resistencia de T. urticae a abametina en el tiempo, en dos viñedos.
3. Bioensayos de toxicidad de bifentrina y carbosulfán a T. urticae resistentes a la abamectina
Resultados
Table 3. Toxicity of carbosulfan and bifenthrin to T. urticae populations of the Lower Middle Sao Francisco Valley considered resistant to abamectin.
Discusión
• Uso indiscriminado de abemectina en la región de estudio.
• De las 20 poblaciones estudiadas , 9 (45%) mostraron ser resistentes a la abamectina cuando se expone a la concentración de diagnóstico 9 mg/L.
• Las condiciones climáticas influyeron favorablemente en la biología de T. urticae. Es una región con altas temperaturas medias anuales y baja humedad relativa (da Silva et al., 2009).
• T. urticae puede desarrollar hasta 37 generaciones por años en estas condiciones climáticas (Riahi et al., 2013).
Discusión
• La población de T. urticae resistentes a la abamectina probados en este estudio también mostraron resistencia a la bifentrina.
• Probablemente, la resistencia a abamectina y bifentrina puede haber desarrollado simultáneamente en las poblaciones aquí evaluados.
• Entre los tres productos registrados para el control de T. urticae en vid en Brasil, carbosulfan fue el único producto para el cual el poblaciones analizadas no eran resistentes.
Bibliografía
• Bolland, HR; Gutiérrez J; Fletchmann CHW. 1998. World catalogue of the spider mite family (Acari: Tetranychidae). Koninklijke Brill NV, Leiden, NE. 392 p.
• Calvitti, M. 2000. Caratterizzazione biologica ed ecologica di due acari (Tetranychus urticae e Phytoseiulus persimilis) interagenti in alcuni ecosistemi agrari. Inn-Bioagr- Eco. Italia. 44 p.
• da Silva, P.C.G., Correia, R.C., Soares, J.M., 2009. Historico e importancia socioeconomica. In: Soares, J.M., Leao, P.C.S. (Eds.), A Vitivinicultura No Semiarido Brasileiro.
• Ferro, DN; Southwick, EE. 1984. Microclimates of small arthropods: Estimating humidity within the leaf boundary layer. Journal of Environmental Entomology 13:926-929.
• Monetti, L. 1999. Estudio de los atributos vitales de los ácaros fitoseidos y su aplicación al control biológico de plagas. Rev. Soc. Entomol. Argentina 58 (1-2), 48-57.
• Regev, S; Cone, WW. 1980. The monoterpene citronellol, as a male sex attractant of the twospotted spider mite, Tetranychus urticae (Acarina: Tetranychidae). Journal of Environmental Entomology 9:50-52.
• Riahi, E., Shishehbor, P., Nemati, A.R., Saeidi, Z., 2013. Temperature effects on development and life table parameters of Tetranychus urticae (Acari: Tetranychidae). J. Agr. Sci. Tech. 15, 661e672.
• Tanigoshi, LK; Davis, RW. 1978. An ultrastructural study of Tetranychus mcdanielli feeding injury to the leaves of red delicious apple (Acari: Tetranychidae). International Journal of Acarology 4:47-56.
GRACIAS…
• Densidades entre 10 y 50 ácaros por hoja de rosa causan una reducción del largo del tallo de la flor del 17% y 26%, respectivamente, cuando se comparan con plantas que no tienen presencia de ácaros fitófagos (Landeros et al., 2004).
• Wyman et al. (1979) indicaron que cuando las poblaciones alcanzaban 50 ácarosfolíolo-1 de fresa deben tomarse medidas de control.
IRAC Susceptibility Test Methods series, Method No. 003 (Huevos)
1. Corte secciones cuadrados aproximadamente 1.5 x 1.5 cm de apple no tratada químicamente u hojas de ciruelo. Uso de hojas jóvenes, pero no antes de que se expande completamente. Hojas deben estar en buenas condiciones. Utilizar un mínimo de cuatro repeticiones (secciones de hojas) por tratamiento.2. Coloque estas secciones, la superficie superior hacia arriba, sobre una hoja de papel de filtro humedecido en algodón húmedo en platos de Petri abierta.3. Recoger hojas de manzana con los ácaros del adulto y con el pincel punta fina o palillo de Cóctel transferencia de 10 – 15 hembras en cada sección de la hoja. Mantener a una temperatura mínima de 20° C, fotoperíodo mínimo 16 h y una alta intensidad de luz, pero no en luz sol directa.4. Después de 24 horas, compruebe que los ácaros femeninos han puesto huevos. Objetivo de al menos 20 huevos por sección de la hoja. Si no hay suficientes huevos, deja para un posterior 24 h. No deje más de 48 h.5. Cuando ha sido obtenido de un número suficiente huevo, quitar a los ácaros con el cepillo de punta fina o palillo de cóctel. Registrar la hora de esto.6. Preparar diluciones de prueba adecuada de las formulaciones en agua. No se recomienda el uso de un wetter.
IRAC Susceptibility Test Methods series, Method No. 003 (Huevos)
7. Agitar líquidos de prueba y luego sumergir las secciones de la hoja durante 5 segundos. Igual número de secciones de hoja de control de agua de la inmersión.8. Registrar el número de huevos por sección de la hoja.9.Retomar secciones hoja de placas de Petri y mantener en las condiciones descritas anteriormente. Registrar las temperaturas máximas y mínimas. Humedezca el algodón todos los días.10. Usando una lupa o microscopio binocular observar secciones de hoja diariamente hasta que se ha rayado completo (o casi completo) en el agua no tratada (sólo) las secciones de la hoja. Cifras récord de huevos no eclosionados en secciones de hoja tratados y no tratados.11. Resultados se expresarán como porcentaje de mortalidad y corregir para la mortalidad sin tratamiento con la fórmula de Abbott. Mortalidad sin tratamiento debe registrarse.