product code: ncl-l-igg

64
Leica Biosystems Newcastle Ltd Balliol Business Park West Benton Lane Newcastle Upon Tyne NE12 8EW United Kingdom ( +44 191 215 4242 EN IT ES PT DE FR NO TR BG HU RO RU EL DA SV PL SL CS NL Instructions for Use Please read before using this product. Mode d’emploi Á lire avant d’utiliser ce produit. Istruzioni per L’uso Si prega di leggere, prima di usare il prodotto. Gebrauchsanweisung Bitte vor der Verwendung dieses Produkts lesen. Instrucciones de Uso Por favor, leer antes de utilizar este producto. Instruções de Utilização Leia estas instruções antes de utilizar este produto. Instruktioner vid Användning Var god läs innan ni använder produkten. Οδηγίες Χρήσης Παρακαλούμε διαβάστε τις οδηγίες πριν χρησιμοποιήσετε το προϊόν αυτό. Brugsanvisning Læs venligst før produktet tages i brug. Gebruiksinstructies Lezen vóór gebruik van dit product. Bruksanvisning Vennligst les denne før du bruker produktet. Kullanım Talimatları Lütfen bu ürünü kullanmadan önce okuyunuz. Инструкции за употреба Моля, прочетете преди употреба на този продукт. Használati utasítás A termék használatba vétele előtt olvassa el. Instrucțiuni de utilizare Citiți aceste instrucțiuni înainte de a utiliza produsul. Инструкция по применению Прочтите перед применением этого продукта. Instrukcja obsługi Przed użyciem tego produktu należy przeczytać instrukcję. Navodila za uporabo Preberite pred uporabo tega izdelka. Návod k použití Čtěte před použitím tohoto výrobku. Návod na použitie Prosím, prečítajte si ho pred použitím produktov. Check the integrity of the packaging before use. Vérifier que le conditionnement est en bon état avant l’emploi. Prima dell’uso, controllare l’integrità della confezione. Vor dem Gebrauch die Verpackung auf Unversehrtheit überprüfen. Comprobar la integridad del envase, antes de usarlo. Verifique a integridade da embalagem antes de utilizar o produto. Kontrollera att paketet är obrutet innan användning. Ελέγξτε την ακεραιότητα της συσκευασίας πριν από τη χρήση. Kontroller, at pakken er ubeskadiget før brug. Controleer de verpakking vóór gebruik. Sjekk at pakningen er intakt før bruk. Kullanmadan önce ambalajın bozulmamış olmasını kontrol edin. Проверете целостта на опаковката преди употреба. Használat előtt ellenőrizze a csomagolás épségét. Verificați integritatea ambalajului înainte de a utiliza produsul. Перед применением убедитесь в целостности упаковки. Przed użyciem należy sprawdzić, czy opakowanie jest szczelne. Pred uporabo preverite celovitost embalaže. Před použitím zkontrolujte neporušenost obalu. Pre použitím skontrolujte, či balenie nie je porušené. www.LeicaBiosystems.com SK Only Novocastra Liquid Mouse Monoclonal Antibody Immunoglobulin G Product Code: NCL-L-IgG

Upload: others

Post on 02-Dec-2021

0 views

Category:

Documents


0 download

TRANSCRIPT

Leica Biosystems Newcastle LtdBalliol Business Park WestBenton LaneNewcastle Upon Tyne NE12 8EWUnited Kingdom ( +44 191 215 4242

EN IT ES PTDEFR

NO TR BG HU RO RU

EL DASV

PL SL CS

NL

Instructions for UsePlease read before using this product.

Mode d’emploiÁ lire avant d’utiliser ce produit.

Istruzioni per L’usoSi prega di leggere, prima di usare il prodotto.

GebrauchsanweisungBitte vor der Verwendung dieses Produkts lesen.

Instrucciones de UsoPor favor, leer antes de utilizar este producto.

Instruções de UtilizaçãoLeia estas instruções antes de utilizar este produto.

Instruktioner vid AnvändningVar god läs innan ni använder produkten.

Οδηγίες ΧρήσηςΠαρακαλούμε διαβάστε τις οδηγίες πριν χρησιμοποιήσετε το προϊόν αυτό.

BrugsanvisningLæs venligst før produktet tages i brug.

GebruiksinstructiesLezen vóór gebruik van dit product.

BruksanvisningVennligst les denne før du bruker produktet.

Kullanım TalimatlarıLütfen bu ürünü kullanmadan önce okuyunuz.

Инструкции за употребаМоля, прочетете преди употреба на този продукт.

Használati utasításA termék használatba vétele előtt olvassa el.

Instrucțiuni de utilizareCitiți aceste instrucțiuni înainte de a utiliza produsul.

Инструкция по применениюПрочтите перед применением этого продукта.

Instrukcja obsługiPrzed użyciem tego produktu należy przeczytać instrukcję.

Navodila za uporaboPreberite pred uporabo tega izdelka.

Návod k použitíČtěte před použitím tohoto výrobku.

Návod na použitieProsím, prečítajte si ho pred použitím produktov. Check the integrity of the packaging before use.Vérifier que le conditionnement est en bon état avant l’emploi.Prima dell’uso, controllare l’integrità della confezione.Vor dem Gebrauch die Verpackung auf Unversehrtheit überprüfen.Comprobar la integridad del envase, antes de usarlo.Verifique a integridade da embalagem antes de utilizar o produto.Kontrollera att paketet är obrutet innan användning.Ελέγξτε την ακεραιότητα της συσκευασίας πριν από τη χρήση.Kontroller, at pakken er ubeskadiget før brug.Controleer de verpakking vóór gebruik.Sjekk at pakningen er intakt før bruk.Kullanmadan önce ambalajın bozulmamış olmasını kontrol edin.Проверете целостта на опаковката преди употреба.Használat előtt ellenőrizze a csomagolás épségét.Verificați integritatea ambalajului înainte de a utiliza produsul.Перед применением убедитесь в целостности упаковки.Przed użyciem należy sprawdzić, czy opakowanie jest szczelne.Pred uporabo preverite celovitost embalaže.Před použitím zkontrolujte neporušenost obalu.Pre použitím skontrolujte, či balenie nie je porušené.

www.LeicaBiosystems.com

SK

Only

Novocastra Liquid Mouse Monoclonal AntibodyImmunoglobulin GProduct Code: NCL-L-IgG

IGG-L-CE Page 1

IGG-L-CE Page 2

Novocastra Liquid Mouse Monoclonal AntibodyImmunoglobulin GProduct Code: NCL-L-IgG

Intended UseFor in vitro diagnostic use. NCL-L-IgG is intended for the qualitative identification by light microscopy of human immunoglobulin G (IgG) molecules in paraffin sections. The clinical interpretation of any staining or its absence should be complemented by morphological studies using proper controls and should be evaluated within the context of the patient’s clinical history and other diagnostic tests by a qualified pathologist.

Principle of ProcedureImmunohistochemical (IHC) staining techniques allow for the visualization of antigens via the sequential application of a specific antibody to the antigen (primary antibody), a secondary antibody to the primary antibody and an enzyme complex with a chromogenic substrate with interposed washing steps. The enzymatic activation of the chromogen results in a visible reaction product at the antigen site. The specimen may then be counterstained and coverslipped. Results are interpreted using a light microscope and aid in the differential diagnosis of pathophysiological processes, which may or may not be associated with a particular antigen.

CloneRWP49

ImmunogenProkaryotic recombinant protein corresponding to 327 amino acids of the human IgG molecule.

SpecificityHuman IgG.

Reagent CompositionNCL-L-IgG is a liquid tissue culture supernatant containing 0.35 % ProClin™ 950 as a preservative.

Ig ClassIgG1

Total Protein ConcentrationRefer to vial label for lot specific total protein concentration.

Antibody ConcentrationGreater than or equal to 59 mg/L as determined by ELISA. Refer to vial label for lot specific Ig concentration.

Recommendations On UseImmunohistochemistry on paraffin sections. Heat Induced Epitope Retrieval (HIER): Please follow the instructions for use in Novocastra Epitope Retrieval Solution pH 6. Suggested dilution: 1:200 for 30 minutes at 25 °C. This is provided as a guide and users should determine their own optimal working dilutions. Visualization: Please follow the instructions for use in the Novolink Polymer Detection Systems. For further product information or support, contact your local distributor or regional office of Leica Biosystems, or alternatively, visit the Leica Biosystems Web site, www.LeicaBiosystems.com The performance of this antibody should be validated when utilized with other manual staining systems or automated platforms.

Storage and StabilityStore at 2–8 °C. Do not freeze. Return to 2–8 °C immediately after use. Do not use after expiration date indicated on the vial label. Storage conditions other than those specified above must be verified by the user.

Specimen PreparationThe recommended fixative is 10% neutral-buffered formalin for paraffin-embedded tissue sections.

Warnings and PrecautionsThis reagent has been prepared from the supernatant of cell culture. As it is a biological product, reasonable care should be taken when handling it.

The concentration of ProClin™ 950 is 0.35 %. It contains the active ingredient 2-methylisothiazol-3(2H)-one, and may cause irritation to the skin, eyes, mucous membranes and upper respiratory tract. Wear disposable gloves when handling reagents.Consult federal, state or local regulations for disposal of any potentially toxic components.Specimens, before and after fixation, and all materials exposed to them, should be handled as if capable of transmitting infection and disposed of with proper precautions.1 Never pipette reagents by mouth and avoid contacting the skin and mucous membranes with reagents and specimens. If reagents or specimens come in contact with sensitive areas, wash with copious amounts of water. Seek medical advice.Minimize microbial contamination of reagents or an increase in non-specific staining may occur.Incubation times or temperatures, other than those specified, may give erroneous results. Any such changes must be validated by the user.

Total Protein

IGG-L-CE Page 3

Quality ControlDifferences in tissue processing and technical procedures in the user’s laboratory may produce significant variability in results, necessitating regular performance of in-house controls in addition to the following procedures. Controls should be fresh autopsy/biopsy/surgical specimens, formalin-fixed, processed and paraffin wax-embedded as soon as possible in the same manner as the patient sample(s).

Positive Tissue ControlUsed to indicate correctly prepared tissues and proper staining techniques. One positive tissue control should be included for each set of test conditions in each staining run. A tissue with weak positive staining is more suitable than a tissue with strong positive staining for optimal quality control and to detect minor levels of reagent degradation.2

Recommended positive control tissue is tonsil. If the positive tissue control fails to demonstrate positive staining, results with the test specimens should be considered invalid.

Negative Tissue ControlShould be examined after the positive tissue control to verify the specificity of the labeling of the target antigen by the primary antibody. Recommended negative control tissue is parathyroid. Alternatively, the variety of different cell types present in most tissue sections frequently offers negative control sites, but this should be verified by the user. Non-specific staining, if present, usually has a diffuse appearance. Sporadic staining of connective tissue may also be observed in sections from excessively formalin-fixed tissues. Use intact cells for interpretation of staining results. Necrotic or degenerated cells often stain non-specifically.3 False-positive results may be seen due to non-immunological binding of proteins or substrate reaction products. They may also be caused by endogenous enzymes such as pseudoperoxidase (erythrocytes), endogenous peroxidase (cytochrome C), or endogenous biotin (eg. liver, breast, brain, kidney) depending on the type of immunostain used. To differentiate endogenous enzyme activity or non-specific binding of enzymes from specific immunoreactivity, additional patient tissues may be stained exclusively with substrate chromogen or enzyme complexes (avidin-biotin, streptavidin, labeled polymer) and substrate-chromogen, respectively. If specific staining occurs in the negative tissue control, results with the patient specimens should be considered invalid.

Negative Reagent ControlUse a non-specific negative reagent control in place of the primary antibody with a section of each patient specimen to evaluate non-specific staining and allow better interpretation of specific staining at the antigen site.

Patient TissueExamine patient specimens stained with NCL-L-IgG last. Positive staining intensity should be assessed within the context of any non-specific background staining of the negative reagent control. As with any immunohistochemical test, a negative result means that the antigen was not detected, not that the antigen was absent in the cells/tissue assayed. If necessary, use a panel of antibodies to identify false-negative reactions.

Results ExpectedNormal Tissues Clone RWP49 detected the IgG protein in the cytoplasm and on the membrane of plasma cells, B cells of the mantle zone and germinal centres. In addition, IgG protein was also detected in a variety of tissues including colon (epithelium), small bowel (epithelium), cerebellum (Perkinje cells, glial cells), kidney (tubules, glomeruli), adrenal (cortex, medulla), pancreas (acini, islets, ducts), lung (alveoli, bronchial epithelium), liver (hepatocytes), esophagus (epithelium), skin (epithelium), spleen (red pulp), ovary (stroma), cervix (epithelium), testis (tubules), prostate (acini), thymus, pituitary, tonsil (germinal centres, epithelium, plasma cells), bone marrow, appendix (mesothelium) and umbilical cord (mesothelium). (Total number of normal cases = 33).Abnormal Tissues Clone RWP49 stained 8/14 myelomas. 38/43 other hematological malignancies evaluated were positive (including 13/14 diffuse large B cell lymphomas, 5/6 peripheral T cell lymphomas, 4/6 follicular lymphomas, 5/5 Hodgkin’s lymphomas, 2/2 mantle cell lymphomas, 2/2 anaplastic large cell lymphomas, 1/2 MALTomas, 1/1 Burkitt’s lymphomas, 1/1 marginal zone lymphomas, 1/1 angioimmunoblastic lymphomas, 1/1 NK/T cell lymphomas, 1/1 T cell rich B cell lymphomas and 1/1 lymphoblastic lymphomas). Except for infiltrating lymphocytes, the IgG protein was also detected in 31/41 non-lymphoid malignancies (including 9/10 squamous cell carcinomas, 4/4 liver tumors, 3/4 ovarian tumors, 3/3 colorectal tumors, 2/2 stomach tumors, 2/2 pancreatic tumors, 2/2 kidney tumors, 2/2 prostate tumors, 2/2 lung tumors, 1/2 breast tumors, and 1/2 lymph node metastatic carcinomas). No staining was detected in thyroid tumors (0/4) and brain tumors (0/2). (Total number of abnormal cases = 98).NCL-L-IgG is recommended for the detection of IgG antigen in normal and neoplastic tissues, as an adjunct to conventional histopathology using non-immunologic histochemical stains.

General LimitationsImmunohistochemistry is a multistep diagnostic process that consists of specialized training in the selection of the appropriate reagents; tissue selection, fixation, and processing; preparation of the IHC slide; and interpretation of the staining results. Tissue staining is dependent on the handling and processing of the tissue prior to staining. Improper fixation, freezing, thawing, washing, drying, heating, sectioning or contamination with other tissues or fluids may produce artifacts, antibody trapping, or false negative results. Inconsistent results may be due to variations in fixation and embedding methods, or to inherent irregularities within the tissue.4 Excessive or incomplete counterstaining may compromise proper interpretation of results. The clinical interpretation of any staining or its absence should be complemented by morphological studies using proper controls and should be evaluated within the context of the patient’s clinical history and other diagnostic tests by a qualified pathologist. Antibodies from Leica Biosystems Newcastle Ltd are for use, as indicated, on either frozen or paraffin-embedded sections with specific fixation requirements. Unexpected antigen expression may occur, especially in neoplasms. The clinical interpretation of any stained tissue section must include morphological analysis and the evaluation of appropriate controls.

IGG-L-CE Page 4

Bibliography - General1. National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS). Protection of laboratory workers from infectious diseases

transmitted by blood and tissue; proposed guideline. Villanova, P.A. 1991; 7(9). Order code M29-P.2. Battifora H. Diagnostic uses of antibodies to keratins: a review and immunohistochemical comparison of seven monoclonal and

three polyclonal antibodies. Progress in Surgical Pathology. 6:1–15. eds. Fenoglio-Preiser C, Wolff CM, Rilke F. Field & Wood, Inc., Philadelphia.

3. Nadji M, Morales AR. Immunoperoxidase, part I: the techniques and pitfalls. Laboratory Medicine. 1983; 14:767.4. Omata M, Liew CT, Ashcavai M, Peters RL. Nonimmunologic binding of horseradish peroxidase to hepatitis B surface antigen: a

possible source of error in immunohistochemistry. American Journal of Clinical Pathology. 1980; 73:626.5. Karamchandani JR, Younes SF, Warnke RA. IgG4-related systemic sclerosing disease of the ocular adnexa. American Journal of

Clinical Pathology. 2012; 137: 699-711.6. Janeway C, Travers P, Walport M et al. Immunobiology: The immune system in health and disease. Chapter 3. Garland Science. New

York and London. 2001.7. Fridman W. Fc receptors and immunoglobulin binding factors. FASEB Journal. 1991; 5: 2684-2690.

Amendments to Previous IssueReagent Composition, Antibody Concentration, Recommendations On Use, Warnings and Precautions.

Date of Issue12 December 2019

IGG-L-CE Page 5

Anticorps monoclonal de souris liquide Novocastra Immunoglobulin GRéférence du Produit: NCL-L-IgG

Utilisation PrévueDiagnostic in vitro.Le NCL-L-IgG est destiné à l’identification qualitative par microscopie optique des molécules de l’immunoglobuline G (IgG) humaine sur coupes en paraffine. L’interprétation clinique de tout marquage, ou absence de marquage, doit être complétée par des études morphologiques utilisant des contrôles appropriés et doit être évaluée par un pathologiste qualifié à la lumière des antécédents cliniques du patient et d’autres analyses diagnostiques.

Principe de la ProcédureLes techniques de marquage immunohistochimique (IHC) permettent la visualisation des antigènes via l’application séquentielle d’un anticorps spécifique sur un antigène (anticorps primaire), d’un anticorps secondaire sur l’anticorps primaire et d’un complexe enzymatique comportant un substrat chromogène, avec des étapes de lavage intercalées. L’activation enzymatique du chromogène se traduit par la présence d’un produit de réaction visible au niveau du site de l’antigène. Le spécimen peut ensuite faire l’objet d’une coloration de contraste et être placé sous une lamelle. Les résultats sont interprétés à l’aide d’un microscope optique et participent au diagnostic différentiel des processus physiopathologiques, susceptibles, ou non, d’être associés à un antigène particulier.

CloneRWP49

ImmunogèneProtéine recombinante procaryotique correspondant à 327 acides aminés de la molécule IgG humaine.

SpécificitéIgG humaine.

Composition du RéactifLe NCL-L-IgG est un surnageant de culture tissulaire liquide contenant un conservateur constitué du ProClin™ 950 à 0,35 % comme.

Classe d’IgIgG1

Concentration Totale en ProtéinesLa concentration totale en protéines, spécifique du lot, figure sur l’étiquette du flacon.

Concentration en AnticorpsSupérieur ou égal à 59 mg/l tel que déterminé par ELISA. La concentration totale en Ig, spécifique du lot, figure sur l’étiquette du flacon.

Recommandations d’utilisationImmunohistochimie sur coupes en paraffine. Récupération des épitopes induite par la chaleur (HIER, Heat Induced Epitope Retrieval) : Veuillez respecter le mode d’emploi de la Novocastra Epitope Retrieval Solution pH 6. Dilution préconisée: 1:200 durant 30 minutes à 25 °C. Ceci n’est donné qu’à titre indicatif et les utilisateurs doivent déterminer leurs propres dilutions de travail optimales. Visualisation: Veuillez respecter le mode d’emploi des Novolink Polymer Detection Systems. Pour plus d’informations sur le produit ou pour toute assistance, contactez votre représentant local ou le bureau régional de Leica Biosystems, ou sinon rendez vous sur le site www.LeicaBiosystems.com de Leica Biosystems. Les performances de cet anticorps devront être validées lorsqu’il est utilisé avec d’autres systèmes de coloration manuels ou plates-formes automatisées.

Conservation et StabilitéConserver à 2 °C – 8 °C. Ne pas congeler. Remettre immédiatement à 2 °C – 8 °C après utilisation. Ne pas utiliser après la date de péremption indiquée sur l’étiquette du récipient. Les conditions de conservation autres que celles qui sont spécifiées ci-dessus doivent faire l’objet d’une vérification par l’utilisateur.

Préparation des SpécimensLe fixateur recommandé est le formol à 10 %, tamponné, neutre, pour coupes tissulaires incluses en paraffine.

Mises en Garde et PrécautionsCe réactif a été préparé à partir du surnageant d’une culture cellulaire. Du fait de sa nature de produit biologique, sa manipulation doit faire l’objet du plus grand soin.La concentration de ProClin™ 950 est de 0,35 %. Contient du 2-méthylisothiazol-3(2H)-one (principe actif) et peut entraîner des irritations de la peau, des yeux, des muqueuses et des voies aériennes supérieures. Porter des gants jetables lors de la manipulation des réactifs.Consulter les réglementations nationales, régionales ou locales en vigueur relatives à l’élimination de tous les éléments potentiellement toxiques.

Total Protein

IGG-L-CE Page 6

Les spécimens, avant et après fixation, ainsi que toutes les matières ayant été en contact avec eux, doivent être manipulés comme s’ils étaient susceptibles de transmettre une infection et être éliminés en respectant les précautions appropriées.1 Ne jamais pipeter les réactifs avec la bouche et éviter tout contact des réactifs et des spécimens avec la peau et les membranes muqueuses. Rincer avec de grandes quantités d’eau en cas de contact des réactifs ou des spécimens avec des zones sensibles. Consulter un médecin.Minimiser la contamination microbienne des réactifs sinon un accroissement du marquage non spécifique est susceptible de se produire.Des durées et des températures d’incubation différentes de celles qui ont été spécifiées sont susceptibles de conduire à des résultats erronés. Toutes les modifications doivent être validées par l’utilisateur.

Contrôle de QualitéDes différences de traitement des tissus et de procédures techniques du laboratoire de l’utilisateur sont susceptibles de conduire à une variabilité significative des résultats, ce qui rend nécessaire la mise en œuvre de contrôles en interne en plus des procédures suivantes. Les contrôles doivent être des spécimens frais provenant d’autopsies, de biopsies ou d’interventions chirurgicales, fixés au formol, traités et inclus en cire de paraffine dès que possible, de la même façon que le(s) échantillon(s) de patient.

Tissu de Contrôle PositifIl est utilisé pour indiquer que les tissus ont été préparés correctement et que les techniques de marquage étaient appropriées.Un contrôle tissulaire positif doit être inclus dans toute opération de marquage pour chaque ensemble de conditions d’analyse.Un tissu présentant un marquage faiblement positif est plus adapté à un contrôle de qualité optimal qu’un tissu présentant un marquage fortement positif et il permet de détecter de moindres niveaux de dégradation du réactif.2

Les amygdales constituent le tissu de contrôle positif recommandé.Si le tissu de contrôle positif ne présente pas de marquage positif, les résultats des spécimens analysés doivent être considérés comme invalides.

Tissu de Contrôle NégatifIl doit être examiné après le tissu de contrôle positif afin de vérifier la spécificité du marquage de l’antigène cible par l’anticorps primaire.La parathyroïde constitue le tissu de contrôle négatif recommandé.Sinon, la diversité des types cellulaires présents dans la plupart des tissus permet de disposer fréquemment de sites de contrôle négatif, mais ils doivent être vérifiés par l’utilisateur.S’il est présent, le marquage non spécifique prend habituellement une apparence diffuse. Un marquage sporadique du tissu conjonctif peut également être observé sur des coupes de tissus qui ont été fixées par un excès de formol. Utiliser des cellules intactes pour l’interprétation des résultats du marquage. Les cellules nécrotiques ou dégénérées sont souvent marquées de façon non spécifique.3

Des résultats faussement positifs peuvent être observés en raison d’une liaison non immunologique à des protéines ou à des produits de réaction du substrat. Ils peuvent également être provoqués par des enzymes endogènes comme la pseudoperoxydase (érythrocytes), la peroxydase endogène (cytochrome C), ou la biotine endogène (foie, sein, cerveau, rein, par exemple) selon le type d’immunomarquage utilisé. Pour différencier l’activité des enzymes endogènes ou la liaison non spécifique d’enzymes de l’immunoréactivité spécifique, des tissus supplémentaires du patient peuvent être marqués exclusivement avec le substrat chromogène ou par des complexes enzymatiques (avidine-biotine, streptavidine, polymère marqué) et le substrat chromogène respectivement. Si un marquage spécifique se produit dans le tissu de contrôle négatif, les résultats des spécimens du patient doivent être considérés comme invalides.

Réactif de Contrôle NégatifUtiliser un réactif de contrôle négatif non spécifique à la place de l’anticorps primaire avec une coupe de chaque spécimen du patient afin d’évaluer le marquage non spécifique et de permettre une meilleure interprétation du marquage spécifique au niveau du site antigénique.

Tissu du PatientExaminez les spécimens de patient marqués avec le NCL-L-IgG en dernier. L’intensité du marquage positif doit être évaluée à la lumière du bruit de fond du marquage non spécifique du réactif de contrôle négatif. Comme pour toutes les analyses immunohistochimiques, un résultat négatif signifie que l’antigène n’a pas été détecté mais ne signifie pas qu’il est absent des cellules/tissus testés. Si nécessaire, employer un panel d’anticorps pour identifier les réactions faussement négatives.

Résultats AttendusTissus normauxLe clone RWP49 a détecté la protéine IgG dans le cytoplasme et sur la membrane des cellules plasmatiques, des cellules B de la zone du manteau et des centres germinaux. En outre, la protéine IgG a également été détectée dans une variété de tissus, y compris le côlon (épithélium), l’intestin grêle (épithélium), le cervelet (cellules de Perkinje, cellules gliales), le rein (tubules, glomérules), la glande surrénale (cortex, médulle), le pancréas (acinus, îlots, canaux), le poumon (alvéoles, épithélium bronchique), le foie (hépatocytes), l’œsophage (épithélium), la peau (épithélium), la rate (pulpe rouge), l’ovaire (stroma), le col de l’utérus (épithélium), le testicule (tubules), la prostate (acinus), le thymus, l’hypophyse, l’amygdale (centres germinaux, épithélium, cellules plasmatiques), la moelle osseuse, l’appendice (mésothélium) et le cordon ombilical (mésothélium). (Nombre total de cas normaux = 33).Tissus anormauxLe clone RWP49 a marqué 8/14 myélomes. 38/43 autres malignités hématologiques évaluées ont étaient positives (notamment 13/14 lymphomes à grandes cellules B diffus, 5/6 lymphomes à cellules T périphériques, 4/6 lymphomes folliculaires, 5/5 lymphomes de Hodgkin, 2/2 lymphomes cellulaires du manteau, 2/2 lymphomes à grandes cellules anaplasiques, 1/2 lymphomes du type MALT, 1/1 lymphomes de Burkitt, 1/1 lymphomes de zone marginale, 1/1 lymphomes angioimmunoblastiques, 1/1 lymphome à cellules NK/T, 1/1 lymphome à cellules B riche en cellules T et 1/1 lymphome lymphoblastique). Excepté pour les lymphocytes infiltrants, la protéine IgG a également été détectée dans 31/41 malignités non lymphoïdiques (notamment 9/10 carcinomes cellulaires squameux, 4/4 tumeurs du foie, 3/4 tumeurs ovariennes, 3/3 tumeurs colorectales, 2/2 tumeurs de l’estomac, 2/2 tumeurs du pancréas, 2/2 tumeurs du rein, 2/2 tumeurs de la prostate, 2/2 tumeurs du poumon, 1/2 tumeurs du sein et 1/2 carcinomes métastatiques des ganglions lymphatiques). Aucun marquage des tumeurs thyroïdiennes (0/4) ni des tumeurs du cerveau (0/2) n’a été observé. (Nombre total de cas anormaux = 98).Le NCL-L-IgG est recommandé pour la détection de l’antigène IgG dans les tissus normaux et néoplasiques, en complément à l’histopathologie traditionnelle utilisant des marqueurs histochimiques non immunologiques.

IGG-L-CE Page 7

Limites GénéralesL’immunohistochimie est un processus diagnostique constitué de plusieurs étapes qui nécessite une formation spécialisée relative au choix des réactifs appropriés ; au choix, à la fixation et au traitement des tissus ; à la préparation des lames IHC ; et à l’interprétation des résultats du marquage.Le marquage des tissus dépend de leur manipulation et de leur traitement avant le marquage. Une fixation, une congélation, une décongélation, un lavage, un séchage, un chauffage, une coupe, incorrects ou une contamination par d’autres tissus ou d’autres liquides sont susceptibles de conduire à la production d’artefacts, au piégeage de l’anticorps ou à des résultats faussement négatifs. Des variations dans les méthodes de fixation et d’inclusion, ainsi que des irrégularités propres au tissu, peuvent conduire à des résultats incohérents.4

Une coloration de contraste excessive ou incomplète peut gêner l’interprétation correcte des résultats.L’interprétation clinique de tout marquage, ou absence de marquage, doit être complétée par des études morphologiques utilisant des contrôles appropriés et doit être évaluée par un pathologiste qualifié à la lumière des antécédents cliniques du patient et d’autres analyses diagnostiques.Les anticorps de Leica Biosystems Newcastle Ltd sont destinés, selon les besoins, à être utilisés sur des coupes incluses en paraffine ou des coupes congelées, et conformément à des exigences particulières en matière de fixation. Une expression antigénique inattendue est susceptible de se produire, en particulier au niveau des néoplasmes. L’interprétation clinique de toute coupe tissulaire marquée doit comporter une analyse morphologique et l’évaluation des contrôles appropriés.

Bibliographie Générale1. National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS). Protection of laboratory workers from infectious diseases transmitted

by blood and tissue; proposed guideline. Villanova, P.A. 1991; 7(9). Order code M29-P.2. Battifora H. Diagnostic uses of antibodies to keratins: a review and immunohistochemical comparison of seven monoclonal and

three polyclonal antibodies. Progress in Surgical Pathology. 6:1–15. eds. Fenoglio-Preiser C, Wolff CM, Rilke F. Field & Wood, Inc., Philadelphia.

3. Nadji M, Morales AR. Immunoperoxidase, part I: the techniques and pitfalls. Laboratory Medicine. 1983; 14:767.4. Omata M, Liew CT, Ashcavai M, Peters RL. Nonimmunologic binding of horseradish peroxidase to hepatitis B surface antigen: a

possible source of error in immunohistochemistry. American Journal of Clinical Pathology. 1980; 73:626.5. Karamchandani JR, Younes SF, Warnke RA. IgG4-related systemic sclerosing disease of the ocular adnexa. American Journal of

Clinical Pathology. 2012; 137: 699-711. 6. Janeway C, Travers P, Walport M et al. Immunobiology: The immune system in health and disease. Chapter 3. Garland Science.

New York and London. 2001.7. Fridman W. Fc receptors and immunoglobulin binding factors. FASEB Journal. 1991; 5: 2684-2690.

Amendements Apportés à la Version PrécédenteComposition des réactifs, concentration en anticorps, recommandations d’utilisation, mises en garde et précautions.

Date de Publication12 décembre 2019

IGG-L-CE Page 8

Novocastra Anticorpo Monoclonale Murino LiquidoImmunoglobulin GCodice Del Prodotto: NCL-L-IgG

Uso PrevistoPer uso diagnostico in vitro.NCL-L-IgG è destinato all’identificazione qualitativa in microscopia ottica di molecole di immunoglobulina G (IgG) umana in sezioni in paraffina. L’interpretazione clinica di ogni colorazione o della sua assenza va integrata da studi morfologici che utilizzino i controlli appropriati e deve essere valutata da un patologo qualificato, nel contesto della storia clinica del paziente e delle altre metodiche diagnostiche adoperate.

Principio Della ProceduraLe tecniche di colorazione immunoistochimica (IHC) consentono la visualizzazione degli antigeni mediante l’applicazione sequenziale di un anticorpo specifico per l’antigene (anticorpo primario), di un anticorpo secondario che lega l’anticorpo primario e di un complesso enzimatico con un substrato cromogeno; l’applicazione dei tre reagenti è intervallata da fasi di lavaggio. L’attivazione enzimatica del cromogeno produce una reazione visibile in corrispondenza del sito antigenico. Il campione biologico può, quindi, essere controcolorato e montato. I risultati vengono interpretati mediante un microscopio ottico e sono utili nella diagnosi differenziale di processi fisiopatologici, che possono essere più o meno associati ad un particolare antigene.

CloneRWP49

ImmunogenoProteina ricombinante in procarioti corrispondente a 327 amminoacidi della molecola di IgG umana

SpecificitàIgG umana

Composizione Del ReagenteNCL-L-IgG è un supernatante liquido di coltura tissutale, contenente 0,35% di ProClin™ 950 come conservante.

Classe IgIgG1

Concentrazione Proteica TotaleConsultare l’etichetta del flacone per la concentrazione proteica totale specifica del lotto.

Concentrazione AnticorpaleSuperiore o uguale a 59 mg/L, come determinato mediante test ELISA. Consultare l’etichetta del flacone per la concentrazione di Ig specifica del lotto.

Raccomandazioni Per L’usoImmunoistochimica su sezioni incluse in paraffina. Recupero dell’epitopo mediante calore (Heat Induced Epitope Retrieval, HIER): seguire le istruzioni per l’uso accluse a Novocastra Epitope Retrieval Solution pH 6. Diluizione raccomandata: 1:200 per 30 minuti a 25 °C. Queste raccomandazioni costituiscono delle semplici linee guida; spetta al singolo utente stabilire le diluizioni di lavoro ottimali.Visualizzazione: Si raccomanda di seguire le istruzioni per l’uso dei Novolink Polymer Detection Systems. Per ulteriori informazioni sui prodotti o assistenza, contattare il distributore di zona o la sede regionale di Leica Biosystems, oppure visitare il sito internet di Leica Biosystems, www.LeicaBiosystems.com La resa di questo anticorpo deve essere validata quando viene utilizzato con altri metodi di colorazione manuale o piattaforme automatizzate.

Conservazione E StabilitàConservare a 2–8 °C. Non congelare. Immediatamente dopo l’uso, raffreddare di nuovo a 2–8 °C. Non usare dopo la data di scadenza, indicata sull’etichetta del flacone. Condizioni di conservazione diverse da quelle sopra specificate vanno verificate dall’utente.

Preparazione Del Campione BiologicoIl fissativo raccomandato è la formalina tamponata neutra al 10% per sezioni tissutali incluse in paraffina.

Avvertenze E PrecauzioniQuesto reagente è stato preparato dal supernatante di coltura cellulare. Trattandosi di un prodotto biologico, va maneggiato con cautela.La concentrazione del ProClin™ 950 è 0,35 %. Esso contiene il principio attivo 2-metil-2H-isotiazol-3-one e può causare irritazione alla cute, agli occhi, alle membrane mucose e alle alte vie respiratorie. Per la manipolazione dei reagenti usare guanti monouso.Fare riferimento alla normativa federale, statale o locale per lo smaltimento dei componenti potenzialmente tossici.

Total Protein

IGG-L-CE Page 9

Prima e dopo la fissazione, i campioni biologici e tutti i materiali ad essi esposti vanno trattati come potenzialmente infettanti e smaltiti con le appropriate precauzioni.1 Non pipettare i reagenti con la bocca ed evitare il contatto dei reagenti e dei campioni biologici con la pelle e con le mucose. Se i reagenti o i campioni biologici vengono a contatto con zone sensibili, sciacquare abbondantemente le parti interessate. Consultare il medico.Ridurre al minimo la contaminazione microbica dei reagenti, allo scopo di evitare un aumento di colorazione aspecifica.Tempi o temperature d’incubazione diversi da quelli specificati possono condurre a risultati non veritieri. Tali variazioni devono essere convalidate dall’utente.

Controllo QualitàDifferenze nella processazione del tessuto e nelle tecniche in uso presso il laboratorio dell’utente possono produrre una discrepanza significativa nei risultati, rendendo necessaria la regolare esecuzione di controlli interni, in aggiunta alle procedure descritte di seguito. I controlli devono essere costituiti da campioni biologici freschi autoptici/bioptici/chirurgici e devono essere il più rapidamente possibile fissati in formalina, processati ed inclusi in paraffina, allo stesso modo dei campioni biologici ottenuti dal paziente.

Controllo Positivo Del TessutoÈ usato per indicare tessuti correttamente preparati e tecniche di colorazione appropriate.Per ogni gruppo di condizioni del test e ogni volta che viene eseguita la colorazione, deve essere incluso un controllo positivo del tessuto.Un tessuto a debole colorazione positiva è più adatto di uno a colorazione positiva intensa per un ottimale controllo qualità e per mettere in evidenza anche minimi livelli di degradazione del reagente.2

Il tessuto raccomandato per il controllo positivo è la tonsilla.Se il controllo positivo del tessuto non dimostra colorazione positiva, i risultati con i campioni biologici del test vanno considerati non validi.

Controllo Negativo Del TessutoVa esaminato dopo il controllo positivo, per verificare la specificità nei confronti dell’antigene bersaglio da parte dell’anticorpo primario.Il tessuto raccomandato per il controllo negativo è la paratiroide.In alternativa, la varietà dei tipi cellulari presenti nella maggior parte delle sezioni tissutali offre spesso siti di controllo negativo, ma questo va verificato dall’utente.La colorazione aspecifica, se presente, assume di solito aspetto diffuso. La colorazione sporadica del tessuto connettivo può anche manifestarsi in seguito ad iperfissazione di sezioni di tessuto in formalina. Per l’interpretazione dei risultati della colorazione, usare cellule intatte. Le cellule necrotiche o degenerate si colorano spesso in maniera aspecifica3. Si possono osservare risultati falsamente positivi, dovuti a legame non immunologico delle proteine o a prodotti di reazione del substrato. Tali falsi positivi possono essere anche causati da enzimi endogeni quali la pseudoperossidasi (eritrociti), la perossidasi endogena (citocromo C) o la biotina endogena (es. fegato, mammella, cervello, rene), a seconda del tipo di immunocolorazione usato. Per differenziare l’attività enzimatica endogena o il legame enzimatico aspecifico dall’immunoreattività specifica, possono essere colorati ulteriori tessuti del paziente esclusivamente con substrato cromogeno o con complessi enzimatici (avidina-biotina, streptavidina, polimero marcato) e substrato cromogeno. Se nel controllo negativo del tessuto compare una colorazione specifica, i risultati sui campioni biologici ottenuti dal paziente devono essere considerati non validi.

Controllo Negativo Del ReagenteUsare un controllo negativo aspecifico del reagente in luogo dell’anticorpo primario, con una sezione di ogni campione biologico del paziente, per valutare la colorazione aspecifica e per consentire una migliore interpretazione della colorazione specifica in corrispondenza del sito antigenico.

Tessuto Del PazienteSuccessivamente, esaminare i campioni biologici del paziente colorati con NCL-L-IgG. L’intensità della colorazione positiva va analizzata nel contesto di qualsiasi colorazione aspecifica di fondo del controllo negativo del reagente. Come per tutti gli altri test immunoistochimici, un risultato negativo significa che l’antigene non è stato determinato, ma non necessariamente che fosse assente dalle cellule o dal tessuto esaminato. Se necessario, usare un pannello di anticorpi per identificare reazioni falsamente negative.

Risultati AttesiTessuti normaliIl clone RWP49 ha rilevato la proteina IgG nel citoplasma e sulla membrana di cellule plasmatiche, cellule B della zona del mantello e centri germinali. Inoltre, la proteina IgG è stata rilevata anche in svariati tessuti, tra cui colon (epitelio), intestino tenue (epitelio), cervelletto (cellule di Purkinje, cellule gliali), rene (tubuli, glomeruli), ghiandola surrenale (corteccia, midollo), pancreas (acini, isole, dotti), polmone (alveoli, epitelio bronchiale), fegato (epatociti), esofago (epitelio), cute (epitelio), milza (polpa rossa), ovaio (stroma), cervice (epitelio), testicolo (tubuli), prostata (acini), timo, ipofisi, tonsilla (centri germinali, epitelio, cellule plasmatiche), midollo osseo, appendice (mesotelio) e cordone ombelicale (mesotelio). (Numero complessivo di casi normali = 33).Abnorme dei tessutiIl clone RWP49 ha colorato 8/14 mielomi. 38/43 altre malignità ematologiche valutate sono risultate positive (compresi 13/14 linfomi diffusi a grandi cellule B, 5/6 linfomi periferici a cellule T, 4/6 linfomi follicolari, 5/5 linfomi di Hodgkin, 2/2 linfomi a cellule mantellari, 2/2 linfomi anaplastici a grandi cellule, 1/2 MALTomi, 1/1 linfoma di Burkitt, 1/1 linfoma della zona marginale, 1/1 linfoma angioimmunoblastico, 1/1 linfoma a cellule NK/T, 1/1 linfoma a cellule B ricco in linfociti T e 1/1 linfoma linfoblastico). Ad eccezione dei linfociti infiltranti, la proteine IgG è stata rilevata anche in 31/41 malignità non linfoidi (compresi 9/10 carcinomi delle cellule squamose, 4/4 tumori epatici, 3/4 tumori ovarici, 3/3 tumori colorettali, 2/2 tumori dello stomaco, 2/2 tumori pancreatici, 2/2 tumori renali, 2/2 tumori della prostata, 2/2 tumori polmonari, 1/2 tumori della mammella e 1/2 carcinomi con metastasi ai linfonodi). Non è stata rilevata alcuna colorazione nei tumori tiroidei (0/4) e nei tumori cerebrali (0/2). (Numero complessivo di casi anomali = 98).L’uso di NCL-L-IgG è consigliato per il rilevamento dell’antigene IgG in tessuti normali e neoplastici, in aggiunta all’istopatologia convenzionale che si avvale delle colorazioni istochimiche non immunologiche.

IGG-L-CE Page 10

Limitazioni GeneraliL’immunoistochimica è un procedimento diagnostico a più passi (multistep) che richiede un’esperienza specifica nella selezione dei reagenti appropriati, nella selezione, fissazione e processazione dei tessuti, nella preparazione di vetrini IHC e nell’interpretazione dei risultati della colorazione.La colorazione del tessuto dipende dalle modalità di manipolazione e di processazione del tessuto stesso, adottate prima della colorazione. La fissazione, il congelamento, lo scongelamento, il lavaggio, l’asciugatura, il riscaldamento o la sezione condotti in modo non corretto, o la contaminazione con altri tessuti o liquidi, possono produrre artefatti, intrappolamento (trapping) anticorpale o risultati falsi negativi. Risultati incompatibili possono essere dovuti a modifiche dei metodi di fissazione e di inclusione o ad irregolarità intrinseche al tessuto.4

Una controcolorazione eccessiva o incompleta può compromettere la corretta interpretazione dei risultati.L’interpretazione clinica di ogni colorazione o della sua assenza va integrata da studi morfologici che utilizzino i controlli appropriati e deve essere valutata da un patologo qualificato, nel contesto della storia clinica del paziente e delle altre metodiche diagnostiche adoperate.Gli anticorpi di Leica Biosystems Newcastle Ltd. sono destinati all’uso, quando indicato, su sezioni congelate o incluse in paraffina, con specifici requisiti di fissazione. Un’espressione antigenica inattesa può manifestarsi in particolare nelle neoplasie. L’interpretazione clinica di ogni sezione tissutale colorata deve includere l’analisi morfologica e la valutazione dei controlli appropriati.

Riferimenti Bibliografici Di Base1. National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS). Protection of laboratory workers from infectious diseases

transmitted by blood and tissue; proposed guideline. Villanova, P.A. 1991; 7(9). Order code M29-P.2. Battifora H. Diagnostic uses of antibodies to keratins: a review and immunohistochemical comparison of seven monoclonal and

three polyclonal antibodies. Progress in Surgical Pathology. 6:1–15. eds. Fenoglio-Preiser C, Wolff CM, Rilke F. Field & Wood, Inc., Philadelphia.

3. Nadji M, Morales AR. Immunoperoxidase, part I: the techniques and pitfalls. Laboratory Medicine. 1983; 14:767.4. Omata M, Liew CT, Ashcavai M, Peters RL. Nonimmunologic binding of horseradish peroxidase to hepatitis B surface antigen: a

possible source of error in immunohistochemistry. American Journal of Clinical Pathology. 1980; 73:626.5. Karamchandani JR, Younes SF, Warnke RA. IgG4-related systemic sclerosing disease of the ocular adnexa. American Journal of

Clinical Pathology. 2012; 137: 699-711. 6. Janeway C, Travers P, Walport M et al. Immunobiology: The immune system in health and disease. Chapter 3. Garland Science. New

York and London. 20017. Fridman W. Fc receptors and immunoglobulin binding factors. FASEB Journal. 1991; 5: 2684-2690.

Modifiche Alla Pubblicazione PrecedenteComposizione del reagente, concentrazione di anticorpi, raccomandazioni per l’uso, avvertenze e precauzioni.

Data Di Pubblicazione12 dicembre 2019

IGG-L-CE Page 11

Novocastra flüssiger monoklonaler Maus-Antikörper Immunglobulin GProdukt-Nr.: NCL-L-IgG

VerwendungszweckFür in-vitro-Diagnostik.NCL-L-IgG ist für den qualitativen Nachweis von Immunglobulin G (IgG) in Paraffinschnitten mittels Lichtmikroskopie vorgesehen. Die klinische Bewertung einer vorliegenden bzw. fehlenden Färbung sollte durch morphologische Studien mit entsprechenden Kontrollen ergänzt und im Kontext der Krankengeschichte des Patienten und anderer diagnostischer Tests von einem qualifizierten Pathologen vorgenommen werden.

VerfahrensgrundlageImmunhistochemische (IHC) Färbetechniken gestatten die optische Darstellung von Antigenen mittels sequentieller Anwendung eines spezifischen Antikörpers zum Antigen (primärer Antikörper), eines sekundären Antikörpers zum primären Antikörper und eines Enzymkomplexes mit einem chromogenen Substrat, jeweils getrennt durch dazwischen liegende Waschschritte. Die enzymatische Aktivierung des Chromogens führt zu einem sichtbaren Reaktionsprodukt am Ort des Antigens. Die Probe kann dann gegengefärbt und mit einem Deckglas versehen werden. Die Ergebnisse werden mithilfe eines Lichtmikroskops interpretiert und unterstützen die Differentialdiagnose pathophysiologischer Prozesse, die mit einem bestimmten Antigen assoziiert sein könnten.

KlonRWP49

ImmunogenProkaryotisches rekombinantes Protein, das 327 Aminosäuren des humanen IgG-Moleküls entspricht

SpezifitätHumanes IgG

ReagenzzusammensetzungNCL-L-IgG ist ein flüssiger Gewebekulturüberstand mit 0,35 % ProClin™ 950 als Konservierungsmittel.

Ig-KlasseIgG1

GesamtproteinkonzentrationSiehe Angaben auf dem Produktetikett bezüglich der chargenspezifischen Gesamtproteinkonzentration.

AntikörperkonzentrationGrößer als oder gleich 59 mg/L gemäß ELISA-Bestimmung. Hinsichtlich der chargenspezifischen Ig-Konzentration siehe Angaben auf dem Produktetikett.

GebrauchsempfehlungenImmunhistochemie in Paraffinschnitten. Hitzeinduzierte Epitopdemaskierung (Heat Induced Epitope Retrieval, HIER): Bitte Gebrauchsanweisung für Novocastra Epitope Retrieval Solution pH 6 befolgen. Empfohlene Verdünnung: 1:200 über einen Zeitraum von 30 Minuten bei 25 °C. Dies ist nur eine Empfehlung, und die Benutzer sollten ihre eigenen optimalen Arbeitsverdünnungen bestimmen. Visualisierung: Bitte Gebrauchsanweisung für Novolink Polymer Detection Systems befolgen. Wenn Sie weitere Produktinformationen oder Unterstützung wünschen, setzen Sie sich bitte mit ihrem Händler vor Ort oder mit der Zweigniederlassung von Leica Biosystems in Verbindung beziehungsweise besuchen Sie die Internetseite von Leica Biosystems, www.LeicaBiosystems.com Die Leistungsfähigkeit dieses Antikörpers sollte bestätigt werden, wenn er mit anderen manuellen Färbesystemen oder automatisierten Plattformen eingesetzt wird.

Lagerung und StabilitätBei 2–8 °C lagern. Nicht einfrieren. Nach Gebrauch sofort wieder bei 2–8 °C lagern. Nach Ablauf des Verfallsdatums (auf dem Behälteretikett) darf das Produkt nicht mehr verwendet werden. Lagerbedingungen, die von den oben genannten Bedingungen abweichen, müssen vom Benutzer verifiziert werden.

ProbenvorbereitungFür paraffineingebettete Gewebeschnitte ist das empfohlene Fixativ 10% neutral gepuffertes Formalin.

Warnhinweise und SicherheitsmaßnahmenDieses Reagenz wurde aus Zellkulturüberstand zubereitet. Das Reagenz ist ein biologisches Produkt und sollte mit entsprechender Vorsicht gehandhabt werden.Die Konzentration von ProClin™ 950 beträgt 0,35 %. Es enthält 2-Methylisothiazol-3(2H)-on als aktiven Bestandteil und kann Reizungen der Haut, Augen, Schleimhäute und oberen Atemwege verursachen. Tragen Sie beim Umgang mit Reagenzien Einweghandschuhe.Die entsprechenden nationalen und lokalen Bestimmungen und Vorschriften zur Entsorgung potentiell giftiger Komponenten sind einzuhalten.

Total Protein

IGG-L-CE Page 12

Vor und nach der Fixierung sind die Proben sowie alle Materialien, die mit ihnen in Kontakt gekommen sind, als potentiell infektiös zu behandeln und daher mit entsprechender Vorsicht zu entsorgen.1 Reagenzien dürfen niemals mit dem Mund pipettiert werden, und jeglicher Kontakt der Reagenzien und Proben mit Haut und Schleimhäuten ist zu vermeiden. Falls Reagenzien oder Proben mit empfindlichen Bereichen in Kontakt gekommen sind, müssen diese mit reichlich Wasser gespült werden. Ärztlichen Rat einholen.Die mikrobielle Verunreinigung von Reagenzien ist zu minimieren, da ansonsten eine erhöhte unspezifische Färbung auftreten kann.Falls die spezifizierten Inkubationszeiten oder –temperaturen nicht eingehalten werden, kann es zu fehlerhaften Ergebnissen kommen. Jegliche Abweichungen von den angegebenen Werten müssen vom Benutzer verifiziert werden.

QualitätskontrolleUnterschiede bei der Gewebebearbeitung und den technischen Verfahren im Labor des Benutzers können zu signifikanten Schwankungen bei den Ergebnissen führen. Daher ist es wichtig, zusätzlich zu den folgenden Verfahren regelmäßige laborinterne Kontrollen durchzuführen.Die Kontrollen sollten mit frischen Autopsie-/Biopsie-/chirurgischen Proben vorgenommen werden, die so bald wie möglich und auf dieselbe Weise wie die Patientenprobe(n) in Formalin fixiert, behandelt und in Paraffin eingebettet worden sind.

Positive GewebekontrolleZeigt korrekt vorbereitete Gewebe und korrekte Färbetechniken an.In jedem Färbelauf sollte für jeden Satz Testbedingungen eine positive Gewebekontrolle durchgeführt werden.Gewebe mit schwach positiver Färbung ist für die optimale Qualitätskontrolle und den Nachweis kleiner Minderungen in der Reagenzleistung besser geeignet als ein Gewebe mit stark positiver Färbung.2

Als positive Gewebekontrolle wird Tonsille empfohlen.Falls das positive Kontrollgewebe keine positive Färbung nachweisen kann, sollten die mit den Testproben erzielten Ergebnisse als ungültig betrachtet werden.

Negative GewebekontrolleDie negative Gewebekontrolle sollte nach der positiven Gewebekontrolle erfolgen, um die Spezifität der Zielantigenmarkierung durch den primären Antikörper zu verifizieren.Als negative Gewebekontrolle wird Nebenschilddrüse empfohlen.Alternativ bietet die Vielfalt unterschiedlicher Zelltypen, die in den meisten Gewebeschnitten vorliegen, häufig Stellen für eine negative Kontrolle. Jedoch sollte dies vom Benutzer verifiziert werden.Liegt eine unspezifische Färbung vor, hat diese gewöhnlich ein diffuses Erscheinungsbild. Eine sporadische Färbung des Bindegewebes kann ebenfalls in Schnitten von übermäßig formalinfixierten Geweben beobachtet werden. Zur Bewertung der Färbeergebnisse intakte Zellen verwenden. Nekrotische oder degenerierte Zellen werden oft unspezifisch gefärbt.3 Falsch-positive Ergebnisse können aufgrund einer nichtimmunologischen Bindung von Proteinen oder Substratreaktionsprodukten beobachtet werden. In Abhängigkeit von der Art der verwendeten Immunfärbung können solche Ergebnisse auch durch endogene Enzyme wie Pseudoperoxidase (Erythrozyten), endogene Peroxidase (Zytochrom C) oder endogenes Biotin (beispielsweise Leber, Mamma, Gehirn, Niere) hervorgerufen werden. Um eine endogene Enzymaktivität bzw. eine unspezifische Enzymbindung von einer spezifischen Immunreaktivität zu unterscheiden, können zusätzliche Patientengewebe ausschließlich mit Substratchromogen bzw. mit Enzymkomplexen (Avidin-Biotin, Streptavidin, markiertes Polymer) plus Substratchromogen gefärbt werden. Falls im negativen Kontrollgewebe eine spezifische Färbung auftritt, sollten die Ergebnisse mit den Patientenproben als ungültig betrachtet werden.

Negative ReagenzkontrolleZur Beurteilung einer unspezifischen Färbung und zur besseren Bewertung einer spezifischen Färbung an der Antigenstelle ist mit einem Schnitt jedes Patientenpräparates anstelle des primären Antikörpers eine unspezifische negative Reagenzkontrolle zu verwenden.

PatientengewebeMit NCL-L-IgG angefärbte Patientenproben zuletzt untersuchen. Eine positive Färbeintensität ist im Kontext einer unspezifischen Hintergrundfärbung der negativen Reagenzkontrolle zu bewerten. Wie bei jedem immunhistochemischen Test bedeutet ein negatives Ergebnis, dass das Antigen nicht nachgewiesen wurde. Ein negatives Ergebnis bedeutet jedoch nicht notwendigerweise, dass das Antigen in den getesteten Zellen / im getesteten Gewebe nicht vorlag. Bei Bedarf sollte zur Identifizierung falsch-negativer Reaktionen eine Gruppe von Antikörpern verwendet werden.

Erwartete ErgebnisseNormale GewebeKlon RWP49 wies das IgG-Protein im Zytoplasma und auf der Membran von Plasmazellen, B-Zellen der Mantelschicht und Keimzentren nach. IgG-Protein wurde außerdem in verschiedenen Geweben nachgewiesen, darunter Kolon (Epithel), Dünndarm (Epithel), Kleinhirn (Purkinjezellen, Gliazellen), Niere (Tubuli, Glomeruli), Nebenniere (Cortex, Medulla), Pankreas (Azini, Inseln, Gänge), Lunge (Bläschen, Bronchialepithel), Leber (Hepatozyten), Ösophagus (Epithel), Haut (Epithel), Milz (rote Pulpa), Ovar (Stroma), Zervix (Epithel), Hoden (Tubuli), Prostata (Azini), Thymus, Hypophyse, Mandel (Keimzentren, Epithel, Plasmazellen), Knochenmark, Blinddarm (Mesothel) und Nabelschnur (Mesothel). (Gesamtzahl der Normalgewebeproben = 33).Anomale GewebeKlon RWP49 färbte 8/14 Myelome. 38/43 weitere untersuchte hämatologische Erkrankungen waren positiv (darunter 13/14 diffuse großzellige B-Zell-Lymphome, 5/6 periphere T-Zell-Lymphome, 4/6 follikuläre Lymphome, 5/5 Hodgkin-Lymphome, 2/2 Mantelzell-Lymphome, 2/2 anaplastische großzellige Lymphome, 1/2 MALT-Lymphome, 1/1 Burkitt-Lymphom, 1/1 Randzonen-Lymphom, 1/1 angioimmunoblastisches Lymphom, 1/1 NK/T-Zell-Lymphom, 1/1 T-zellreiches B-Zell-Lymphom und 1/1 lymphoblastisches Lymphom). Abgesehen von infiltrierenden Lymphozyten wurde das IgG-Protein auch in 31/41 nicht-lymphatischen Erkrankungen nachgewiesen (darunter 9/10 Plattenepithelkarzinome, 4/4 Lebertumoren, 3/4 Ovarialtumoren, 3/3 kolorektale Tumoren, 2/2 Magentumoren, 2/2 Pankreastumoren, 2/2 Nierentumoren, 2/2 Prostatatumoren, 2/2 Lungentumoren, 1/2 Brusttumoren und 1/2 Lymphknotenkarzinommetastasen). Bei Schilddrüsentumoren (0/4) und Hirntumoren (0/2) wurde keine Färbung nachgewiesen. (Gesamtzahl der pathologischen Gewebeproben = 98).NCL-L-IgG wird für den Nachweis des IgG-Antigens in normalem und neoplastischem Gewebe als zusätzliches Hilfsmittel zur herkömmlichen Histopathologie unter Verwendung nicht-immunologischer histochemischer Färbemittel empfohlen.

IGG-L-CE Page 13

Allgemeine BeschränkungenDie Immunhistochemie ist ein mehrstufiger diagnostischer Prozess, der eine spezialisierte Ausbildung auf den folgenden Gebieten erfordert: Auswahl der entsprechenden Reagenzien; Gewebeauswahl, -fixierung und -verarbeitung; Vorbereitung des IHC-Objektträgers sowie Bewertung der Färbeergebnisse.Die Gewebefärbung hängt von der Handhabung und Verarbeitung des Gewebes vor dem Färben ab. Unsachgemäßes Fixieren, Einfrieren, Auftauen, Waschen, Trocknen, Erwärmen, Schneiden oder eine Kontamination mit anderen Geweben oder Flüssigkeiten kann zu Artefakten, Antikörper-Trapping oder falsch-negativen Ergebnissen führen. Abweichende Ergebnisse können aufgrund von Unterschieden bei der Fixierung und Einbettung oder intrinsischen Unregelmäßigkeiten im Gewebe selbst entstehen.4

Eine exzessive oder unvollständige Gegenfärbung kann die korrekte Bewertung von Ergebnissen gefährden.Die klinische Bewertung einer vorliegenden bzw. fehlenden Färbung sollte durch morphologische Studien mit entsprechenden Kontrollen ergänzt und im Kontext der Krankengeschichte des Patienten und anderer diagnostischer Tests von einem qualifizierten Pathologen vorgenommen werden.Antikörper von Leica Biosystems Newcastle Ltd sind wo angezeigt für die Verwendung entweder auf gefrorenen oder in Paraffin eingebetteten Schnitten mit spezifischen Fixierungsanforderungen bestimmt. Es kann insbesondere bei Neoplasmen zu einer unerwarteten Antigenexpression kommen. Die klinische Bewertung eines gefärbten Gewebeschnitts muss eine morphologische Analyse und die Auswertung der entsprechenden Kontrollen einschließen.

Literatur - Allgemein1. National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS). Protection of laboratory workers from infectious diseases transmitted

by blood and tissue; proposed guideline. Villanova, P.A. 1991;7(9). Order code M29-P.2. Battifora H. Diagnostic uses of antibodies to keratins: a review and immunohistochemical comparison of seven monoclonal and

three polyclonal antibodies. Progress in Surgical Pathology. 6:1–15. eds. Fenoglio-Preiser C, Wolff CM, Rilke F. Field & Wood, Inc., Philadelphia.

3. Nadji M, Morales AR. Immunoperoxidase, part I: the techniques and pitfalls. Laboratory Medicine. 1983; 14:767.4. Omata M, Liew CT, Ashcavai M, Peters RL. Nonimmunologic binding of horseradish peroxidase to hepatitis B surface antigen: a

possible source of error in immunohistochemistry. American Journal of Clinical Pathology. 1980; 73:626.5. Karamchandani JR, Younes SF, Warnke RA. IgG4-related systemic sclerosing disease of the ocular adnexa. American Journal of

Clinical Pathology. 2012; 137: 699-711. 6. Janeway C, Travers P, Walport M et al. Immunobiology: The immune system in health and disease. Chapter 3. Garland Science. New

York and London. 20017. Fridman W. Fc receptors and immunoglobulin binding factors. FASEB Journal. 1991; 5: 2684-2690.

Änderungen zur vorhergehenden AusgabeZusammensetzung der Reagenzien, Antikörperkonzentration, Anwendungsempfehlungen, Warnhinweise und Vorsichtsmaßnahmen.

Ausgabedatum12 Dezember 2019

IGG-L-CE Page 14

Anticuerpo monoclonal líquido de ratón NovocastraImmunoglobulin GCódigo De Producto: NCL-L-IgG

Indicaciones De UsoPara uso diagnóstico in vitro.NCL-L-IgG está indicado para la identificación cualitativa en secciones de parafina, mediante microscopía óptica, de moléculas de inmunoglobulina G (IgG) humana. La interpretación clínica de cualquier tinción o de su ausencia debe complementarse con estudios morfológicos, con el uso de los controles adecuados, y un anatomopatólogo cualificado debe evaluarla en el contexto del historial clínico del paciente y de otras pruebas diagnósticas.

Principio Del ProcedimientoLas técnicas de tinción inmunohistocitoquímica (IHQ) permiten la visualización de antígenos mediante la aplicación secuencial de un anticuerpo específico dirigido contra el antígeno (anticuerpo primario), un anticuerpo secundario dirigido contra el anticuerpo primario y un complejo enzimático con un sustrato cromogénico, con pasos de lavado intercalados. La activación enzimática del cromógeno produce una reacción visible en el lugar en que se encuentra el antígeno. Luego se puede contrateñir la muestra y cubrirla con un cubreobjeto. Los resultados se interpretan utilizando un microscopio óptico y son de ayuda en el diagnóstico diferencial de los procesos fisiopatológicos, que pueden estar o no vinculados a un determinado antígeno.

ClonRWP49

InmunógenoProteína procariótica recombinante, correspondiente a 327 aminoácidos de la molécula de IgG humana

EspecificidadIgG humana

Composición Del ReactivoNCL-L-IgG es un sobrenadante de cultivo tisular líquido que contiene 0,35 % de ProClin™ 950 como conservante.

Clase de IgIgG1

Concentración Total De ProteínaConsulte la etiqueta del vial para ver la concentración total de proteína específica del lote.

Concentración De AnticuerpoIgual o superior a 59 mg/L, según se ha determinado mediante ELISA. Consulte en la etiqueta del vial la concentración de Ig específica del lote.

Recomendaciones De UsoInmunohistocitoquímica con secciones de parafina.Recuperación de epítopos termoinducida (Heat Induced Epitope Retrieval, HIER): Siga las instrucciones de uso de Novocastra Epitope Retrieval Solution pH 6. Dilución sugerida: 1:200 durante 30 minutos a 25 °C. Esta es tan solo una pauta y cada usuario debe determinar sus propias diluciones de trabajo óptimas. Visualización: Por favor, siga las instrucciones de uso de Novolink Polymer Detection Systems. Para obtener más información sobre el producto o para recibir soporte, póngase en contacto con su distribuidor local o con la oficina regional de Leica Biosystems, o bien visite el sitio web de Leica Biosystems, www.LeicaBiosystems.com El rendimiento de este anticuerpo se debe validar cuando se utiliza con otros sistemas manuales de tinción o plataformas automatizadas.

Almacenamiento Y EstabilidadAlmacénelo a una temperatura de 2–8 °C. No lo congele. Devuélvalo a 2–8 °C inmediatamente después de su uso. No lo utilice después de la fecha de caducidad indicada en la etiqueta del vial. Cualesquiera condiciones de almacenamiento que no sean las arriba especificadas deben ser verificadas por el usuario.

Preparación De Las MuestrasEl fijador recomendado para secciones de tejido incluidos en parafina es formol tamponado neutro al 10%.

Advertencias Y PrecaucionesEste reactivo se ha preparado a partir del sobrenadante de un cultivo celular. Como se trata de un producto de origen biológico, debe manipularse con precaución.La concentración de ProClin™ 950 es de 0,35 %. Contiene el principio activo 2-metil-2H-isotiazol-3-ona, que puede producir irritación en la piel, ojos, mucosas y tracto respiratorio superior. Lleve siempre guantes desechables cuando manipule los reactivos.Consulte las normativas nacionales, estatales, provinciales o municipales acerca de cómo desechar cualquier componente potencialmente tóxico.

Total Protein

IGG-L-CE Page 15

Las muestras, antes y después de ser fijadas, así como todos los materiales expuestos a ellas, deben manipularse como susceptibles de transmitir una infección, y se deben desechar tomando las precauciones adecuadas.1 No pipetee nunca los reactivos con la boca, y evite el contacto de la piel y de las membranas mucosas con los reactivos y las muestras. Si los reactivos o las muestras entran en contacto con zonas delicadas, lave éstas con abundante agua. Acuda inmediatamente al médico.Reduzca al mínimo la contaminación microbiana de los reactivos; de lo contrario, podría producirse un aumento de la tinción no específica.Cualquier tiempo o temperatura de incubación que no sean los aquí especificados pueden conducir a resultados erróneos. Cualquier cambio de tal naturaleza debe ser validado por el usuario.

Control De CalidadLas diferencias en el procesamiento de los tejidos y en los procedimientos técnicos del laboratorio del usuario pueden producir una variabilidad significativa en los resultados; por ello, es necesario que éste lleve a cabo regularmente los controles de su propio laboratorio, además de los siguientes procedimientos.Los controles deben ser muestras frescas de autopsia, biopsia o quirúrgicas fijadas en formol, procesadas e incluidas en parafina, lo antes posible, de manera idéntica a la utilizada para la muestra o muestras del paciente o pacientes.

Control Tisular PositivoSe utiliza para indicar la preparación correcta de los tejidos y las técnicas de tinción adecuadas.Debe incluirse un control tisular positivo por cada conjunto de condiciones de ensayo en cada tinción o serie de tinciones realizada.Un tejido con una tinción positiva débil es más adecuado que un tejido con una tinción positiva intensa para lograr un control de calidad óptimo y para detectar niveles bajos de degradación del reactivo.2

El tejido de control positivo recomendado es amígdala.Si el tejido de control positivo no muestra tinción positiva, los resultados de las muestras analizadas deben considerarse no válidos.

Control Tisular NegativoDebe examinarse después del control de tejido positivo, a fin de verificar la especificidad del marcado del antígeno diana por el anticuerpo primario.El tejido de control negativo recomendado es el paratiroideo.O bien, la variedad de diferentes tipos de células presentes en la mayoría de los cortes de tejido ofrece con frecuencia lugares de control negativo, pero esto debe ser verificado por el usuario.Si aparece una tinción no específica, ésta tiene generalmente aspecto difuso. En cortes de tejido fijados excesivamente con formol puede observarse también una tinción esporádica del tejido conectivo. Utilice células intactas para la interpretación de los resultados de la tinción. A menudo, las células necróticas o degeneradas quedan teñidas de forma no específica.3 También pueden observarse falsos positivos causados por la unión no inmunológica a proteínas o a productos de reacción del sustrato. Estos falsos positivos pueden estar causados también por enzimas endógenas tales como la pseudoperoxidasa (eritrocitos), la peroxidasa endógena (citocromo C), o la biotina endógena (por ejemplo, de hígado, mama, cerebro, riñón), en función del tipo de inmunotinción utilizada. Para diferenciar la actividad de las enzimas endógenas o los enlaces no específicos de las enzimas de la inmunorreactividad específica, pueden teñirse otros tejidos del paciente exclusivamente con cromógeno sustrato o con complejos enzimáticos (avidina-biotina, estreptavidina, polímeros marcados) y cromógeno sustrato respectivamente. Si se produce una tinción específica del control tisular negativo, los resultados de las muestras de los pacientes deben considerarse no válidos.

Control De Reactivo NegativoUtilice un control de reactivo negativo no específico en lugar del anticuerpo primario con un corte de cada muestra del paciente a fin de evaluar la tinción no específica y obtener una mejor interpretación de la tinción específica en el lugar en que se encuentra el antígeno.

Tejido Del PacienteExamine las muestras de pacientes teñidas con NCL-L-IgG al final. La intensidad de la tinción positiva debe valorarse en el contexto de cualquier tinción de fondo no específica del control de reactivo negativo. Como con cualquier prueba inmunohistocitoquímica, un resultado negativo significa que no se ha detectado antígeno, y no que el antígeno esté ausente en las células o tejido probados. Si es necesario, use un panel de anticuerpos para identificar falsas reacciones negativas.

Resultados esperadosTejidos normalesEl clon RWP49 detectó la proteína IgG en el citoplasma y la membrana de las células plasmáticas, los linfocitos B de la zona del manto y los centros germinales. Además, la proteína IgG también se detectó en diversos tejidos, como los de colon (epitelio), intestino delgado (epitelio), cerebelo (células de Purkinje y células gliales), riñón (túbulos y glomérulos), suprarrenal (corteza y médula), páncreas (ácinos, islotes y conductos), pulmón (alveolos y epitelio bronquial), hígado (hepatocitos), esófago (epitelio), piel (epitelio), bazo (pulpa roja), ovario (estroma), cuello del útero (epitelio), testículos (túbulos), próstata (ácinos), timo, pituitaria, amígdala (centros germinales, epitelio y células plasmáticas), médula ósea, apéndice (mesotelio) y cordón umbilical (mesotelio). (Cifra total de casos normales = 33).Anormal del tejidoEl clon RWP49 tiñó 8/14 mielomas. 38/43 de otros tumores hematológicos malignos evaluados dieron positivo (incluidos 13/14 linfomas macrocíticos difusos de linfocitos B, 5/6 linfomas de linfocitos T periféricos, 4/6 linfomas foliculares, 5/5 linfomas de Hodgkin, 2/2 linfomas de células del manto, 2/2 linfomas macrocíticos anaplásicos, 1/2 maltolinfomas, 1/1 linfoma de Burkitt, 1/1 linfoma de zona marginal, 1/1 linfoma angioinmunoblástico, 1/1 linfoma de linfocitos NK/T, 1/1 linfoma de linfocitos B rico en linfocitos T y 1/1 linfoma linfoblástico). Excepto en los linfocitos infiltrantes, la proteína IgG se detectó también en 31/41 tumores malignos no linfoides (incluidos 9/10 carcinomas escamosos, 4/4 tumores hepáticos, 3/4 tumores ováricos, 3/3 tumores colorrectales, 2/2 tumores gástricos, 2/2 tumores pancreáticos, 2/2 tumores renales, 2/2 tumores prostáticos, 2/2 tumores pulmonares, 1/2 tumores mamarios y 1/2 carcinomas metastásicos de nódulos linfáticos). No se detectó ninguna tinción en los tumores tiroideos (0/4) ni en los tumores cerebrales (0/2). (Cifra total de casos anormales = 98).NCL-L-IgG está recomendado para la detección de antígeno de IgG en tejidos normales y neoplásicos, como complemento de la histopatología tradicional con tinciones histoquímicas no inmunológicas.

IGG-L-CE Page 16

Limitaciones GeneralesLa inmunohistocitoquímica es un proceso de diagnóstico en varias fases que abarca: la formación especializada en la selección de los reactivos apropiados, la selección, fijación y procesamiento de tejidos, la preparación del portaobjeto para IHQ, y la interpretación de los resultados de la tinción.La tinción de los tejidos depende de la manipulación y el procesamiento del tejido previos a la tinción. Una fijación, congelación, descongelación, lavado, secado, calentamiento o seccionamiento incorrectos, o la contaminación con otros tejidos o líquidos pueden generar artefactos, atrapamiento del anticuerpo o falsos negativos. La aparición de resultados incoherentes puede deberse a variaciones en los métodos de fijación y de inclusión, o a irregularidades inherentes al tejido.4

Una contratinción excesiva o incompleta puede poner en peligro la interpretación correcta de los resultados.La interpretación clínica de cualquier tinción o de su ausencia debe complementarse con estudios morfológicos, con el uso de los controles adecuados, y un anatomopatólogo cualificado debe evaluarla en el contexto del historial clínico del paciente y de otras pruebas diagnósticas.Los anticuerpos de Leica Biosystems Newcastle Ltd son para utilizarlos, según se indique, con secciones congeladas o incluidas en parafina, con requisitos de fijación específicos. Puede producirse una expresión inesperada del antígeno, especialmente en las neoplasias. La interpretación clínica de cualquier sección de tejido teñida debe incluir un análisis morfológico y la evaluación de los controles apropiados.

Bibliografía - General1. National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS). Protection of laboratory workers from infectious diseases transmitted

by blood and tissue; proposed guideline. Villanova, P.A. 1991; 7(9). Order code M29-P.2. Battifora H. Diagnostic uses of antibodies to keratins: a review and immunohistochemical comparison of seven monoclonal and

three polyclonal antibodies. Progress in Surgical Pathology. 6:1–15. eds. Fenoglio-Preiser C, Wolff CM, Rilke F. Field & Wood, Inc., Philadelphia.

3. Nadji M, Morales AR. Immunoperoxidase, part I: the techniques and pitfalls. Laboratory Medicine. 1983; 14:767.4. Omata M, Liew CT, Ashcavai M, Peters RL. Nonimmunologic binding of horseradish peroxidase to hepatitis B surface antigen: a

possible source of error in immunohistochemistry. American Journal of Clinical Pathology. 1980; 73:626.5. Karamchandani JR, Younes SF, Warnke RA. IgG4-related systemic sclerosing disease of the ocular adnexa. American Journal of

Clinical Pathology. 2012; 137: 699-711. 6. Janeway C, Travers P, Walport M et al. Immunobiology: The immune system in health and disease. Chapter 3. Garland Science. New

York and London. 20017. Fridman W. Fc receptors and immunoglobulin binding factors. FASEB Journal. 1991; 5: 2684-2690.

Correcciones A La Publicación AnteriorComposición del reactivo, concentración de anticuerpos, recomendaciones de uso, advertencias y precauciones.

Fecha De Publicación12 de diciembre de 2019

IGG-L-CE Page 17

Anticorpo monoclonal de camundongo líquido Novocastra Immunoglobulin GCódigo Do Produto: NCL-L-IgG

Utilização previstaPara utilização em diagnósticos in vitro.NCL-L-IgG destina-se à identificação qualitativa de moléculas de imunoglobulina G (IgG) humana em cortes de parafina por microscopia óptica. A interpretação clínica de qualquer coloração ou da sua ausência deve ser complementada por estudos morfológicos empregando os devidos controlos e deve ser avaliada por um patologista qualificado, dentro do contexto do historial clínico do doente e de outros testes de diagnóstico.

Princípio Do ProcedimentoAs técnicas de coloração imunohistoquímica (IHC) permitem que se faça a visualização de antígenos por meio da aplicação sequencial de um anticorpo específico do antígeno (o anticorpo primário), de um anticorpo secundário ao anticorpo primário, e de um complexo enzimático com um substrato cromogénico e etapas de lavagem de permeio. A activação enzimática do cromogénio resulta num produto de reacção visível no local do antígeno. A amostra pode então ser contrastada e coberta com uma lamela. Os resultados são interpretados por meio de um microscópio óptico, e ajudam a formular o diagnóstico diferencial dos processos fisiopatológicos, os quais podem ou não estar associados a antígenos específicos.

CloneRWP49

ImunogénioProteína procariótica recombinante correspondendo a 327 aminoácidos da molécula de IgG humana

EspecificidadeIgG humana

Composição Do ReagenteNCL-L-IgG é um sobrenadante líquido de cultura tecidual contendo 0,35% de ProClin™ 950 como conservante.

Classe De IgIgG1

Concentração Total De ProteínaConsultar a etiqueta da ampola para determinar a concentração total de proteína do lote específico.

Concentração De AnticorpoMaior ou igual a 59 mg/L, conforme determinado por ensaio enzimático imunoabsorvente (enzyme-linked immunosorbent assay, ELISA). Consultar a etiqueta da ampola para determinar a concentração de Ig do lote específico.

Recomendações Sobre A UtilizaçãoImunohistoquímica em cortes de inclusões em parafina. Recuperação do epítopo induzida por calor (Heat Induced Epitope Retrieval, HIER): Siga as instruções para uso em Novocastra Epitope Retrieval Solution, pH 6. Diluição sugerida: 1:200 durante 30 minutos a 25 °C. Esta recomendação serve apenas de orientação e os utilizadores devem determinar as suas diluições óptimas de trabalho. Visualização: Queira seguir as instruções de utilização de Novolink Polymer Detection Systems. Para informação adicional do produto ou assistência, contactar o seu distribuidor local ou escritório regional de Leica Biosystems ou, alternativamente, visitar o sitio web de Leica Biosystems, www.LeicaBiosystems.com O desempenho deste anticorpo deve ser validado quando utilizado com outros sistemas manuais de coloração ou plataformas automáticas.

Armazenamento E EstabilidadeArmazenar a 2–8 °C. Não congelar. Retornar à temperatura de 2–8 °C imediatamente após a utilização. Não utilizar após o prazo de validade indicado no rótulo do recipiente. As condições de armazenamento que diferirem das que se encontram especificadas acima devem ser verificadas pelo utilizador.

Preparação Das AmostrasO fixador recomendado é formol tamponado neutro a 10% para secções de tecido envolvidas em parafina.

Avisos E PrecauçõesEste reagente foi preparado a partir do sobrenadante de cultura celular. Visto ser um produto biológico, deve ser manuseado com o devido cuidado.A concentração de ProClin™ 950 é de 0,35 %. Contém o ingrediente activo 2-metilisotiazolina-3(2H)-ona e pode provocar irritação da pele, olhos, membranas mucosas e vias aéreas superiores. Use luvas descartáveis quando manipular os reagentes. Use luvas descartáveis quando manipular os reagentes.Consultar a legislação aplicável em relação ao descarte de quaisquer componentes potencialmente tóxicos.

Total Protein

IGG-L-CE Page 18

As amostras, antes e depois da sua fixação, bem como todos os materiais expostos às mesmas, devem ser manipulados como se tivessem a capacidade de transmitir infecções e devem ser descartados com as devidas precauções.¹ Não pipetar nunca os reagentes com a boca e evitar o contacto entre a pele e membranas mucosas e os reagentes e amostras. Caso os reagentes ou amostras entrem em contacto com áreas sensíveis, lavar com grandes quantidades de água. Consultar um médico.Minimizar a contaminação microbiana dos reagentes para evitar a possibilidade do aumento da coloração não específica.Os períodos de incubação ou temperaturas diferentes dos que foram especificados poderão dar azo a resultados errados. Todas as alterações desse tipo devem ser validadas pelo utilizador.

Controlo Da QualidadeAs diferenças entre os diferentes métodos e técnicas de processamento de tecidos no laboratório do utilizador podem causar uma grande variabilidade de resultados, requerendo a realização frequente de controlos internos suplementares aos procedimentos que se seguem.Os controlos devem ser amostras de autópsia/biopsia/cirurgia frescas, fixadas em formol, processadas e envolvidas em cera parafínica logo que possível, da mesma maneira que a(s) amostra(s) do(s) doente(s).

Controlo De Tecido PositivoUsado para assinalar os tecidos correctamente preparados e as técnicas de coloração indicadas.Cada conjunto de condições de testes, em cada processo de coloração, deve incluir um controlo de tecido positivo.Os tecidos com uma coloração positiva fraca são mais indicados do que os têm uma coloração positiva forte para proporcionarem um controlo de qualidade óptimo, bem como para detectar níveis reduzidos de degradação dos reagentes.2

O tecido recomendado para controle positivo é amídala.Se o controlo de tecido positivo não demonstrar uma coloração positiva, os resultados obtidos com as amostras de testes devem ser considerados inválidos.

Controlo De Tecido NegativoEste deve ser examinado depois do controlo de tecido positivo para verificar a especificidade da marcação do antígeno objectivado pelo anticorpo primário.O tecido recomendado para controle negativo é paratireoide.Alternativamente, a variedade de diferentes tipos de células presentes na maioria das secções de tecidos oferece muitas vezes locais de controlo negativo, mas isto deve ser verificado pelo utilizador.A coloração não específica, caso ocorra, tem geralmente um aspecto difuso. A coloração esporádica do tecido conjuntivo pode também ter lugar em secções de tecido excessivamente fixado em formol. Devem utilizar-se células intactas para a interpretação dos resultados da coloração. As células necróticas ou degeneradas causam muitas vezes uma coloração não específica.3 Podem verificar-se resultados positivos falsos devido à ligação não imunológica de proteínas ou de produtos da reacção do substrato. Esses resultados podem também ser causados por enzimas endógenas tais como a pseudoperoxidase (eritrócitos), a peroxidase endógena (citocromo C), ou a biotina endógena (ex. no fígado, mama, cérebro ou rim) dependendo do tipo de imunocoloração utilizado. Para diferenciar entre a actividade das enzimas endógenas e as ligações não específicas de enzimas de imunoreactividade específica, podem colorir-se tecidos adicionais dos doentes exclusivamente com substrato cromogénio ou com complexos de enzimas (avidina-biotina, estreptavidina, polímero marcado) e substrato-cromogénio, respectivamente. Se ocorrer a coloração específica no controlo de tecido negativo, os resultados dos testes feitos com as amostras do doente devem ser considerados inválidos.

Controlo De Reagente NegativoUtilizar um controlo de reagente negativo não específico em vez do anticorpo primário com uma secção de cada amostra de doente para avaliar a coloração não específica e permitir uma melhor interpretação da coloração específica no local do antígeno.

Tecido Do DoenteAnalise por último as amostras biológicas de pacientes coradas com NCL-L-IgG. A intensidade da coloração positiva deve ser avaliada dentro do contexto de qualquer coloração não específica de fundo do controlo de reagente negativo. Tal como com qualquer teste imunohistoquímico, um resultado negativo significa que o antígeno não foi detectado, e não que o antígeno se encontrava ausente das células ou tecido analisados. Se necessário, deve utilizar-se um painel de anticorpos para identificar reacções falso-negativas.

Resultados PrevistosTecidos normaisO clone RWP49 detectou a proteína IgG no citoplasma e na membrana de plasmócitos, células B da zona do manto e centros germinativos. Adicionalmente, a proteína IgG também foi detectada em diversos tecidos, incluindo cólon (epitélio), intestino delgado (epitélio), cerebelo (células de Purkinje, células da glia), rim (túbulos, glomérulos), adrenal (córtex, medula), pâncreas (ácinos, ilhotas, ductos), pulmão (alvéolos, epitélio brônquico), fígado (hepatócitos), esôfago (epitélio), pele (epitélio), baço (polpa vermelha), ovário (estroma), colo uterino (epitélio), testículo (túbulos), próstata (ácinos), timo, pituitária, amídala (centros germinativos, epitélio, plasmócitos), medula óssea, apêndice (mesotélio) e cordão umbilical (mesotélio). (Número total de casos normais = 33).Tecidos anormalO clone RWP49 corou 8/14 mielomas. 38/43 outras malignidades hematológicas avaliadas foram positivas (incluindo 13/14 linfomas de grandes células B difusas, 5/6 linfomas de células T periféricas, 4/6 linfomas foliculares, 5/5 linfomas de Hodgkin, 2/2 linfomas de células do manto, 2/2 linfomas de grandes células anaplásicas, 1/2 linfomas de tecido linfoide associado à mucosa, 1/1 linfoma de Burkitt, 1/1 linfoma de zona marginal, 1/1 linfoma angioimunoblástico, 1/1 linfoma de células NK/T, 1/1 linfoma de células B rico em células T e 1/1 linfoma linfoblástico). À exceção de linfócitos infiltrantes, a proteína IgG também foi detectada em 31/41 malignidades não linfoides (incluindo 9/10 carcinomas espinocelulares, 4/4 tumores hepáticos, 3/4 tumores ovarianos, 3/3 tumores colorretais, 2/2 tumores gástricos, 2/2 tumores pancreáticos, 2/2 tumores renais, 2/2 tumores prostáticos, 2/2 tumores pulmonares, 1/2 tumores mamários e 1/2 carcinomas metastáticos de linfonodos). Não foi detectada coloração em tumores tireoidianos (0/4) e em tumores cerebrais (0/2). (Número total de casos anormais = 98).NCL-L-IgG é recomendado para a detecção do antígeno IgG em tecidos normais e neoplásicos como um adjunto à histopatologia convencional, utilizando-se corantes histoquímicos não imunológicos.

IGG-L-CE Page 19

Limitações GeraisA imunohistoquímica é um processo diagnóstico em múltiplas etapas que consta de: uma formação especializada na selecção dos reagentes apropriados, selecção, fixação e processamento de tecidos, preparação das lâminas de IHQ e interpretação dos resultados das colorações.A coloração de tecidos depende do seu manuseamento e processamento antes da sua coloração. A fixação, congelação, descongelação, lavagem, secagem, aquecimento ou corte incorrectos das amostras, ou a sua contaminação com outros tecidos ou fluidos, podem produzir artefactos, retenção de anticorpos, ou resultados falso-negativos. Os resultados inconsistentes podem dever-se a variações nos métodos de fixação e envolvimento ou a irregularidades inerentes ao tecido.4

Uma contrastação excessiva ou incompleta pode comprometer a correcta interpretação dos resultados.A interpretação clínica de qualquer coloração ou da sua ausência deve ser complementada por estudos morfológicos empregando os devidos controlos e deve ser avaliada por um patologista qualificado, dentro do contexto do historial clínico do doente e de outros testes de diagnóstico.Os anticorpos da Leica Biosystems Newcastle Ltd destinam-se a serem utilizados, conforme indicado, em secções de tecido ou congeladas ou envolvidas em parafina, com requisitos de fixação específicos. Pode ocorrer uma expressão inesperada de antígeno, especialmente em neoplasmas. A interpretação clínica de qualquer secção de tecido colorido deverá incluir a análise morfológica e a avaliação de controlos apropriados.

Bibliografia - Geral1. National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS). Protection of laboratory workers from infectious diseases transmitted

by blood and tissue; proposed guideline. Villanova, P.A. 1991; 7(9). Order code M29-P.2. Battifora H. Diagnostic uses of antibodies to keratins: a review and immunohistochemical comparison of seven monoclonal and

three polyclonal antibodies. Progress in Surgical Pathology. 6:1–15. eds. Fenoglio-Preiser C, Wolff CM, Rilke F. Field & Wood, Inc., Philadelphia.

3. Nadji M, Morales AR. Immunoperoxidase, part I: the techniques and pitfalls. Laboratory Medicine. 1983; 14:767.4. Omata M, Liew CT, Ashcavai M, Peters RL. Nonimmunologic binding of horseradish peroxidase to hepatitis B surface antigen: a

possible source of error in immunohistochemistry. American Journal of Clinical Pathology. 1980; 73:626.5. Karamchandani JR, Younes SF, Warnke RA. IgG4-related systemic sclerosing disease of the ocular adnexa. American Journal of

Clinical Pathology. 2012; 137: 699-711. 6. Janeway C, Travers P, Walport M et al. Immunobiology: The immune system in health and disease. Chapter 3. Garland Science. New

York and London. 20017. Fridman W. Fc receptors and immunoglobulin binding factors. FASEB Journal. 1991; 5: 2684-2690.

Emendas Da Edição AnteriorComposição dos reagentes, concentração de anticorpos, recomendações de uso, avisos e precauções

Data De Emissão12 de Dezembro de 2019

IGG-L-CE Page 20

Novocastra flytande monoklonal musantikropp Immunoglobulin GProduktkod: NCL-L-IgG

Avsedd AnvändningFör in vitro diagnostisk användning.NCL-L-IgG är avsedd för kvalitativ identifiering med ljusmikroskopi av molekyler av immunglobulin G (IgG) i paraffinsnitt. Den kliniska tolkningen av all färgning eller dess frånvaro bör kompletteras med morfologiska undersökningar som använder korrekta kontroller och utvärderas av kvalificerad patolog inom ramen för patientens kliniska anamnes och andra diagnostiska tester.

Metodens PrincipImmunhistokemiska (IHC) färgningstekniker tillåter visualisering av antigener genom sekvenstillämpning av en specifik antikropp till antigenet (primär antikropp), en sekundär antikropp till den primära antikroppen och ett enzymkomplex med ett kromogent substrat med inlagda tvättsteg. Den enzymatiska aktiveringen av kromogenet resulterar i en synlig reaktionsprodukt på antigenområdet. Proverna kan då kontrastfärgas och förses med täckglas. Resultaten tolkas med ljusmikroskop och bidrar till differentialdiagnosen av patofysiologiska processer som eventuellt kan associeras till ett särskilt antigen.

KlonRWP49

ImmunogenProkaryotiskt rekombinant protein motsvarande 327 aminosyror i human IgG-molekyl.

SpecificitetHuman IgG

ReagensinnehållNCL-L-IgG är en flytande supernatant från vävnadskultur innehållande 0,35 % ProClin™ 950 som konserveringsmedel.

Ig-klassIgG1

Total ProteinkoncentrationSe flaskans etikett för total specifik proteinkoncentration för satsen.

AntikroppskoncentrationStörre än eller lika med 59 mg/l enligt bestämning med ELISA. Se flaskans etikett för specifik Ig-koncentration för satsen.

Rekommendationer Vid AnvändningImmunhistokemi på paraffinsnitt. Värmeinducerad epitopåtervinning (Heat Induced Epitope Retrieval, HIER): Följ bruksanvisningen för Novocastra Epitope Retrieval Solution pH 6. Föreslagen spädning: 1:200 i 30 minuter vid 25 °C. Detta är endast en riktlinje och användare bör själva fastställa den optimala bruksspädningen. Visualisering: Vänligen följ instruktionerna för användning i Novolink Polymer Detection Systems. Om ytterligare produktinformation eller stöd behövs, kontakta då din lokala distributör eller Leica Biosystems regionalkontor, alternativt in på Leica Biosystems webbplats, www.LeicaBiosystems.com Denna antikropps prestanda ska valideras när den används med andra manuella infärgningssystem eller automatiserade plattformar.

Förvaring Och StabilitetFörvara vid 2 °C – 8 °C. Frys ej. Återgå till 2 °C – 8 °C direkt efter användning. Använd ej efter det utgångsdatum som anges på flaskans etikett. Förvaringsförhållanden som skiljer sig från de ovannämnda måste kontrolleras av användaren.

Preparation Av ProvRekommenderat fixeringsmedel för paraffininbäddade vävnadssnitt är 10 % neutralbuffrat formalin.

Varningar Och FörsiktighetsåtgärderReagenset har förberetts från supernatanten av vävnadsodlingar. Eftersom det är en biologisk produkt bör skälig försiktighet iakttas vid hantering.Koncentrationen av ProClin™ 950 är på 0,35 %. Det innehåller den aktiva beståndsdelen 2-metylisotiazol 3(2H)-on som kan verka irriterande på hud, ögon, slemhinnor och övre luftvägar. Använd engångshandskar när reagenserna hanteras.För kassering av potentiellt toxiska komponenter hänvisas till nationella eller lokala bestämmelser.Före och efter fixering bör prover och alla material som har varit utsatta för dem hanteras som om det finns risk för att de kan överföra infektioner och kasseras med iakttagande av försiktighet.1 Pipettera aldrig reagenser med munnen och se till att huden och slemhinnorna inte kommer i kontakt med reagens och prover. Om reagens eller prover kommer i kontakt med känsliga områden, tvätta med rikliga mängder vatten. Rådgör med läkare.Minimera mikrobisk kontaminering av reagens annars kan en ökning av ospecifik färgning ske.Inkubationstider eller temperaturer som skiljer sig från dem som specificeras kan ge felaktiga resultat. Alla sådana förändringar måste kontrolleras av användaren.

Total Protein

IGG-L-CE Page 21

KvalitetskontrollSkillnader i vävnadsbehandling och tekniska metoder i användarens laboratorium kan ge stor variation i resultaten vilket kan göra det nödvändigt att genomföra regelbundna interna kontroller utöver följande metoder. Kontroller bör vara färska obduktions-/biopsi-/kirurgiprover som snarast möjligt formalinfixeras, bearbetas och paraffininbäddas på samma sätt som patientprover.

Positiv VävnadskontrollAnvänds för att ange korrekt förberedda vävnader och rätt färgningstekniker.En positiv vävnadskontroll bör ingå i varje uppsättning av testförhållanden vid varje färgningskörning.En vävnad med svag positiv färgning är mer lämplig för optimal kvalitetskontroll och för att upptäcka låga nivåer av reagensdegradering än en vävnad med stark positiv färgning.2

Rekommenderad positiv kontrollvävnad är tonsill.Om den positiva vävnadskontrollen inte uppvisar positiv färgning bör resultat med testproverna anses vara ogiltiga.

Negativ VävnadskontrollBör undersökas efter den positiva vävnadskontrollen för att fastställa specificiteten för märkningen av målantigenet med den primära antikroppen.Rekommenderad negativ kontrollvävnad är paratyroidea.Alternativt ger ofta en mängd olika celltyper som finns i de flesta vävnadssnitt negativa kontrollområden men detta bör kontrolleras av användaren.Ospecifik färgning, om det förekommer, har ofta ett diffust utseende. Sporadisk färgning av bindväv kan också observeras i snitt från överflödigt formalinfixerade vävnader. Använd intakta celler för tolkning av färgningsresultat. Nekrotiska eller degenererade celler färgar ofta ospecifikt.3 Falskt positiva resultat kan uppstå p.g.a. icke-immunologisk bindning av proteiner eller substratreaktionsprodukter. De kan också orsakas av endogena enzymer som pseudoperoxidas (erytrocyter), endogent peroxidas (cytokrom C) eller endogent biotin (t.ex. lever, bröst, hjärna, njure) beroende på typ av immunfärgning som används. För att skilja endogen enzymaktivitet eller ospecifik enzymbindning från specifik immunreaktivitet kan ytterligare patientvävnader färgas exklusivt med respektive substratkromogen eller enzymkomplex (avidin-biotin, streptavidin, märkt polymer) och substrat-kromogen. Om specifik färgning sker i den negativa vävnadskontrollen bör resultat med patientprover anses vara ogiltiga.

Negativ ReagenskontrollAnvänd en ospecifik negativ reagenskontroll istället för den primära antikroppen med ett snitt från varje patientprov för att utvärdera ospecifik färgning och tillåta bättre tolkning av specifik färgning på antigenområdet.

PatientvävnadUndersök patientprover färgade med NCL-L-IgG sist. Positiv färgningsintensitet bör utvärderas inom ramen för all ospecifik bakgrundsfärgning av den negativa reagenskontrollen. Som vid alla immunhistokemiska tester betyder ett negativt resultat att antigenet inte upptäcktes och inte att det inte förekom i de analyserade cellerna/vävnaderna. Använd vid behov en antikroppspanel för att identifiera falskt negativa reaktioner.

Förväntade ResultatNormal vävnadKlon RWP49 detekterade IgG-proteinet i cytoplasma och på membranet hos plasmaceller, B-celler i mantelzonen och embryonala centra. Dessutom detekterades IgG-protein i flera olika vävnadstyper inklusive grovtarm (epitel), tunntarm (epitel), cerebellum (Purkinjeceller, gliaceller), njure (tubuli, glomeruli), binjure (kortex, medulla), pankreas (acini, öar, dukter), lunga (alveoler, bronkialepitel), lever (hepatocyter), matstrupe (epitel), hud (epitel), mjälte (röd pulpa), äggstock (stroma), livmoderhals (epitel), testikel (tubuler), prostata (acini), brässen, hypofysen, tonsiller (embryonala centra, epitel, plasmaceller), benmärg, appendix (mesotel) och navelsträng (mesotel). (Totalt antal normala fall = 33).Onormal vävnadKlon RWP49 färgade 8/14 myelom. 38/43 andra utvärderade hematologiska maligniteter var positiva (inklusive 13/14 diffusa stora B-cell lymfom, 5/6 perifera T-cell lymfom, 4/6 follikulära lymfom, 5/5 Hodgkins lymfom, 2/2 lymfom i mantelceller, 2/2 anaplastiska storcelliga lymfom, 1/2 MALTom, 1/1 Burkitts lymfom, 1/1 lymfom i marginalzonen, 1/1 angioimmunoblastiska lymfom, 1/1 NK/T-cell lymfom, 1/1 T-cellrika B-cell lymfom och 1/1 lymfoblastiskt lymfom). Förutom infiltrerande lymfocyter detekterades IgG-protein även i 31/41 icke-lymfoida maligniteter (inklusive 9/10 skvamösa cell-karcinom, 4/4 levertumörer, 3/4 äggstockstumörer, 3/3 kolorektala tumörer, 2/2 magsäckstumörer, 2/2 tumörer i pankreas, 2/2 njurtumörer, 2/2 tumörer i prostata, 2/2 lungtumörer, 1/2 brösttumörer och 1/2 metastatiska karcinom i lymfnoder). Ingen infärgning detekterades i tumörer i sköldkörteln (0/4) och i hjärntumörer (0/2). (Totalt antal onormala fall = 98).NCL-L-IgG rekommenderas för detektering av IgG antigen i normal eller neoplastisk vävnad, som tillägg till konventionell histopatologi med användande av icke-immunologiska histokemiska färgstoffer.

Allmänna BegränsningarImmunhistokemi är en diagnostisk process i flera steg som kräver specialiserad utbildning i urvalet av lämpliga reagens, val av vävnad, fixering och bearbetning, förberedelse av IHC-objektglaset samt tolkning av färgningsresultaten.Vävnadsfärgning påverkas av hantering och bearbetning av vävnaden före färgningen. Felaktig fixering, nedfrysning, upptining, tvättning, torkning, uppvärmning, snittning eller kontaminering av andra vävnader eller vätskor kan framställa artefakter, infångande av antikroppar eller falskt negativa resultat. Motsägelsefulla resultat kan bero på variationer av fixerings- och inbäddningsmetoder eller på naturliga oregelbundenheter i vävnaden.4

Överflödig eller ofullständig kontrastfägning kan försvåra en korrekt tolkning av resultatet.Den kliniska tolkningen av all färgning eller dess frånvaro bör kompletteras med morfologiska undersökningar som använder korrekta kontroller och utvärderas av kvalificerad patolog inom ramen för patientens kliniska anamnes och andra diagnostiska tester.

IGG-L-CE Page 22

Antikroppar från Leica Biosystems Newcastle Ltd är till för användning så som anges på antingen frysta eller paraffininbäddade snitt med specifika fixeringskrav. Oväntat antigenuttryck kan ske, speciellt i neoplasmer. Morfologisk analys och utvärdering av lämpliga kontroller måste ingå i den kliniska tolkningen av alla färgade vävnadssnitt.

Bibliografi - Allmän1. National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS). Protection of laboratory workers from infectious diseases

transmitted by blood and tissue; proposed guideline. Villanova, P.A. 1991; 7(9). Order code M29-P.2. Battifora H. Diagnostic uses of antibodies to keratins: a review and immunohistochemical comparison of seven monoclonal and

three polyclonal antibodies. Progress in Surgical Pathology. 6:1–15. eds. Fenoglio-Preiser C, Wolff CM, Rilke F. Field & Wood, Inc., Philadelphia.

3. Nadji M, Morales AR. Immunoperoxidase, part I: the techniques and its pitfalls. Laboratory Medicine. 1983; 14:767.4. Omata M, Liew CT, Ashcavai M, Peters RL. Nonimmunologic binding of horseradish peroxidase to hepatitis B surface antigen: a

possible source of error in immunohistochemistry. American Journal of Clinical Pathology. 1980; 73:626.5. Karamchandani JR, Younes SF, Warnke RA. IgG4-related systemic sclerosing disease of the ocular adnexa. American Journal of

Clinical Pathology. 2012; 137: 699-711. 6. Janeway C, Travers P, Walport M et al. Immunobiology: The immune system in health and disease. Kapitel 3. Garland Science.

New York and London. 2001.7. Fridman W. Fc receptors and immunoglobulin binding factors. FASEB Journal. 1991; 5: 2684-2690.

Rättelser Av Tidigare UtgivningReagenssammansättning, antikroppskoncentration, rekommendationer om användning, varningar och försiktighetsåtgärder

Utgivningsdatum12 december 2019

IGG-L-CE Page 23

Υγρό μονοκλωνικό αντίσωμα ποντικού Novocastra

Immunoglobulin GΚωδικός είδους: NCL-L-IgGΧρήση Για Την Οποία ΠροορίζεταιΓια in vitro διαγνωστική χρήση.Το NCL-L-IgG προορίζεται για την ποιοτική ταυτοποίηση με μικροσκοπία φωτός των μορίων ανθρώπινης ανοσοσφαιρίνης G (IgG) σε τομές παραφίνης. Η κλινική ερμηνεία οποιασδήποτε χρώσης ή της απουσίας της θα πρέπει να συμπληρώνεται με μορφολογικές μελέτες που χρησιμοποιούν σωστούς μάρτυρες και θα πρέπει να αξιολογείται στα πλαίσια του κλινικού ιστορικού του ασθενούς και άλλων διαγνωστικών εξετάσεων από ειδικευμένο παθολογοανατόμο.

Αρχή Της ΔιαδικασίαςΟι τεχνικές ανοσοϊστοχημικής (IHC) χρώσης επιτρέπουν την οπτικοποίηση των αντιγόνων μέσω της διαδοχικής εφαρμογής ενός ειδικού αντισώματος στο αντιγόνο (πρωτοταγές αντίσωμα), ενός δευτεροταγούς αντισώματος στο πρωτοταγές αντίσωμα και ενός ενζυμικού συμπλόκου με χρωμογόνο υπόστρωμα με παρεμβαλλόμενα βήματα πλύσης. Η ενζυμική ενεργοποίηση του χρωμογόνου έχει ως αποτέλεσμα το σχηματισμό ενός ορατού προϊόντος αντίδρασης στη θέση του αντιγόνου. Το δείγμα μπορεί κατόπιν να υποβληθεί σε αντίχρωση και να καλυφθεί με καλυπτρίδα. Τα αποτελέσματα ερμηνεύονται με χρήση μικροσκοπίου φωτός και βοηθούν στη διαφορική διάγνωση παθοφυσιολογικών εξεργασιών, οι οποίες ενδέχεται ή όχι να σχετίζονται με ένα συγκεκριμένο αντιγόνο.

ΚλώνοςRWP49

ΑνοσογόνοΠροκαρυωτική ανασυνδυασμένη πρωτεΐνη που αντιστοιχεί σε 327 αμινοξέα του μορίου της ανθρώπινης IgG

ΕιδικότηταΑνθρώπινη IgG

Σύνθεση ΑντιδραστηρίουΤο NCL-L-IgG είναι ένα υγρό υπερκείμενο ιστοκαλλιέργειας που περιέχει αζίδιο 0,35% ProClin™ 950 ως συντηρητικό.

Τάξη IgIgG1

Ολική Συγκέντρωση ΠρωτεΐνηςΓια την ολική συγκέντρωση πρωτεΐνης που είναι ειδική για την εκάστοτε παρτίδα, ανατρέξτε στην ετικέτα του φιαλιδίου.

Συγκέντρωση ΑντισώματοςΜεγαλύτερη ή ίση με 59 mg/L, όπως προσδιορίζεται με ELISA. Για τη συγκέντρωση Ig που είναι ειδική για την εκάστοτε παρτίδα, ανατρέξτε στην ετικέτα του φιαλιδίου.

Συστάσεις Για Τη ΧρήσηΑνοσοϊστοχημεία σε παρασκευάσματα παραφίνης. Ανάκτηση επιτόπου επαγόμενη με θερμότητα (Heat Induced Epitope Retrieval, HIER): Ακολουθήστε τις οδηγίες χρήσης του Novocastra Epitope Retrieval Solution pH 6. Προτεινόμενη διάλυση: 1:200 επί 30 λεπτά σε 25 °C. Παρέχεται ως οδηγός και οι χρήστε θα πρέπει να καθορίζουν τις δικές τους διαλύσεις εργασίας.Απεικόνιση: Παρακαλούμε ακολουθήστε τις οδηγίες χρήσης στο Novolink Polymer Detection Systems. Για περισσότερες πληροφορίες για το προϊόν ή για υποστήριξη, επικοινωνήστε με τον τοπικό διανομέα ή το περιφερειακό γραφείο της Leica Biosystems ή εναλλακτικά επισκεφθείτε τον ιστότοπο της Leica Biosystems, www.LeicaBiosystems.com Η απόδοση του συγκεκριμένου αντισώματος θα πρέπει να επικυρωθεί όταν χρησιμοποιηθεί μαζί με άλλα μη αυτόματα συστήματα χρώσης ή αυτοματοποιημένες πλατφόρμες.

Φύλαξη Και ΣταθερότηταΦυλάσσετε στους 2–8 °C. Μην καταψύχετε. Επαναφέρετε στους 2–8 °C αμέσως μετά τη χρήση. Μη χρησιμοποιείτε μετά την ημερομηνία λήξης που αναγράφεται στην ετικέτα του φιαλιδίου. Τυχόν συνθήκες φύλαξης διαφορετικές από εκείνες που καθορίζονται παραπάνω πρέπει να επαληθεύονται από το χρήστη.

Παρασκευή ΔείγματοςΤο συνιστώμενο μονιμοποιητικό είναι ουδέτερο ρυθμιστικό διάλυμα φορμόλης 10% για τομές ιστού εγκλεισμένες σε παραφίνη.

Προειδοποιήσεις Και ΠροφυλάξειςΤο αντιδραστήριο αυτό έχει παρασκευαστεί από το υπερκείμενο κυτταροκαλλιέργειας. Επειδή είναι βιολογικό προϊόν, θα πρέπει να δίνεται εύλογη προσοχή κατά το χειρισμό του.Η συγκέντρωση του ProClin™ 950 είναι 0,35 %. Περιέχει το δραστικό συστατικό 2-μεθυλισοθειαζολ-3(2H)-όνη και ενδέχεται να προκαλέσει ερεθισμό στο δέρμα, τους οφθαλμούς, τους βλεννογόνους και την άνω αναπνευστική οδό. Φοράτε αναλώσιμα γάντια κατά το χειρισμό των αντιδραστηρίων.Συμβουλευτείτε τους ομοσπονδιακούς, πολιτειακούς ή τοπικούς κανονισμούς για απόρριψη τυχόν δυνητικώς τοξικών συστατικών.Ο χειρισμός δειγμάτων, πριν και μετά τη μονιμοποίηση, καθώς και όλων των υλικών που έχουν εκτεθεί σε αυτά, θα πρέπει να γίνεται ως εάν ήταν δυνητικά μετάδοσης λοίμωξης και η απόρριψή τους να πραγματοποιείται λαμβάνοντας τις σωστές προφυλάξεις.1 Μην αναρροφάτε ποτέ με πιπέτα αντιδραστήρια με το στόμα και αποφύγετε την επαφή του δέρματος και των βλεννογόνων με αντιδραστήρια και δείγματα. Εάν τα αντιδραστήρια ή τα δείγματα έλθουν σε επαφή με ευαίσθητες περιοχές, πλύνετε με άφθονες ποσότητες νερού. Ζητήστε τη συμβουλή ιατρού.

Total Protein

IGG-L-CE Page 24

Ελαχιστοποιήστε τη μικροβιακή μόλυνση των αντιδραστηρίων, διότι ενδέχεται να συμβεί αύξηση μη ειδικής χρώσης.Χρόνοι ή θερμοκρασίες επώασης διαφορετικές από εκείνες που καθορίζονται ενδέχεται να δώσουν εσφαλμένα αποτελέσματα. Τυχόν τέτοιες μεταβολές πρέπει να επικυρώνονται από το χρήστη.

Ποιοτικός ΈλεγχοςΤυχόν διαφορές στην επεξεργασία των ιστών και τις τεχνικές διαδικασίες στο εργαστήριο του χρήστη ενδέχεται να προκαλέσουν σημαντική μεταβλητότητα στα αποτελέσματα, καθιστώντας αναγκαία την τακτική εκτέλεση εσωτερικών ελέγχων επιπλέον των ακόλουθων διαδικασιών.Οι μάρτυρες θα πρέπει να είναι φρέσκα δείγματα νεκροψίας/βιοψίας/χειρουργικά δείγματα, τα οποία είναι μονιμοποιημένα σε φορμόλη, επεξεργασμένα και εγκλεισμένα σε κηρό παραφίνης, το συντομότερο δυνατό με τον ίδιο τρόπο με το(α) δείγμα(τα) του ασθενούς.

Θετικός Μάρτυρας ΙστούΧρησιμοποιείται για να υποδεικνύει σωστά παρασκευασμένους ιστούς και σωστές τεχνικές χρώσης.Θα πρέπει να περιλαμβάνεται ένας θετικός μάρτυρας ιστού για κάθε σύνολο συνθηκών εξέτασης σε κάθε εκτέλεση χρώσης.Ένας ιστός με ασθενή θετική χρώση είναι πιο κατάλληλος από έναν ιστό με ισχυρή θετική χρώση για βέλτιστο έλεγχο ποιότητας και για την ανίχνευση πολύ μικρών επιπέδων τυχόν αποδόμησης των αντιδραστηρίων.2

Συνιστώμενος ιστός θετικού μάρτυρα είναι οι αμυγδαλές.Εάν ο θετικός μάρτυρας ιστού δεν παρουσιάζει θετική χρώση, τα αποτελέσματα με τα δείγματα της εξέτασης θα πρέπει να θεωρούνται άκυρα.

Αρνητικός Μάρτυρας ΙστούΘα πρέπει να εξετάζεται μετά τον θετικό μάρτυρα ιστού για την επαλήθευση της ειδικότητας της επισήμανσης του αντιγόνου-στόχου από το πρωτοταγές αντίσωμα.Συνιστώμενος ιστός αρνητικού μάρτυρα είναι οι παραθυρεοειδείς.Εναλλακτικά, η ποικιλία διαφόρων κυτταρικών τύπων που υπάρχουν στις περισσότερες τομές ιστών παρέχει συχνά θέσεις αρνητικού μάρτυρα, αλλά αυτό πρέπει να επαληθεύεται από το χρήστη.Μη ειδική χρώση, εάν υπάρχει, έχει συνήθως διάχυτη εμφάνιση. Ενδέχεται επίσης να παρατηρηθεί σποραδική χρώση του συνδετικού ιστού σε τομές από ιστούς που έχουν μονιμοποιηθεί με υπερβολική ποσότητα φορμόλης. Χρησιμοποιείτε άθικτα κύτταρα για την ερμηνεία των αποτελεσμάτων της χρώσης. Νεκρωτικά ή εκφυλισμένα κύτταρα παρουσιάζουν συχνά μη ειδική χρώση.3 Ενδέχεται να παρατηρηθούν ψευδώς θετικά αποτελέσματα λόγω μη ανοσολογικής δέσμευσης των πρωτεϊνών ή των προϊόντων αντίδρασης του υποστρώματος. Ενδέχεται επίσης να προκληθούν από ενδογενή ένζυμα, όπως η ψευδοϋπεροξειδάση (ερυθροκύτταρα), η ενδογενής υπεροξειδάση (κυτόχρωμα C) ή η ενδογενής βιοτίνη (π.χ. ήπαρ, μαστός, εγκέφαλος, νεφρός) ανάλογα με τον τύπο ανοσοχρώσης που χρησιμοποιείται. Για τη διαφοροποίηση της ενδογενούς ενζυμικής δραστικότητας ή της μη ειδικής δέσμευσης των ενζύμων από ειδική ανοσοαντιδραστικότητα, είναι δυνατό να χρωματιστούν αποκλειστικά επιπλέον ιστοί ασθενών με χρωμογόνο υποστρώματος ή ενζυμικά σύμπλοκα (αβιδίνη-βιοτίνη, στρεπταβιδίνη, σημασμένο πολυμερές) και υπόστρωμα-χρωμογόνο, αντίστοιχα. Εάν παρουσιαστεί ειδική χρώση στον αρνητικό μάρτυρα ιστού, τα αποτελέσματα με τα δείγματα ασθενούς θα πρέπει να θεωρούνται άκυρα.

Αρνητικός Μάρτυρας ΑντιδραστηρίουΧρησιμοποιείτε έναν μη ειδικό αρνητικό μάρτυρα αντιδραστηρίου αντί του πρωτοταγούς αντισώματος με μια τομή κάθε δείγματος ασθενούς για την αξιολόγηση μη ειδικής χρώσης και για να επιτρέπεται καλύτερη ερμηνεία της ειδικής χρώσης στη θέση του αντιγόνου.

Ιστός ΑσθενούςΕξετάστε τα δείγματα ασθενών που έχουν υποβληθεί σε χρώση με NCL-L-IgG τελευταία. Η ένταση της θετικής χρώσης θα πρέπει να εκτιμάται στα πλαίσια τυχόν μη ειδικής χρώσης υποβάθρου του αρνητικού μάρτυρα αντιδραστηρίου. Όπως συμβαίνει με οποιαδήποτε ανοσοϊστοχημική εξέταση, ένα αρνητικό αποτέλεσμα σημαίνει ότι το αντιγόνο δεν ανιχνεύτηκε, όχι ότι το αντιγόνο δεν υπήρχε στα κύτταρα/στον ιστό που εξετάστηκε. Εάν είναι απαραίτητο, χρησιμοποιήστε μια σειρά αντισωμάτων για την αναγνώριση ψευδώς αρνητικών αντιδράσεων.

Αναμενόμενα ΑποτελέσματαΦυσιολογικοί ιστοίΟ κλώνος RWP49 ανίχνευσε την πρωτεΐνη IgG στο κυτταρόπλασμα και τη μεμβράνη των πλασματοκυττάρων, των B κυττάρων της ζώνης του μανδύα και των βλαστικών κέντρων. Επιπλέον, η πρωτεΐνη IgG ανιχνεύτηκε επίσης σε διάφορους ιστούς, στους οποίους συμπεριλαμβάνονταν το κόλον (επιθήλιο), το λεπτό έντερο (επιθήλιο), η παρεγκεφαλίδα (κύτταρα Purkinje, νευρογλοιακά κύτταρα), ο νεφρός (σωληνάρια, σπειράματα), τα επινεφρίδια (φλοιός, μυελός), το πάγκρεας (κυψελίδες, νησίδια, πόροι), οι πνεύμονες (κυψελίδες, επιθήλιο των βρόγχων), το ήπαρ (ηπατοκύτταρα), ο οισοφάγος (επιθήλιο), το δέρμα (επιθήλιο), ο σπλήνας (ερυθρός πολφός), οι ωοθήκες (στρώμα), ο τράχηλος της μήτρας (επιθήλιο), οι όρχεις (σωληνάρια), ο προστάτης (κυψελίδες), ο θύμος αδένας, η υπόφυση, οι αμυγδαλές (βλαστικά κέντρα, επιθήλιο, πλασματοκύτταρα), ο μυελός των οστών, η σκωληκοειδής απόφυση (μεσοθήλιο) και ο ομφάλιος λώρος (μεσοθήλιο). (Συνολικός αριθμός φυσιολογικών περιστατικών = 33).Ανώμαλη ιστούΟ κλώνος RWP49 προκάλεσε χρώση σε 8/14 μυελώματα. 38/43 άλλες αιματολογικές κακοήθειες που αξιολογήθηκαν ήταν θετικές (στις οποίες συμπεριλαμβάνονταν 13/14 διάχυτα λεμφώματα από μεγάλα B κύτταρα, 5/6 περιφερικά λεμφώματα από T κύτταρα, 4/6 θυλακιώδη λεμφώματα, 5/5 λεμφώματα Hodgkin, 2/2 λεμφώματα της ζώνης του μανδύα, 2/2 αναπλαστικά μεγαλοκυτταρικά λεμφώματα, 1/2 MALTώματα, 1/1 λέμφωμα Burkitt, 1/1 λέμφωμα της οριακής ζώνης, 1/1 αγγειοανοσοβλαστικό λέμφωμα, 1/1 λέμφωμα από NK/T κύτταρα, 1/1 Β κυτταρικό λέμφωμα πλούσιο σε Τ κύτταρα και 1/1 λεμφοβλαστικό λέμφωμα). Εκτός από τα διηθητικά λεμφοκύτταρα, η πρωτεΐνη IgG ανιχνεύτηκε επίσης σε 31/41 μη λεμφικές κακοήθειες (στις οποίες συμπεριλαμβάνονταν 9/10 ακανθοκυτταρικά καρκινώματα, 4/4 όγκοι του ήπατος, 3/4 όγκοι των ωοθηκών, 3/3 ορθοκολικοί όγκοι, 2/2 όγκοι του στομάχου, 2/2 όγκοι του παγκρέατος, 2/2 όγκοι του νεφρού, 2/2 όγκοι του προστάτη, 2/2 όγκοι των πνευμόνων, 1/2 όγκοι των μαστών και 1/2 μεταστατικά καρκινώματα των λεμφαδένων). Δεν ανιχνεύτηκε καμία χρώση σε όγκους του θυρεοειδούς (0/4) και όγκους του εγκεφάλου (0/2). (Συνολικός αριθμός μη φυσιολογικών περιστατικών = 98).Το NCL-L-IgG συνιστάται για την ανίχνευση του αντιγόνου IgG σε φυσιολογικό και νεοπλασματικό ιστό, ως συμπλήρωμα της συμβατικής ιστοπαθολογίας χρησιμοποιώντας μη ανοσολογικές ιστοχημικές χρώσεις.

Γενικοί ΠεριορισμοίΗ ανοσοϊστοχημεία είναι μια διαγνωστική διεργασία πολλαπλών βημάτων, η οποία αποτελείται από ειδικευμένη εκπαίδευση στην επιλογή των κατάλληλων αντιδραστηρίων, επιλογή ιστού, μονιμοποίηση και επεξεργασία, προετοιμασία της πλάκας IHC και ερμηνεία των αποτελεσμάτων της χρώσης.

IGG-L-CE Page 25

Η χρώση του ιστού εξαρτάται από το χειρισμό και την επεξεργασία του ιστού πριν από τη χρώση. Τυχόν εσφαλμένη μονιμοποίηση, κατάψυξη, απόψυξη, πλύση, στέγνωμα, θέρμανση, τομή ή μόλυνση με άλλους ιστούς ή υγρά ενδέχεται να παράγει μορφώματα, παγίδευση αντισώματος ή ψευδώς αρνητικά αποτελέσματα. Τυχόν ασυνεπή αποτελέσματα ενδέχεται να οφείλονται σε παραλλαγές των μεθόδων μονιμοποίησης και εγκλεισμού ή σε εγγενείς ανωμαλίες εντός του ιστού.4

Τυχόν υπερβολική ή ατελής αντίχρωση ενδέχεται να διακυβεύσει τη σωστή ερμηνεία των αποτελεσμάτων.Η κλινική ερμηνεία οποιασδήποτε χρώσης ή της απουσίας της θα πρέπει να συμπληρώνεται με μορφολογικές μελέτες που χρησιμοποιούν σωστούς μάρτυρες και θα πρέπει να αξιολογείται στα πλαίσια του κλινικού ιστορικού του ασθενούς και άλλων διαγνωστικών εξετάσεων από ειδικευμένο παθολογοανατόμο.Τα αντισώματα που παρέχονται από την Leica Biosystems Newcastle Ltd προορίζονται για χρήση, όπως υποδεικνύεται, είτε σε κατεψυγμένες είτε σε εγκλεισμένες σε παραφίνη τομές, με ειδικές απαιτήσεις μονιμοποίησης. Ενδέχεται να παρουσιαστεί μη αναμενόμενη έκφραση αντιγόνου, ειδικά σε νεοπλάσματα. Η κλινική ερμηνεία οποιασδήποτε χρωματισμένης τομής ιστού πρέπει να περιλαμβάνει μορφολογική ανάλυση και την αξιολόγηση των κατάλληλων μαρτύρων.

Βιβλιογραφία - Γενική1. National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS). Protection of laboratory workers from infectious diseases

transmitted by blood and tissue; proposed guideline. Villanova, P.A. 1991; 7(9). Order code M29-P.2. Battifora H. Diagnostic uses of antibodies to keratins: a review and immunohistochemical comparison of seven monoclonal and

three polyclonal antibodies. Progress in Surgical Pathology. 6:1–15. eds. Fenoglio-Preiser C, Wolff CM, Rilke F. Field & Wood, Inc., Philadelphia.

3. Nadji M, Morales AR. Immunoperoxidase, part I: the techniques and pitfalls. Laboratory Medicine. 1983; 14:767.4. Omata M, Liew CT, Ashcavai M, Peters RL. Nonimmunologic binding of horseradish peroxidase to hepatitis B surface antigen: a

possible source of error in immunohistochemistry. American Journal of Clinical Pathology. 1980; 73:626.5. Karamchandani JR, Younes SF, Warnke RA. IgG4-related systemic sclerosing disease of the ocular adnexa. American Journal of

Clinical Pathology. 2012; 137: 699-711. 6. Janeway C, Travers P, Walport M et al. Immunobiology: The immune system in health and disease. Chapter 3. Garland Science. New

York and London. 20017. Fridman W. Fc receptors and immunoglobulin binding factors. FASEB Journal. 1991; 5: 2684-2690.

Τροποποιήσεις Στην Προηγούμενη ΈκδοσηΣύνθεση αντιδραστηρίου, συγκέντρωση αντισώματος, συστάσεις για χρήση, προειδοποιήσεις και προφυλάξεις

Ημερομηνία Έκδοσης12 Δεκεμβρίου 2019

IGG-L-CE Page 26

Novocastra flydende monoklonalt muse-antistofImmunoglobulin GProduktkode: NCL-L-IgG

Tilsigtet AnvendelseTil in vitro diagnostisk anvendelse.NCL-L-IgG er beregnet til kvalitativ identifikation med lysmikroskop af humant immunglobulin G (IgG) i paraffinsnit. Klinisk fortolkning af farvning eller mangel derpå skal suppleres med morfologiske undersøgelser under anvendelse af passende kontroller og bør evalueres i sammenhæng med patientens kliniske historie og andre diagnostiske tests af en kvalificeret patolog.

ProcedureprincipImmunhistokemiske (IHC) farvningsteknikker muliggør visualisering af antigener via sekventiel tilsætning af et specifikt antistof mod antigenet (primært antistof), et sekundært antistof mod det primære antistof og et enzym kompleksbundet til et kromogent substrat med indskudte vasketrin. Den enzymatiske aktivering af kromogenet resulterer i et synligt reaktionsprodukt på antigenstedet. Prøven kan derefter kontrastfarves og dækkes med et dækglas. Resultaterne fortolkes ved anvendelse af et lysmikroskop og medvirker til differentiel diagnose af patofysiologiske processer, som muligvis kan være associeret med et bestemt antigen.

KlonRWP49

ImmunogenProkaryotisk rekombinant protein svarende til 327 aminosyrer i det humane IgG-molekyle

SpecificitetHumant IgG

ReagenssammensætningNCL-L-IgG er en flydende vævskultursupernatant, der indeholder 0,35 % ProClin™ 950 som konserveringsmiddel.

Ig-klasseIgG1

TotalproteinkoncentrationSe etiketten på hætteflasken for lotspecifik totalproteinkoncentration.

AntistofkoncentrationStørre end eller lig med 59 mg/l som bestemt med ELISA. Se etiketten på hætteflasken for lotspecifik Ig-koncentration.

Anbefalinger Vedrørende AnvendelseImmunhistokemi på paraffinsnit. Varmeinduceret epitopdemaskering (Heat Induced Epitope Retrieval, HIER): Følg venligst brugsanvisningen til Novocastra Epitope Retrieval Solution pH 6. Foreslået fortynding: 1:200 ved 30 minutter ved 25 °C. Disse retningslinjer er vejledende, og brugeren bør selv bestemme egne optimale brugsopløsninger. Visualisering: Følg venligst vejledningen i Novolink Polymer Detection Systems. Yderligere produktinformation og support fås ved henvendelse til lokal forhandler eller Leica Biosystems regionskontor - samt på vores hjemmeside: www.LeicaBiosystems.com Dette antistofs funktion bør valideres, når det anvendes med andre manuelle farvningssystemer eller automatiserede platforme.

Opbevaring Og HoldbarhedOpbevares ved 2–8 °C. Må ikke fryses. Sættes tilbage til 2–8 °C umiddelbart efter brug. Må ikke anvendes efter udløbsdatoen angivet på hætteflaskens etikette. Andre opbevaringsbetingelser end de ovenfor angivne skal verificeres af brugeren.

PrøveklargøringDet anbefalede fiksativ er 10% neutralbufferjusteret formalin til paraffinindstøbte vævssnit.

Advarsler Og ForholdsreglerDette reagens er fremstillet ud fra supernatanten af en cellekultur. Da det er et biologisk produkt, skal der tages fornuftige sikkerhedsforanstaltninger ved dets håndtering.Koncentrationen af ProClin™ 950 er 0,35 %. Det indeholder det aktive indholdsstof 2-methylisothiazol-3(2H)-one og kan forårsage irritation af hud, øjne, slimhinder og øvre luftveje. Der skal anvendes handsker ved håndtering af reagenser.Konsulter landsdækkende og lokale love og regler vedrørende bortskaffelse af alle potentielt toksiske komponenter.Prøver skal før og efter fiksering, lige som alle materialer eksponeret mod prøverne, håndteres som potentielt smittefarlige og bortskaffes under iagttagelse af passende forholdsregler1. Pipetter aldrig reagenser med munden og undgå, at reagenser og prøver kommer i kontakt med huden eller slimhinder. Hvis reagenser eller prøver kommer i kontakt med følsomme områder, skal der skylles efter med rigelige mængder vand. Søg læge.Minimer mikrobiel kontaminering af reagenserne, da der ellers kan forekomme øget uspecifik farvning.Inkubationstider eller -temperaturer andre end de specificerede kan give fejlagtige resultater. Alle sådanne ændringer skal valideres af brugeren.

Total Protein

IGG-L-CE Page 27

KvalitetskontrolForskelle i behandlingen af væv og forskelle i tekniske procedurer i brugerens laboratorium kan frembringe betydeligt varierende resultater og nødvendiggøre regelmæssig udførelse af kontroller på stedet ud over nedenstående procedurer. Kontrollerne skal være friske autopsier/biopsier/kirurgiske prøver fikseret i formalin og behandlet og indstøbt i paraffin så hurtigt som muligt på samme måde som patientprøver.

Positiv VævskontrolAnvendes til påvisning af, at vævet er fremstillet korrekt, og at der er anvendt korrekte farvningsteknikker.Der bør inkluderes en positiv vævskontrol for hvert sæt testbetingelser i hver farvekørsel.Svagt positivt farvet væv er mere egnet end kraftigt positivt farvet væv til optimal kvalitetskontrol og påvisning af små niveauer af reagensnedbrydning.2

Anbefalet væv til positiv kontrol er tonsil.Hvis den positive vævskontrol ikke udviser positiv farvning, skal resultater af testprøverne kasseres.

Negativ VævskontrolSkal undersøges efter den positive vævskontrol for at sikre, at det primære antistof mærker målantigenet specifikt.Anbefalet væv til negativ kontrol er parathyroidea.Alternativt frembyder de mange forskellige celletyper, der er til stede i de fleste vævssnit, ofte negative kontrolsteder, men dette skal verificeres af brugeren.Uspecifik farvning har, hvis til stede, ofte et diffust udseende. Sporadisk farvning af bindevæv kan ligeledes observeres i vævssnit af væv, der er fikseret for kraftigt i formalin. Anvend intakte celler til fortolkning af farvningsresultaterne. Nekrotiske eller degenererede celler farves ofte mere uspecifikt.3 Der kan eventuelt ses falske positive resultater, der skyldes non-immunologisk binding af proteiner eller substratreaktionsprodukter. Dette kan ligeledes skyldes endogene enzymer, såsom pseudoperoxidase (erytrocytter), endogen peroxidase (cytochrom C) eller endogent biotin (f.eks. lever, bryst, hjerne, nyre) afhængigt af den anvendte type immunfarve. For at differentiere mellem endogen enzymaktivitet eller uspecifik enzymbinding og specifik immunreaktivitet kan yderligere patientvæv eventuelt farves udelukkende med henholdsvis substratkromogen eller enzymkomplekser (avidin-biotin, streptavidin, mærket polymer) og substratkromogen. Hvis der optræder specifik farvning i den negative vævskontrol, skal resultaterne af patientprøverne kasseres.

Negativ ReagenskontrolAnvend en uspecifik negativ reagenskontrol i stedet for det primære antistof på et vævssnit af hver patientprøve for at vurdere uspecifik farvning og muliggøre bedre fortolkning af specifik farvning på antigenstedet.

PatientvævUndersøg patientpræparater farvet med NCL-L-IgG til sidst. Intensiteten af positiv farvning bør vurderes i sammenhæng med eventuel uspecifik baggrundsfarvning af den negative reagenskontrol. Som med alle immunhistokemiske tests betyder et negativt resultat, at antigenet ikke blev påvist. Ikke at antigenet var fraværende i de analyserede celler eller det analyserede væv. Om nødvendigt anvendes et panel af antistoffer til identifikation af falske negative reaktioner.

Forventede ResultaterNormalt vævKlon RWP49 påviste IgG-proteinet i cytoplasmaet og på membranen af plasmaceller, B-celler i mantle-zonen og kimcentre. Der blev desuden detekteret IgG-protein i en række væv, herunder colon (epitel), tyndtarm (epitel), cerebellum (Purkinje-celler, glialceller), nyre (tubuli, glomeruli), binyre (cortex, medulla), pancreas (acini, øer, kanaler), lunge (alveoli, bronkieepitel), lever (hepatocytter), øsofagus (epitel), hud (epitel), milt (pulpa splenica), ovarie (stroma), cervix (epitel), testis (tubuli), prostata (acini), thymus, hypofyse, tonsil (kimcentre, epitel, plasmaceller), knoglemarv, appendix (mesothel) og navlestreng (mesothel). (Samlet antal normale tilfælde = 33).Abnormt vævKlon RWP49 farvede 8/14 myelomer. 38/43 andre hæmatologiske maligniteter, der blev evalueret, var positive (inklusive 13/14 diffuse store B-cellelymfomer, 5/6 perifere T-cellelymfomer, 4/6 follikellymfomer, 5/5 Hodgkins lymfomer, 2/2 mantle-cellelymfomer, 2/2 anaplastiske storcellelymfomer, 1/2 maltomer, 1/1 Burkitts lymfom, 1/1 randzonelymfomer, 1/1 angioimmunoblastiske lymfomer, 1/1 NK/T-cellelymfom, 1/1 T-cellerigt B-cellelymfom og 1/1 lymfoblastiske lymfomer). Med undtagelse af infiltrerende lymfocytter blev der endvidere detekteret IgG-protein i 31/41 ikke-lymfoide maligniteter (inklusive 9/10 pladecellekarcinomer, 4/4 levertumorer, 3/4 ovarietumorer, 3/3 kolorektale tumorer, 2/2 tumorer i maven, 2/2 tumorer i pancreas, 2/2 nyretumorer, 2/2 tumorer i prostata, 2/2 lungetumorer, 1/2 tumorer i brystet og 1/2 metastatiske karcinomer i lymfekirtler). Der blev ikke påvist farvning i tumorer i thyroidea (0/4) eller hjernetumorer (0/2). (Samlet antal unormale tilfælde = 98).NCL-L-IgG anbefales til detektion af IgG-antigen i normale og neoplastiske væv, som et hjælpemiddel til traditionel histopatologi ved brug af ikke-immunologiske histokemiske farvninger.

Generelle BegrænsningerImmunhistokemi er en diagnostisk proces bestående af mange trin, der omfatter specialiseret uddannelse i valg af passende reagenser, vævsselektion, -fiksering og -behandling samt fremstilling af IHC-objektglas og fortolkning af farvningsresultaterne.Vævsfarvning er afhængig af håndteringen og behandlingen af vævet inden farvning. Forkert fiksering, frysning, optøning, vask, tørring, opvarmning, sektionering eller kontaminering med andet væv eller andre væsker kan frembringe artefakter, indfangning af antistof eller falske negative resultater. Inkonsistente resultater kan skyldes variationer i fikserings- og indstøbningsmetoder eller irregulariteter indeholdt i vævet.4

For kraftig eller ukomplet kontrastfarvning kan gøre korrekt fortolkning af resultaterne vanskelig.Klinisk fortolkning af farvning eller mangel derpå skal suppleres med morfologiske undersøgelser under anvendelse af passende kontroller og bør evalueres i sammenhæng med patientens kliniske historie og andre diagnostiske tests af en kvalificeret patolog.Antistoffer fra Leica Biosystems Newcastle Ltd er som angivet beregnet til anvendelse på enten frosne eller paraffinindstøbte vævssnit med specifikke krav til fiksering. Der kan forekomme uventet antigenekspression, navnlig i neoplasmer. Den kliniske fortolkning af alle farvede vævssnit skal indbefatte morfologisk analyse og evaluering af passende kontroller.

IGG-L-CE Page 28

Bibliografi - Generelt1. National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS). Protection of laboratory workers from infectious diseases

transmitted by blood and tissue; proposed guideline. Villanova, P.A. 1991;7(9). Order code M29-P.2. Battifora H. Diagnostic uses of antibodies to keratins: a review and immunohistochemical comparison of seven monoclonal and

three polyclonal antibodies. Progress in Surgical Pathology. 6:1–15. eds. Fenoglio-Preiser C, Wolff CM, Rilke F. Field & Wood, Inc., Philadelphia.

3. Nadji M, Morales AR. Immunoperoxidase, part I: the techniques and pitfalls. Laboratory Medicine. 1983; 14:767.4. Omata M, Liew CT, Ashcavai M, Peters RL. Nonimmunologic binding of horseradish peroxidase to hepatitis B surface antigen: a

possible source of error in immunohistochemistry. American Journal of Clinical Pathology. 1980; 73:626.5. Karamchandani JR, Younes SF, Warnke RA. IgG4-related systemic sclerosing disease of the ocular adnexa. American Journal of

Clinical Pathology. 2012; 137: 699-711. 6. Janeway C, Travers P, Walport M et al. Immunobiology: The immune system in health and disease. Chapter 3. Garland Science. New

York and London. 20017. Fridman W. Fc receptors and immunoglobulin binding factors. FASEB Journal. 1991; 5: 2684-2690.

Rettelser Til Tidligere UdgaveReagenssammensætning, antistofkoncentration, henstillinger til brug, advarsler og forsigtighedsregler.

Udgivelsesdato12 december 2019

IGG-L-CE Page 29

Novocastra vloeibaar monoklonaal muisantilichaamImmunoglobulin GProductcode: NCL-L-IgG

Beoogd GebruikVoor gebruik bij in-vitro-diagnostiek.NCL-L-IgG is bedoeld voor de kwalitatieve identificatie, met behulp van lichtmicroscopie, van humane immunoglobuline G (IgG)-moleculen in paraffinecoupes. De klinische interpretatie van iedere kleuring of de afwezigheid ervan moet worden aangevuld met morfologisch onderzoek en goede controles. De interpretatie moet worden geëvalueerd door een vakkundige patholoog binnen de context van de klinische geschiedenis van de patiënt en eventueel ander diagnostisch onderzoek.

Beginsel van de ProcedureImmunohistochemische (IHC) kleuringstechnieken maken de visualisatie van antigenen mogelijk via de sequentiële toepassing van een specifiek antilichaam naar het antigen (primaire antilichaam), het secundaire antilichaam naar het primaire antilichaam en een enzymcomplex met een chromogeen substraat met ingevoegde wasstappen. De enzymatische activering van de chromogeenresultaten in een zichtbaar reactieproduct op de antigene plaats. De monsters kunnen dan tegengekleurd en afgedekt zijn. De resultaten worden geïnterpreteerd met een lichtmicroscoop en hulpmiddelen in de differentiële diagnose van pathofysiologische processen, die wel of niet met een specifiek antigen geassocieerd kunnen worden.

KloonRWP49

ImmunogeenProkaryotisch recombinant-eiwit dat overeenkomt met 327 aminozuren van het humane IgG-molecuul

SpecificiteitHumane IgG

ReagentiasamenstellingNCL-L-IgG is een vloeibaar supernatant van weefselkweek dat 0,35% ProClin™ 950 als conserveringsmiddel.

Ig-klasseIgG1

Totale ProteïneconcentratieRaadpleeg het etiket op de flacon voor de specifieke totale proteïneconcenstratie.

AntilichaamconcentratieGroter dan of gelijk aan 59 mg/l zoals bepaald door ELISA. Raadpleeg het etiket op de flacon voor de specifieke lg-concenstratie.

Aanbevelingen over het GebruikImmunochemisch op paraffine coupes. Warmte-geïnduceerd epitoopherstel (Heat Induced Epitope Retrieval, HIER): Volg de instructies voor het gebruik in Novocastra Epitope Retrieval Solution pH 6. Aangeranden verdunning: 1:200 voor 30 minuten bij 25 °C. Dit wordt gezien als een richtlijn en gebruikers dienen hun eigen optimale werkverdunningen te bepalen. Visualisatie: Volg a.u.b. de gebruiksinstructies in de Novolink Polymer Detection Systems. Voor meer productinformatie of ondersteuning dient u contact op te nemen uw lokale distributeur of het regionale kantoor van Leica Biosystems, of de website van Leica Biosystems te bezoeken, www.LeicaBiosystems.com De prestatie van dit antilichaam dient gevalideerd te worden als het wordt gebruikt met andere handmatige kleuringssystemen of automatische platformen.

Opslag en StabiliteitOpslaan bij temperaturen van 2–8 °C. Niet bevriezen. Laat het systeem direct na gebruik terugkeren naar een temperatuur van 2–8 °C. Gebruik het product niet meer na de expiratiedatum die op de flacon staat. Opslagcondities andere dan degene die hierboven gespecificeerd zijn, dienen door de gebruiker geverifieerd te.

Voorbereiding van MonstersDe aanbevolen fixeerstof is 10% neutraal gebufferde formaline voor paraffine ingebedde weefselcoupes.

Waarschuwingen en VoorzorgsmaatregelenDeze reagens is voorbereid van het supernatant van de celkweek. Aangezien het biologisch product is, dient u bij het gebruik ervan voorzichtig te werk te gaan.De concentratie van ProClin™ 950 is 0,35 %. Het bevat het actieve ingrediënt 2-methylisothiazol-3(2H)-one, en kan irritatie veroorzaken aan de huid, ogen, slijmvlies en het bovenste deel van de luchtwegen. Draag wegwerphandschoenen bij het werken met reagentia.Raadpleeg de richtlijnen van de lokale of nationale overheid voor het afdanken van potentieel giftige componenten.Monsters moeten voor en na fixatie worden behandeld als potentiële overdragers van infecties en volgens de juiste voorzorgsmaatregelen worden afgedankt. Dit geldt tevens voor alle materialen die aan de monsters zijn blootgesteld.1

Total Protein

IGG-L-CE Page 30

Reagentia mogen nooit met de mond worden gepipetteerd. Daarnaast moet contact tussen de huid en het slijmvlies met reagentia en monsters worden vermeden. Als reagentia of monsters in contact komen met gevoelige gebieden, moet u deze gebieden wassen met een ruime hoeveelheid water. Neem contact op met een arts.Minimaliseer de kans van microbacteriële contaminatie van reagentia. Als u dit niet doet, kan er een toename van niet-specifieke kleuring optreden.Incubatietijden of temperaturen die afwijken van degenen die gespecificeerd zijn, kunnen tot onjuiste resultaten leiden. Iedere dergelijke verandering moet door de gebruiker gevalideerd worden.

KwaliteitscontroleVerschillen in het verwerken van weefsel en technische procedures in het laboratorium van de gebruiker kunnen zorgen voor een aanzienlijke variabiliteit van de resultaten. Dit vereist een regulier gebruik van bedrijfseigen controles naast de volgende procedures.De controles moeten verse autopsie-, biopsie-, of chirurgische monsters omvatten, en zo snel mogelijk formaline gefixeerd en in paraffinewax ingebed worden, op dezelfde manier als de patiëntmonster(s).

Positieve WeefselcontroleWordt gebruikt om correct voorbereide weefsels en goede kleuringstechnieken aan te duiden.Er dient een positieve weefselcontrole opgenomen te worden voor iedere set testcondities in iedere kleuringsrun.Voor een optimale kwaliteitscontrole en voor het detecteren van geringe niveaus van reagensdegredatie, is weefsel met zwakke positieve kleuring beter geschikt dan weefsel met sterke positieve kleuring.2

Aanbevolen positieve weefselcontrole is tonsil. Als de positieve weefselcontrole geen positieve kleuring vertoont, moeten de resultaten met de testmonsters als ongeldig worden beschouwd.

Negatieve WeefselcontroleDient onderzocht te worden na de positieve weefselcontrole om de specificiteit te verifiëren van de labeling van het doelantigen door het primaire antilichaam.Aanbevolen negatieve weefselcontrole is bijschildklier.Daarnaast leveren de verscheidenheid aan celtypen, die in de meeste weefselcoupes aanwezig zijn, regelmatig negatieve controlelocaties op, maar dit dient door de gebruiker geverifieerd te worden. Niet-specifieke kleuring, indien aanwezig, heeft meestal een diffuus uiterlijk. Daarnaast kan in coupes sporadische kleuring van bindweefsel worden geobserveerd. Dit treedt op als gevolg van overdadig fixeren van weefsel met formaline. Maak voor de interpretatie van kleuringsresultaten gebruik van intacte cellen. Necrotische of gedegenereerde cellen kunnen vaak een niet-specifieke kleuring vertonen.3 Er kan sprake zijn van fout-positieven als gevolg van niet-immunologische binding van eiwitten of substraatreactieproducten. Zij kunnen ook veroorzaakt worden door endogene enzymen zoals pseudoperoxidase (erythrocyten), endogene peroxidase (cytochroom C), of endogene biotine (bijv. lever, borst, hersenen, nieren), afhankelijk van het type immunokleuring dat gebruikt wordt. Om endogene enzymen of niet-specifieke binding van enzymen van specifieke immunoreactiviteit te differentiëren, kan het zijn dat extra patiëntweefsels exclusief gekleurd wordt met substraat chromogeen of enzymcomplexen (avidine-biotine, streptavidine, gelabeld polymeer) en respectievelijk substraat-chromogeen. Indien specifieke kleuring binnen het interne negatieve controleweefsel optreedt, moeten de resultaten die met de patiëntmonsters zijn verkregen als ongeldig worden beschouwd.

Negatieve ReagenscontroleGebruik een niet-specifieke negatieve reagenscontrole in plaats van het primaire antilichaam met een coupe van ieder patiëntmonster, om een niet-specifieke kleuring te evalueren en een betere interpretatie te krijgen van de specifieke kleuring op de antigene plaats.

PatiëntweefselOnderzoek de patiëntmonsters die met NCL-L-IgG zijn gekleurd, het laatst. De positieve kleuringsintensiteit moet worden geëvalueerd binnen de context van iedere niet-specifieke achtergrondkleuring van de negatieve reagenscontrole. Net zoals bij elke immunohistochemische test betekent een negatief resultaat dat het antigeen niet is gedetecteerd. Het betekent dus niet dat het antigeen afwezig was in de geanalyseerde cellen/het geanalyseerde weefsel. Gebruik een panel van antilichamen om de verkeerd-negatieve reacties te identificeren.

Verwachte ResultatenNormale weefsels Kloon RWP49 detecteerde het IgG-eiwit in het cytoplasma en op het membraan van plasmacellen, B-cellen van de mantelzone en kiemcentra. Daarnaast werd IgG-eiwit ook gedetecteerd in verscheidene weefsels, inclusief colon (epitheel), dunne darm (epitheel), cerebellum (Purkinje-cellen, gliacellen), nier (tubuli, glomeruli), bijnier (bijnierschors, medulla), pancreas (acini, eilandjes, gangen), long (alveoli, bronchiaal epitheel), lever (hepatocyten), slokdarm (epitheel), huid (epitheel), milt (rode pulpa), eierstok (stroma), baarmoederhals (epitheel), testis (tubuli), prostaat (acini), thymus, hypofyse, tonsil (kiemcentra, epitheel, plasmacellen), beenmerg, appendix (mesotheel) en navelstreng (mesotheel). (Totaal aantal normale gevallen = 33.)Abnormale weefsels Kloon RWP49 kleurde 8/14 myelomen. 38/43 andere hematologische maligniteiten die werden geëvalueerd, waren positief (inclusief 13/14 diffuse grootcellige B-cellymfomen, 5/6 perifere T-cellymfomen, 4/6 folliculaire lymfomen, 5/5 Hodgkin-lymfomen, 2/2 mantelcellymfomen, 2/2 anaplastische grootcellige lymfomen, 1/2 MALT-lymfomen, 1/1 Burkitt-lymfoom, 1/1 marginale-zone-lymfoom, 1/1 angio-immunoblastair lymfoom, 1/1 NK/T-cellymfoom, 1/1 T-celrijk B-cellymfoom en 1/1 lymfoblastair lymfoom). Uitgezonderd infiltrerende lymfocyten werd het IgG-eiwit ook gedetecteerd in 31/41 niet-lymfoïde maligniteiten (inclusief 9/10 plaveiselcelcarcinomen, 4/4 levertumoren, 3/4 eierstoktumoren, 3/3 colorectale tumoren, 2/2 maagtumoren, 2/2 pancreastumoren, 2/2 niertumoren, 2/2 prostaattumoren, 2/2 longtumoren, 1/2 borsttumoren, en 1/2 gemetastaseerde carcinomen in de lymfeklieren). Er werd geen kleuring waargenomen in schildkliertumoren (0/4) en hersentumoren (0/2). (Totaal aantal afwijkende gevallen = 98.)NCL-L-IgG wordt aanbevolen voor het detecteren van IgG-antigeen in normale en neoplastische weefsels, als aanvulling op conventionele histopathologie waarbij niet-immunologische histochemische kleuringen worden gebruikt.

IGG-L-CE Page 31

Algemene BeperkingenImmunohistochemie is een diagnoseproces van meerdere stappen dat uit een gespecialiseerde training bestaat in het selecteren van de desbetreffende reagentia; weefselselectie, fixatie en verwerking; voorbereiding van de IHC-objectglaasjes; en de interpretatie van de kleuringsresultaten. Weefselkleuring is afhankelijk van het gebruik en de verwerking van het weefsel vóór het aanbrengen van de kleuring. Een onjuiste manier van fixeren, invriezen, ontdooien, wassen, drogen, verwarmen en opdelen of contaminatie met andere weefsels of vloeistoffen kunnen leiden tot artefacten, het vastzitten van antilichamen of fout-negatieven. Inconsistente resultaten kunnen het gevolg zijn variaties in de methoden die voor het fixeren en inbedden worden gebruikt of van inherente onregelmatigheden binnen het weefsel.4 Overmatige of onvolledige tegenkleuring kan een correcte interpretatie van de resultaten in te weg zitten. De klinische interpretatie van iedere kleuring of de afwezigheid ervan moet worden aangevuld met morfologisch onderzoek en goede controles. De interpretatie moet worden geëvalueerd door een vakkundige patholoog binnen de context van de klinische geschiedenis van de patiënt en eventueel ander diagnostisch onderzoek.Antilichamen van Leica Biosystems Newcastle Ltd zijn bedoeld voor gebruik, zoals aangegeven, op bevroren of paraffine ingebedde coupes met specifieke fixatie-eisen. Er kan een onverwachte antigenexpressie optreden, met name in neoplasma’s. De klinische interpretatie van ieder gekleurde weefselcoupe moet morfologische analyses bevatten en de evaluatie van de juiste controles.

Algemene Literatuurlijst1. National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS). Protection of laboratory workers from infectious diseases

transmitted by blood and tissue; proposed guideline. Villanova, P.A. 1991; 7(9). Order code M29-P.2. Battifora H. Diagnostic uses of antibodies to keratins: a review and immunohistochemical comparison of seven monoclonal and

three polyclonal antibodies. Progress in Surgical Pathology. 6:1–15. eds. Fenoglio-Preiser C, Wolff CM, Rilke F. Field & Wood, Inc., Philadelphia.

3. Nadji M, Morales AR. Immunoperoxidase, part I: the techniques and pitfalls. Laboratory Medicine. 1983; 14:767.4. Omata M, Liew CT, Ashcavai M, Peters RL. Nonimmunologic binding of horseradish peroxidase to hepatitis B surface antigen: a

possible source of error in immunohistochemistry. American Journal of Clinical Pathology. 1980; 73:626.5. Karamchandani JR, Younes SF, Warnke RA. IgG4-related systemic sclerosing disease of the ocular adnexa. American Journal of

Clinical Pathology. 2012; 137: 699-711. 6. Janeway C, Travers P, Walport M et al. Immunobiology: The immune system in health and disease. Chapter 3. Garland Science. New

York and London. 20017. Fridman W. Fc receptors and immunoglobulin binding factors. FASEB Journal. 1991; 5: 2684-2690.

Aanpassingen ten opzichte van Vorige EditieSamenstelling reagens, antilichaamconcentratie, aanbevelingen voor gebruik, waarschuwingen en voorzorgsmaatregelen.

Publicatiedatum12 december 2019

IGG-L-CE Page 32

Novocastra flytende monoklonalt antistoff for musImmunoglobulin GProduktkode: NCL-L-IgG

Tiltenkt brukTil in vitro-diagnostisk bruk. NCL-L-IgG skal brukes til kvalitativ identifisering med lysmikroskopi av humant immunoglobulin G (IgG) molekyler i parafinsnitt. Den kliniske tolkningen av farge eller manglende farge skal suppleres med morfologiske undersøkelser og bruk av egnede kontroller, og bør evalueres av en kvalifisert patolog i lys av pasientens kliniske historie og eventuelle andre diagnostiske tester.

ProsedyreprinsippImmunhistokjemiske (IHC) fargingsteknikker gjør det mulig å se antigener via en sekvensiell tilsetning av et bestemt antistoff mot antigenet (primært antistoff), et sekundært antistoff mot det primære antistoffet og et enzymkompleks med et kromogent substrat med innskutte vasketrinn. Den enzymatiske aktiveringen av kromogenet gir et synlig reaksjonsprodukt på antigenstedet. Prøven kan deretter kontrastfarges og dekkes med et dekkglass. Resultatene fortolkes ved hjelp av et lysmikroskop og medvirker til differensialdiagnose av patofysiologiske prosesser som muligens kan være assosiert med et bestemt antigen.

KlonRWP49

ImmunogenProkaryotisk rekombinant protein svarende til 327 aminosyrer av det humane IgG-molekylet.

SpesifisitetHumant IgG

ReagenssammensetningNCL-L-IgG er flytende vevkultur supernatant med 0,35 % ProClin™ 950 som et konserveringsmiddel.

Ig-klasseIgG1

TotalproteinkonsentrasjonSe etiketten på hetteglasset for lotspesifikk totalproteinkonsentrasjon.

AntistoffkonsentrasjonStørre enn eller likt med 59 mg/l som fastslått av ELISA. Se etiketten på hetteglasset for lotspesifikk Ig-konsentrasjon.

Anbefalinger for BrukImmunhistokjemi på parafinsnitt. Varmeindusert epitopgjenfinning (Heat Induced Epitope Retrieval, HIER): Følg bruksanvisningen for Novocastra Epitope Retrieval Solution pH 6. Foreslått fortynning: 1:200 i 30 minutter ved 25 °C. Disse retningslinjene er veiledende, og brukeren bør selv bestemme egne optimale bruksfortynninger. Visualisering: Følg bruksanvisningen for Novolink Polymer Detection Systems. Ønsker du ytterligere produktinformasjon eller -støtte, kan du ta kontakt med den lokale forhandleren eller regionkontoret til Leica Biosystems, eller på nettsidene til Leica Biosystems, www.LeicaBiosystems.com Ytelsen til dette antistoffet bør valideres ved bruk av andre manuelle fargingssystemer eller automatiske systemer.

Oppbevaring og StabilitetOppbevares ved 2–8 °C. Må ikke fryses. Returneres til 2–8 °C umiddelbart etter bruk. Må ikke brukes etter utløpsdatoen angitt på produktetiketten. Andre oppbevaringsbetingelser må valideres av brukeren.

Klargjøring av PrøverAnbefalt fiksativ er 10 % nøytralbufret formalin for parafinlagrede vevssnitt.

Advarsler og ForholdsreglerDenne reagensen er laget av supernatanten fra en cellekultur. Dette er et biologisk produkt som må behandles deretter.Konsentrasjonen av ProClin™ 950 er 0,35 %. Den inneholder virkestoffet 2-metylisotiazol-3(2H)-on, og kan skape irritasjoner på hud, øyne, slimhinner og øvre luftveier. Bruk engangshansker ved håndtering av reagenser.Følg nasjonale og lokale forskrifter for avhending av komponenter som kan være giftige.Prøver (før og etter fiksering) og alt materiale som eksponeres for dem, skal behandles som potensielt smittefarlig og kasseres i samsvar med gjeldende forholdsregler.1 Hold aldri pipetter med reagens i munnen, og unngå at hud og slimhinner kommer i kontakt med reagenser og prøver. Hvis reagenser eller prøver kommer i kontakt med følsomme områder, skal de skylles med rikelig vann. Kontakt lege.Reduser mikrobiell kontaminering av reagensene til et minimum, ellers kan det forekomme økt uspesifisert farging.Inkubasjonstider eller temperaturer som er annerledes enn det som er angitt, kan gi unøyaktige resultater. Slike endringer må valideres av brukeren.

Total Protein

IGG-L-CE Page 33

KvalitetskontrollForskjeller i behandlingen av vev og forskjeller i tekniske prosedyrer i brukerens laboratorium kan gi signifikant varierte resultater, og det kan være nødvendig å foreta kontroller på stedet i tillegg til prosedyrene angitt nedenfor.Kontrollene skal være nye autopsi-/biopsi-/kirurgiske prøver, formalinfikserte, behandlede og parafinlagrede så snart som mulig, på samme måte som pasientprøver.

Positiv VevskontrollBrukes for å påvise korrekt vevspreparering og fargeteknikker.Én positiv vevskontroll bør inkluderes for hvert sett med testbetingelser i hver fargerunde.Svakt positivt farget vev er mer egnet enn kraftig positivt farget vev til optimal kvalitetskontroll og påvisning av små nivåer reagensnedbrytning.2

Anbefalt positivt kontrollvev er mandel. Hvis den positive vevskontrollen ikke viser positiv farging, skal resultatene til testprøvene anses som ugyldige.

Negativ VevskontrollSkal undersøkes etter den positive vevskontrollen for å sikre at det primære antistoffet merker målantigenet spesifikt.Anbefalt negativt kontrollvev er paraskjoldbruskkjertel.Alternativt har de mange ulike celletypene som finnes i de fleste vevssnittene ofte negative kontrollsteder, men dette må verifiseres av brukeren. Uspesifikk farging, hvis dette er aktuelt, har ofte et diffust utseende. Sporadisk farging av bindevev kan på samme måte observeres i snitt fra vev som er fiksert for kraftig i formalin. Bruk intakte celler for å tolke fargeresultatene. Nekrotiske eller degenererte celler kan ofte farges uspesifikt.3 Falske positive resultater kan skyldes ikke-immunologisk binding av proteiner eller substratreaksjonsprodukter. Dette kan også skyldes endogene enzymer som pseudoperoksidase (erytrocytter), endogen peroksidase (cytokrom C) eller endogent biotin (f.eks. lever, bryst, hjerne, nyre), avhengig av anvendt type immunfarge. For å differensiere endogen enzymaktivitet eller uspesifikk enzymbinding og spesifikk immunreaktivitet kan ytterligere pasientvev eventuelt farges kun med henholdsvis substratkromogen eller enzymkomplekser (avidin-biotin, streptavidin, merket polymer) og substratkromogen. Hvis det skjer spesifikk farging i den negative vevskontrollen, må resultatene for pasientprøvene anses som ugyldige.

Negativ reagenskontrollBruk en uspesifikk negativ reagenskontroll i stedet for det primære antistoffet på et snitt av hver pasientprøve for å vurdere uspesifikk farging og for å muliggjøre bedre fortolkning av spesifikk farging på antigenstedet.

PasientvevUndersøk pasientprøver farget med NCL-L-IgG sist. Intensiteten av positiv farging bør vurderes i sammenheng med eventuell uspesifikk bakgrunnsfarging av den negative reagenskontrollen. Som med alle immunhistokjemiske tester, betyr et negativt resultat at antigenet ikke ble påvist, ikke at antigenet var fraværende i de analyserte cellene/vevet. Om nødvendig kan man bruke et panel av antistoffer for å identifisere falske negative reaksjoner.

Forventede ResultaterNormalt Vev Klon RWP49 detekterte IgG-protein i cytoplasma og på membranet til plasmaceller, B-celler til mantelsonen og germinalsentre. I tillegg ble IgG-protein også detektert i forskjellige vev, inkludert tarm (epitel), tynntarm (epitel), cerebellum (Purkinje-celler, glialceller), nyre (tubuler, glomeruli), binyre (korteks, medulla), bukspyttkjertel (acini, øyer, kanaler), lunge (alveoler, bronkial epitel), lever (hepatocytter), spiserør (epitel), hud (epitel), milt (rød masse), eggstokk (stroma), livmorhals (epitel), testikkel (tubuler), prostata (acini), tymus, hypofyse, mandel (germinalsentre, epitel, plasmaceller), benmarg, blindtarm (mesotelium) og navlestreng (mesotelium). (Totalt antall normale tilfeller = 33).Abnormalt Vev Klon RWP49 farget 8/14 myelomer. 38/43 andre hematologiske ondartetheter evaluert var positive (inkludert 13/14 diffuse stor-B-cellelymfomer, 5/6 perifere T-celle lymfomer, 4/6 follikulære lymfomer, 5/5 Hodgkins lymfomer, 2/2 mantelcelle-lymfomer, 2/2 anaplastiske storcellede lymfomer, 1/2 MALTomer, 1/1 Burkitts lymfomer, 1/1 marginalsone-lymfomer, 1/1 angioimmunoblastiske lymfomer, 1/1 NK/T cellelymfomer, 1/1 T-cellerike B-cellelymfomer og 1/1 lymfoblastiske lymfomer). Unntatt for infiltrerende lymfocytter, ble IgG-protein også detektert i 31/41 ikke-lymfoide ondartetheter (inkludert 9/10 plateepitelcellekarsinomer, 4/4 levertumorer, 3/4 eggstokktumorer, 3/3 kolorektale tumorer, 2/2 magetumorer, 2/2 tumorer i bukspyttkjertel, 2/2 nyretumorer, 2/2 prostatatumorer, 2/2 lungetumorer, 1/2 brysttumorer, og 1/2 lymfenodus metastatiske karsinomer). Ingen farging ble detektert i skjoldbruskkjerteltumorer (0/4) og hjernetumorer (0/2). (Totalt antall unormale tilfeller = 98).NCL-L-IgG anbefales for deteksjon av IgG-antigen i normale og neoplastiske vev, som tillegg til konvensjonell histopatologi med bruk av ikke-immunologiske histokjemiske farger.

Generelle BegrensningerImmunhistokjemi er en diagnostisk prosess i flere trinn som omfatter spesialutdanning i valg av egnede reagenser, vevsseleksjon, -fiksering og -behandling samt preparering av IHC-objektglass og tolking av fargeresultater.Vevsfarging avhenger av håndteringen og behandlingen av vevet før fargingen. Feil fiksering, frysing, tining, vasking, tørking, oppvarming, snitting eller kontaminering med annet vev eller væsker kan gi artefakter, innfanging av antistoffer eller falske negative resultater. Inkonsekvente resultater kan skyldes variasjoner ved fiksering eller innstøpningsmetoder eller iboende uregelmessigheter i vevet.4

Overdreven eller ufullstendig motfarging kan også gjøre det vanskelig å tolke resultatene riktig.Den kliniske tolkningen av farge eller manglende farge skal suppleres med morfologiske undersøkelser og bruk av egnede kontroller, og bør evalueres av en kvalifisert patolog i lys av pasientens kliniske historie og eventuelle andre diagnostiske tester.Antistoffer fra Leica Biosystems Newcastle Ltd skal brukes, som angitt, på enten frosne eller parafinlagrede snitt med spesifikke krav til fiksering. Uventet antigenekspresjon kan forekomme, spesielt i neoplasma. Den kliniske tolkningen av fargede vevssnitt må omfatte morfologiske analyser og evaluering av egnede kontroller.

IGG-L-CE Page 34

Bibliografi – Generelt1. National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS). Protection of laboratory workers from infectious diseases

transmitted by blood and tissue; proposed guideline. Villanova, P.A. 1991; 7(9). Order code M29-P.2. Battifora H. Diagnostic uses of antibodies to keratins: a review and immunohistochemical comparison of seven monoclonal and

three polyclonal antibodies. Progress in Surgical Pathology. 6:1–15. eds. Fenoglio-Preiser C, Wolff CM, Rilke F. Field & Wood, Inc., Philadelphia.

3. Nadji M, Morales AR. Immunoperoxidase, part I: the techniques and pitfalls. Laboratory Medicine. 1983; 14:767.4. Omata M, Liew CT, Ashcavai M, Peters RL. Nonimmunologic binding of horseradish peroxidase to hepatitis B surface antigen: a

possible source of error in immunohistochemistry. American Journal of Clinical Pathology. 1980; 73:626.5. Karamchandani JR, Younes SF, Warnke RA. IgG4-related systemic sclerosing disease of the ocular adnexa. American Journal of

Clinical Pathology. 2012; 137: 699-711. 6. Janeway C, Travers P, Walport M et al. Immunobiology: The immune system in health and disease. Chapter 3. Garland Science. New

York and London. 20017. Fridman W. Fc receptors and immunoglobulin binding factors. FASEB Journal. 1991; 5: 2684-2690.

Endringer i forhold til Forrige UtgaveReagenssammensetning, antistoffkonsentrasjon, anbefalinger om bruk, advarsler og forsiktighetsregler.

Utgivelsesdato12 desember 2019

IGG-L-CE Page 35

Novocastra Sıvı Fare Monoklonal AntikoruImmunoglobulin GÜrün Kodu: NCL-L-IgGKullanım AmacıIn vitro diagnostik kullanımı için. NCL-L-IgG, parafin seksiyonlarında insan immunoglobulin G (IgG) molekülünün ışık mikroskopisi ile nitel belirlenmesi için amaçlanmıştır. Herhangi bir boyamanın mevcut olması veya olmaması ile ilgili klinik yorumlama, uygun kontroller kullanılarak morfolojik çalışmalarla tamamlanmalıdır ve hastanın klinik geçmişi ve diğer diagnostik testler kapsamında kalifiye bir patolojist tarafından değerlendirilmelidir.

Prosedür Prensibiİmmünohistokimyasal (IHC) boyama teknikleri, spesifik bir antikorun antijene (primer antikor), ikincil bir antikorun primer antikora ve bir enzim kompleksinin kromojenik bir substrat ile arada yıkama adımları olacak şekilde sekansiyel olarak uygulanmasıyla antijenlerin görselleştirilmesini sağlar. Kromojenin enzimatik aktivasyonu, antijen bölgede görünür bir reaksiyon prodüktü ile sonuçlanır. Numune bu durumda karşıt boyanabilir ve lamellenebilir. Sonuçlar, bir ışık mikroskopu kullanılarak yorumlanır ve özel bir antijenle birleştirilebilen veya birleştirilemeyen patofizyolojik işlemlerin ayırıcı tanısına yardımcı olur.

CloneRWP49

İmmünojenİnsan IgG molekünün 327 amino asidine karşılık gelen prokaryotik rekombinant protein

Spesifiteİnsan IgG

Reagent KompozisyonuNCL-L-IgG, prezervatif olarak %0,35 ProClin™ 950 içeren, içeren supernatant bir likit doku kültürüdür.

Ig SınıfıIgG1

Toplam Protein KonsantrasyonuLota özel toplam protein konsantrasyonu için viyal etiketine başvurun.

Antikor KonsantrasyonuELISA tarafından belirlendiği gibi 59 mg/L’ye eşit veya bu değerden yüksek. Lota özel lg konsantrasyonu için viyal etiketine başvurun.

Kullanım TavsiyeleriParafin seksiyonlarında immünohistokimya. Isı Etkisiyle Epitop Geri Kazanımı (Heat Induced Epitope Retrieval, HIER): Lütfen, Novocastra Epitope Retrieval Solution pH 6 için kullanma talimatını izleyin. Önerilen dilüsyon: 1:200 25 °C’de 30 dakika için. Bu bir kılavuz olarak verilmiştir; kullanıcılar, kendilerine özel optimal çalışma dilüsyonlarını belirlemelidirler. Görselleştirme: Novolink Polymer Detection System kullanım talimatlarına uyun. Ürünle ilgili daha fazla bilgi veya destek için yerel distribütörünüze veya bölgesel Leica Biosystems ofisine başvurun veya alternatif olarak www.LeicaBiosystems.com Leica Biosystems internet sitesini ziyaret edin. Bu antikorun performansı, diğer manuel boyama sistemleri veya otomatik platformlarla kullanıldığında doğrulanmalıdır.

Saklama ve Dayanıklılık2–8 °C’de saklayın. Dondurmayın. Kullanımdan hemen sonra 2–8 °C’ye dönün. Viyal etiketinin üzerinde belirtilen son kullanım tarihinden sonra kullanmayın. Yukarıda belirtilenlerin dışındaki saklama koşullarının, kullanıcı tarafından kontrol edilmesi gerekir.

Numune HazırlığıÖnerilen fiksatif, parafine gömülmüş doku seksiyonları için %10 nötr tamponlu formalindir.

Uyarılar ve ÖnlemlerBu reagent, hücre kültürünün supernatantından hazırlanmıştır. Bu bir biyolojik ürün olduğundan işlem yaparken özel dikkat gerektirir.ProClin™ 950 konsantrasyonu % 0,35’dir. 2-metilizotiazol-3(2H)-on etken maddesini içerir ve ciltte, gözlerde, muköz membranlarda ve üst solunum yolunda iritasyona neden olabilir. Reagent’larla işlem yaparken tek kullanımlık eldiven takın.Potansiyel tüm toksik komponentlerin imhası için federal, ulusal veya lokal düzenlemelere başvurun.Fikse etme işleminden önce ve sonra numuneler ve bunlara maruz kalan tüm materyaller, enfeksiyon yayabilecek gibi ele alınmalı ve doğru önlemler alınarak atığa çıkartılmalıdır.1 Reagent’lar asla ağızla pipetlenmemeli ve cildin ve muköz membranların reagent ve numunelerle temasından kaçınılmalıdır. Reagent veya numunelerin hassas alanlarla temas etmesi durumunda bu alanları bol su ile yıkayın. Doktora başvurun.Reagent’ların mikrobiyal kontaminasyonunu minimize edin, aksi durumda nonspesifik boyamada bir artış ortaya çıkabilir.Belirtilenlerin dışında inkübasyon süreleri veya sıcaklıkları, hatalı sonuçlara neden olabilir. Tüm değişiklikler, kullanıcı tarafından doğrulanmalıdır.

Total Protein

IGG-L-CE Page 36

Kalite KontrolKullanıcının laboratuvarındaki doku işleme ve teknik prosedürlerdeki değişiklikler, sonuçlarda önemli farklılıklara neden olabilir ve aşağıdaki prosedürlere ek olarak dahili kontrollerin düzenli şekilde yapılmasını gerektirir.Kontroller, mümkün olan en kısa sürede ve hasta örneği (örnekleri) ile aynı şekilde formalinle fikse edilmiş, işlenmiş ve parafin mumuna gömülmüş taze otopsi/biyopsi/cerrahi numune olmalıdır.

Pozitif Doku KontrolüDoğru hazırlanmış dokuları ve düzgün boyama tekniklerini belirtmek için kullanılır.Bir pozitif doku kontrolü, her boyama çalıştırmasında test koşullarının her seti için dahil edilmelidir.Optimal kalite kontrol için ve reagent degradasyonunun minör düzeylerini tespit etmek için zayıf pozitif boyamaya sahip bir doku, güçlü pozitif boyamaya sahip bir dokudan daha uygundur.2

Önerilen pozitif kontrol dokusu bademciktir.Pozitif doku kontrolü, pozitif boyamayı göstermezse test numuneleri ile elde edilen sonuçlar geçersiz olarak ele alınmalıdır.

Negatif Doku KontrolüPozitif doku kontrolünden sonra hedef antijenin etiketleme spesifitesini primer antikorla kontrol etmek için gerçekleştirilmelidir.Önerilen negatif kontrol dokusu paratiroiddir.Pek çok doku seksiyonunda bulunan farklı hücre tiplerinin çeşitliliği, genelde negatif kontrol bölgeleri sağlar ancak bu, kullanıcı tarafından kontrol edilmelidir. Nonspesifik boyama, mevcutsa genelde difüz bir görünüme sahiptir. Bağ dokusu sporadik boyama, aşırı formalinle fikse edilmiş dokulardan seksiyonlarda da gözlemlenebilir. Boyama sonuçlarının yorumlanması için intakt hücreler kullanın. Nekrotik veya dejenere hücreler, genelde belirsiz şekilde boyanabilir.3 Yanlış pozitif sonuçlar, substrat reaksiyon ürünleri veya proteinlerin immünolojik olmayan protein bağlanması nedeniyle görülebilir. Bunlar, kullanılan immüno boyamanın tipine bağlı olarak psödoperoksidaz (eritrositler), endojen peroksidaz (sitokrom C) veya endojen biotin (örn. karaciğer, meme, beyin, böbrek) gibi endojen enzimler nedeniyle de ortaya çıkabilir. Endojen enzim aktivitesini veya enzimlerin nonspesifik bağlanmasını, spesifik immünreaktiviteden ayırt etmek için ilave hasta dokuları, sadece sırasıyla substrat kromojen veya enzim kompleksleriyle (avidin biotin, streptavidin, etiketli polimer) ve substrat kromojen ile boyanabilir. Spesifik boyamanın, negatif doku kontrolünde ortaya çıkması durumunda hasta numuneleri ile elde edilen sonuçlar geçersiz olarak ele alınmalıdır.

Negatif Reagent KontrolüAntijen bölgede nonspesifik boyamanın değerlendirilmesi ve spesifik boyamanın daha iyi yorumlanmasını sağlamak amacıyla her hasta numunesinin bir seksiyonu ile primer antikorun yerine bir nonspesifik negatif reagent kontrolü kullanın.

Hasta DokusuNCL-L-IgG ile boyanmış hasta numuneleri en son inceleyin. Pozitif boyama intensitesi, negatif reagent kontrolünün herhangi bir nonspesifik arka plan boyamasının kapsamında değerlendirilmelidir. Herhangi bir immünohistokimyasal test ile negatif bir sonuç, antijenin tespit edilmediği anlamına gelir; antijenin test edilen hücrelerde/dokuda mevcut olmadığı anlamına gelmez. Gerekiyorsa yanlış negatif reaksiyonları belirlemek için bir antikor paneli kullanın.

Öngörülen SonuçlarNormal Dokular RWP49 klonu; sitoplazmada, plazma hücrelerinin membranında, mantle zondaki B hücrelerinde ve germinal merkezlerinde IgG proteinin tespit etmiştir. Ek olarak, IgG proteini kolon (epitelyum), küçük bağırsak (epitelyum), beyincik (Purkinje hücreleri, glial hücreleri), böbrek (tübüller, glomeruli), adrenal (korteks, medulla), pankreas (asinüs, adacıklar, kanal), akciğer (alveoli, bronşiyal epitelyum), karaciğer (hepatositler), yemek borusu (epitelyum), deri (epitelyum), dalak (kırmızı pulpa), over (stroma), serviks (epitelyum), testis (tübüller), prostat (asinüs), timüs, pituiter, bademcik (germinal merkezler, epitelyum, plazma hücreleri), kemik iliği, apandis (mezotelyum) ve umbilikal kord (mezotelyum) dahil olmak üzere çeşitli dokularda da saptanmıştır. (Toplam normal olgu sayısı = 33).Abnormal Dokular RWP49 klonu miyelomların 8/14’ünü boyamıştır. Değerlendirilen diğer hematolojik malignansilerin 38/43’ü pozitifti (13/14 diffüz büyük B hücreli lenfomalar, 5/6 periferik T hücreli lenfomalar, 4/6 foliküller lenfomalar, 5/5 Hodgkin lenfomaları, 2/2 mantle hücre lenfomaları, 2/2 anaplastik büyük hücreli lenfomalar, 1/2 MALTomas, 1/1 Burkitt’in lenfomaları, 1/1 marjinal zon lenfomaları, 1/1 anjiyoimmunoblastik lenfomalar, 1/1 NK/T hücre lenfomaları, 1/1 T hücresi açısından zengin B hücreli lenfomalar ve 1/1 lenfoblastik lenfomalar). İnfiltre eden lenfositlerin dışında, IgG proteini lenfoid olmayan malignansilerin 31/41’inde (9/10 skuamöz hücre karsinomu, 4/4 karaciğer tümör, 3/4 over tümörü, 3/3 kolorektal tümörü, 2/2 mide tümörü, 2/2 pankreatik tümörü, 2/2 böbrek tümörü, 2/2 prostat tümörü, 2/2 akciğer tümörü, 1/2 meme tümörü ve 1/2 lenf nodu metastatik karsinomu içeren) saptanmıştır. Tiroid tümörlerinde (0/4) ve beyin tümörlerinde (0/2) boyama saptanmadı. (Toplam anormal olgu sayısı = 98).NCL-L-IgG, immünolojik olmayan histokimyasal boyamalar kullanılarak yapılan geleneksel histopatolojiye ek olarak normal ve neoplastik dokularda IgG antijeninin saptanması için önerilir.

Genel Sınırlamalarİmmünohistokimya uygun reagent’ların seçilmesinde; dokunun seçilmesi, fikse edilmesi ve işlenmesinde; IHC lamının hazırlanmasında ve boyama sonuçlarının yorumlanmasında uzmanlık eğitimi gerektiren çok adımlı bir diagnostik işlemidir. Doku boyama, boyamadan önce dokunun ele alınması ve işlenmesine bağlıdır. Diğer dokularla veya akışkanlarla hatalı fikse etme, dondurma, eritme, yıkama, kurutma, ısıtma, seksiyonlama veya kontaminasyon artefakt, antikor trapping veya yanlış negatif sonuçlar oluşturabilir. Doku içerisinde fikse etme ve gömme yöntemleri veya inherent aksaklıklar nedeniyle tutarsız sonuçlar ortaya çıkabilir.4

Aşırı veya inkomplet karşıt boya, sonuçların doğru yorumlanmasına engel olabilir.Herhangi bir boyamanın mevcut olması veya olmaması ile ilgili klinik yorumlama, uygun kontroller kullanılarak morfolojik çalışmalarla tamamlanmalıdır ve hastanın klinik geçmişi ve diğer diagnostik testler kapsamında kalifiye bir patolojist tarafından değerlendirilmelidir.

IGG-L-CE Page 37

Leica Biosystems Newcastle Ltd antikorları, belirtildiği gibi spesifik fikse etme işlemleri gerektiren dondurulmuş veya parafine gömülmüş seksiyonlarda kullanılmak içindir. Özellikle neoplazmalarda beklenmedik antijen ekspresyonu ortaya çıkabilir. Boyanan doku seksiyonunun klinik yorumu, morfolojik analiz ve uygun kontrollerin değerlendirmesini içermelidir.

Kaynakça - Genel1. National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS). Protection of laboratory workers from infectious diseases

transmitted by blood and tissue; proposed guideline. Villanova, P.A. 1991; 7(9). Order code M29-P.2. Battifora H. Diagnostic uses of antibodies to keratins: a review and immunohistochemical comparison of seven monoclonal and

three polyclonal antibodies. Progress in Surgical Pathology. 6:1–15. eds. Fenoglio-Preiser C, Wolff CM, Rilke F. Field & Wood, Inc., Philadelphia.

3. Nadji M, Morales AR. Immunoperoxidase, part I: the techniques and pitfalls. Laboratory Medicine. 1983; 14:767.4. Omata M, Liew CT, Ashcavai M, Peters RL. Nonimmunologic binding of horseradish peroxidase to hepatitis B surface antigen: a

possible source of error in immunohistochemistry. American Journal of Clinical Pathology. 1980; 73:626.5. Karamchandani JR, Younes SF, Warnke RA. IgG4-related systemic sclerosing disease of the ocular adnexa. American Journal of

Clinical Pathology 2012; 137: 699-711. 6. Janeway C, Travers P, Walport M et al. Immunobiology: The immune system in health and disease. Chapter 3. Garland Science. New

York and London. 20017. Fridman W. Fc receptors and immunoglobulin binding factors. FASEB Journal. 1991; 5: 2684-2690.

Önceki Baskıya Göre DeğişikliklerReaktif Kompozisyonu, Antikor Konsantrasyonu, Kullanım Önerileri, Uyarılar ve Önlemler.

Yayım tarihi12 Aralık 2019

IGG-L-CE Page 38

Течно мише моноклонално антитяло NovocastraImmunoglobulin GКод на продукта: NCL-L-IgG

ПредназначениеЗа употреба при in vitro диагностика. Продуктът NCL-L-IgG е предназначен за качествено идентифициране посредством оптична микроскопия на човешки молекули имуноглобулин G (IgG) в парафинови срези. Клиничната интерпретация на всяко оцветяване или неговата липса следва да бъде допълнена от морфологични проучвания с помощта на подходящи контроли и трябва да се оценява в контекста на клиничната история на пациента и други диагностични изследвания от квалифициран патолог.

Принцип на процедуратаТехниките на имунохистохимично (IHC) оцветяване позволяват визуализация на антигени чрез последователно приложение на специфично антитяло на антигена (първично антитяло), вторично антитяло на първичното антитяло и ензимен комплекс с хромогенен субстрат, с междинни стъпки на промиване. Ензимното активиране на хромогена води до видим реакционен продукт на мястото на антигена. След това може да се направи контраоцветяване на спесимена и да се постави покривно стъкло. Резултатите се интерпретират с използване на оптичен микроскоп и са в помощ при диференциалната диагностика на патофизиологични процеси, които може да са или да не са свързани с определен антиген.

КлонингRWP49

ИмуногенПрокариотен рекомбинантен протеин, съответстващ на 327 аминокиселини от човешката молекула IgG.

СпецифичностЧовешки IgG.

Състав на реагентаNCL-L-IgG е течен супернатант от тъканна култура, съдържащ 0,35% ProClin™ 950 като консервант.

Имуноглобулинов класIgG1

Обща концентрация на протеинВижте етикета на флакона относно специфичната за партидата концентрация на общ протеин.

Концентрация на антителаПо-висока или равна на 59 mg/L, както е определено от ELISA. Вижте етикета на флакона за специфичната за партидата концентрация на имуноглобулин.

Препоръки за употребаИмунохистохимия върху парафинови срези. Термично индуцирано извличане на епитоп (Heat Induced Epitope Retrieval, HIER): Моля, спазвайте инструкциите за употреба, включени в опаковката на Novocastra Epitope Retrieval Solution pH 6. Предложение за разреждане: 1:200 за 30 минути при 25°C. Това е дадено като указание, като потребителите трябва сами да определят техни собствени оптимални работни разреждания. Визуализация: Спазвайте инструкциите за употреба, приложени към Novolink Polymer Detection Systems. За допълнителна информация за продукта или помощ се свържете с вашия местен дистрибутор или с регионалния офис на Leica Biosystems, а също така може да посетите уебсайта на Leica Biosystems www.LeicaBiosystems.com Действието на това антитяло трябва да бъде валидирано при употреба с други мануални системи за оцветяване или автоматизирани платформи.

Съхранение и стабилностДа се съхранява при температура 2 – 8°C. Да не се замразява. Да се върне на температура 2 – 8°C веднага след употреба. Да не се използва след срока на годност, отбелязан върху етикета на флакона. Други условия на съхранение, освен посочените по-горе, трябва да бъдат проверени от потребителя.

Подготовка на спесимениПрепоръчителният фиксиращ разтвор е неутрален буфериран формалин 10% за тъканни срези, вградени в парафин.

Предупреждения и предпазни меркиТози реагент е приготвен от супернатант от клетъчна култура. Тъй като е биологичен продукт, необходимо е повишено внимание при работа с него. Концентрацията на ProClin™ 950 е 0,35 %. Съдържа активната съставка 2-метилизотиазол-3(2H)-он и може да причини дразнене на кожата, очите, лигавиците и горните дихателни пътища. При работа с реагентите да се носят ръкавици за еднократна употреба. Консултирайте се с федералните, държавните или местните регламенти относно изхвърлянето на потенциално токсични компоненти.

Total Protein

IGG-L-CE Page 39

Всички спесимени преди и след фиксация, както и всички материали, изложени на тях, трябва да се третират като възможни преносители на инфекция и да се изхвърлят, като се вземат правилни предпазни мерки.1 Никога не пипетирайте реагенти с уста и избягвайте контакт на кожата и лигавиците с реагенти и спесимени. При контакт на реагенти или спесимени с чувствителни зони измийте зоните с обилно количество вода. Потърсете медицинска помощ. Свеждайте до минимум микробната контаминация на реагентите, в противен случай може да се появи увеличаване на неспецифичното оцветяване. Инкубационни времена или температури, различни от посочените, могат да доведат до грешни резултати. Всякакви подобни промени трябва да бъдат валидирани от потребителя.

Качествен контролРазличията в обработката на тъканите и техническите процедури в лабораторията на потребителя могат да доведат до значително вариране на резултатите, налагащо редовно извършване на вътрешен контрол в допълнение към следните процедури. Контролите трябва да са свежи спесимени, взети по време на аутопсия/биопсия/операция, фиксирани във формалин, обработени и вградени в парафинов восък, възможно най-бързо, по същия начин като проба(та) на пациента(ите).

Позитивна тъканна контролаИзползва се, за да се покажат правилно приготвени тъкани и правилни техники на оцветяване. Една позитивна тъканна контрола трябва да бъде включена за всеки сет с тестови условия при всяка серия проби за оцветяване. Тъкан със слабо позитивно оцветяване е по-подходяща от тъкан със силно позитивно оцветяване за оптимален качествен контрол и за откриване на по-малки нива на деградация на реагента.2

Препоръчителната позитивна тъканна контрола е сливица. Ако позитивната тъканна контрола не показва позитивно оцветяване, резултатите от спесимените, включени в теста, трябва да се считат за невалидни.

Негативна тъканна контролаТрябва да се изследва след позитивната тъканна контрола, за да се провери специфичността на белязването на таргетния антиген от първичното антитяло. Препоръчителната тъкан за негативна контрола е паращитовидната жлеза. Алтернативно, разнообразието от различни видове клетки, присъстващи в повечето тъканни срези, често предлага места за негативна контрола, но това трябва да се провери от потребителя. Неспецифичното оцветяване, ако присъства, обикновено е дифузно на вид. Спорадично оцветяване на съединителна тъкан може да се наблюдава и в части от прекомерно фиксирани във формалин тъкани. Използвайте интактни клетки за интерпретация на резултатите от оцветяването. Некротичните или дегенериралите клетки често се оцветяват неспецифично.3 Може да се видят неверни позитивни резултати поради неимунологично свързване на протеини или реакционни продукти на субстрата. Те може да са причинени и от ендогенни ензими, като например псевдопероксидаза (еритроцити), ендогенна пероксидаза (цитохром C) или ендогенен биотин (напр. черен дроб, гърда, мозък, бъбрек) в зависимост от типа на използваното имунно оцветяване. За диференциране на ендогенна ензимна активност или неспецифично ензимно свързване от специфична имунна реактивност ексклузивно може да се оцветят допълнителни тъкани от пациента, съответно със субстрат-хромоген или с ензимни комплекси (авидин-биотин, стрептавидин, маркиран полимер) и субстрат-хромоген. Ако се появи специфично оцветяване в негативната тъканна контрола, резултатите от спесимените на пациентите трябва да се считат за невалидни.

Негативна контрола на реагентаИзползвайте неспецифична негативна контрола на реагента, вместо първичното антитяло, със срез от всеки спесимен на пациента, за да се направи оценка на неспецифичното оцветяване и да се даде по-добра интерпретация на специфичното оцветяване на мястото на антигена.

Тъкан от пациентаСпесимените на пациенти, оцветени с NCL-L-IgG, трябва да се изследват последни. Наситеността на позитивното оцветяване трябва да бъде оценена в контекста на всяко неспецифично фоново оцветяване на негативната контрола на реагента. Както при всеки имунохистохимичен тест, един отрицателен резултат означава, че антигенът не е открит, а не че антигенът отсъства в анализираните клетки/тъкан. Ако се налага, използвайте панел от антитела за идентифициране на фалшиво отрицателни реакции.

Очаквани резултатиНормални тъкани Клонинг RWP49 открива протеина IgG в цитоплазмата и на мембраната на клетките на плазмата, B-клетките на мантията и зародишните центрове. Освен това протеинът IgG е се открива в редица тъкани, включващи ободно черво (епител), тънки черва (епител), малък мозък (клетки на Пуркиние, глиални клетки), бъбрек (тубули, гломерули), надбъбречна жлеза (кортекс, медула), панкреас (ацини, островни клетки, канали), бял дроб (алвеоли, бронхиален епител), черен дроб (хепатоцити), хранопровод (епител), кожа (епител), далак (червена пулпа), яйчник (строма), цервикс (епител), тестис (канали), простата (ацини), тимус, хипофиза, сливица (зародишни центрове, епител, плазмени клетки), костен мозък, апендикс (мезотел) и пъпна връв (мезотел). (Общ брой на нормалните случаи = 33).Абнормни тъкани Клонинг RWP49 оцветява 8/14 миелома. 38/43 други оценени хематологични злокачествени образувания са позитивни (включително 13/14 дифузни едроклетъчни B-клетъчни лимфома, 5/6 периферми T-клетъчни лимфома, 4/6 фоликуларни лимфома, 5/5 лимфома на Ходжкин, 2/2 мантелоклетъчни лимфома, 2/2 анапластични едроклетъчни лимфома, 1/2 MALTomas, 1/1 лимфом на Бъркит, 1/1 лимфом на маргинална зона, 1/1 ангиоимунобластен лимфом, 1/1 NK/T-клетъчен лимфом, 1/1 B-клетъчен лимфом, богат на T-клетки и 1/1 лимфобластен лимфом). С изключение на инфилтриращите лимфоцити, протеинът IgG е открит и в 31/41 нелимфоидни злокачествени образувания (включително 9/10 плоскоклетъчни карцинома, 4/4 чернодробни тумора, 3/4 тумора за яйчниците, 3/3 колоректални тумора, 2/2 стомашни тумора, 2/2 тумора на панкреаса, 2/2 бъбречни тумора, 2/2 тумора на простатата, 2/2 белодробни тумора, 1/2 тумора на гърдата и 1/2 метастатични карцинома на лимфните възли). Не е открито оцветяване при тумори на щитовидната жлеза (0/4) и мозъчни тумори (0/2). (Общ брой на абнормните случаи = 98).Продуктът NCL-L-IgG се препоръчва за откриване на антиген на IgG в нормални и неопластични тъкани като допълнение към конвенционалната хистопатология с използване на неимунологични хистохимични оцветявания.

IGG-L-CE Page 40

Общи ограниченияИмунохистохимията е многостъпков диагностичен процес, който се състои от специализирано обучение за избор на подходящи реагенти, избор на тъкани, фиксация и обработка, подготовка на IHC предметно стъкло и интерпретация на резултатите от оцветяването. Тъканното оцветяване зависи от боравенето с тъканта и нейната обработка преди оцветяването. Неправилната фиксация, замразяване, размразяване, промиване, изсушаване, затопляне, срязване или контаминацията с други тъкани или течности може да причини поява на артефакти, блокиране на антителата или фалшиво отрицателни резултати. Несъответстващите резултати може да се дължат на вариации в методите на фиксация и вграждане или на присъща нерегулярност в тъканта.4 Прекомерното или непълно контраоцветяване може да попречи на правилната интерпретация на резултатите. Клиничната интерпретация на всяко оцветяване или неговата липса следва да бъде допълнена от морфологични проучвания с помощта на подходящи контроли и трябва да се оценява в контекста на клиничната история на пациента и други диагностични изследвания от квалифициран патолог. Антителата от Leica Biosystems Newcastle Ltd са предназначени за употреба, както е указано, върху замразени или вградени в парафин срези със специфични изисквания за фиксация. Възможно е да настъпи неочаквана антигенна експресия, особено при неоплазми. Клиничната интерпретация на всеки оцветен тъканен срез трябва да включва морфологичен анализ и оценката на подходящи контроли.

Библиография – основна1. National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS). Protection of laboratory workers from infectious diseases

transmitted by blood and tissue; proposed guideline. Villanova, P.A. 1991; 7(9). Order code M29-P.2. Battifora H. Diagnostic uses of antibodies to keratins: a review and immunohistochemical comparison of seven monoclonal and

three polyclonal antibodies. Progress in Surgical Pathology. 6:1–15. eds. Fenoglio-Preiser C, Wolff CM, Rilke F. Field & Wood, Inc., Philadelphia.

3. Nadji M, Morales AR. Immunoperoxidase, part I: the techniques and pitfalls. Laboratory Medicine. 1983; 14:767.4. Omata M, Liew CT, Ashcavai M, Peters RL. Nonimmunologic binding of horseradish peroxidase to hepatitis B surface antigen: a

possible source of error in immunohistochemistry. American Journal of Clinical Pathology. 1980; 73:626.5. Karamchandani JR, Younes SF, Warnke RA. IgG4-related systemic sclerosing disease of the ocular adnexa. American Journal of

Clinical Pathology. 2012; 137: 699-711.6. Janeway C, Travers P, Walport M et al. Immunobiology: The immune system in health and disease. Chapter 3. Garland Science. New

York and London. 2001.7. Fridman W. Fc receptors and immunoglobulin binding factors. FASEB Journal. 1991; 5: 2684-2690.

Изменения на предишно изданиеСъстав на реагентите, концентрация на антитела, препоръки за употреба, предупреждения и предпазни мерки.

Дата на издаване12 Декември 2019

IGG-L-CE Page 41

Novocastra folyékony egér monoklonális antitestImmunoglobulin GTermékkód: NCL-L-IgG

Alkalmazási területIn vitro diagnosztikai használatra. Az NCL-L-IgG a humán immunglobulin G (IgG) fénymikroszkóppal végzett kvalitatív azonosítására szolgál paraffinos metszetekben. Minden festődés meglétének vagy hiányának klinikai értelmezését morfológiai vizsgálatokkal és megfelelő kontrollokkal kell kiegészíteni, valamint az értékelést a beteg klinikai kórtörténete és egyéb diagnosztikai vizsgálatok figyelembevételével, képzett patológusnak kell elvégeznie.

Az eljárás elveAz immunhisztokémiai (immunohistochemical, IHC) megfestési technikák az antigén elleni specifikus antitest (elsődleges antitest), az elsődleges antitest elleni másodlagos antitest és egy enzim kromogén szubsztráttal alkotott komplexének egymás után következő alkalmazásán keresztül, közbeiktatott mosási lépések mellett lehetővé teszik az antigének megjelenítését. A kromogén enzimaktiválása látható reakcióterméket eredményez az antigén helyén. Ezután a minta kontrasztfesthető és lefedhető. Az eredmények fénymikroszkóp használatával értelmezhetők, majd segítségül használhatók a patofiziológiás folyamatok differenciáldiagnózisa során, amely folyamatok az esetek egy részében konkrét antigénhez kapcsolódnak.

KlónRWP49

ImmunogénA humán IgG molekula 327 aminosavának megfelelő prokarióta eredetű rekombináns fehérje.

SpecificitásHumán IgG.

A reagens összetételeAz NCL-L-IgG a folyékony szövettenyészet felülúszója 0,35% ProClin 950 tartósítószert tartalmaz.

Ig-osztályIgG1

Összfehérje-koncentrációA sarzsspecifikus összfehérje-koncentrációt lásd az üveg címkéjén.

Antitest-koncentrációLegalább 59 mg/l, ELISA módszerrel meghatározva. A sarzsspecifikus Ig-koncentrációt lásd az üveg címkéjén.

Felhasználási javaslatokImmunhisztokémia paraffinos metszeteken. Hőindukált epitópfeltárás (heat induced epitope retrieval, HIER): Kövesse a Novocastra Epitope Retrieval Solution pH 6 termék használati útmutatóját. Javasolt hígítás: 1:200, 30 percen át, 25 °C-on. Az adatok csak útmutatásul szolgálnak, a felhasználóknak kell meghatározniuk saját optimális munkaoldataikat. Megjelenítés: Kövesse a Novolink Polymer Detection Systems rendszerek használati útmutatóját. Ha további termékinformációkra vagy támogatásra van szüksége, forduljon a Leica Biosystems helyi forgalmazójához vagy regionális irodájához, vagy keresse fel a Leica Biosystems weboldalát a www.LeicaBiosystems.com címen. Más manuális festési rendszerekkel vagy automata platformokkal való használat esetén validálni kell az antitest teljesítményét.

Tárolás és stabilitás2–8 °C-on tárolandó. Tilos lefagyasztani. Felhasználás után azonnal tegye vissza 2–8 °C közötti hőmérsékletre. Ne használja az üveg címkéjén feltüntetett lejárati dátum után. A fentiekben előírtaktól eltérő tárolási feltételeket a felhasználónak ellenőriznie kell.

A minták előkészítéseA javasolt fixálószer a paraffinba ágyazott szövetmetszeteknél 10%-os, semleges pufferolású formalin.

Figyelmeztetések és óvintézkedésekEz a reagens a sejtkultúra felülúszójából készült. Mivel biológiai termék, kezelésekor észszerű körültekintéssel kell eljárni. A ProClin™ 950 koncentrációja 0,35%. A termék 2-metilizotiazol-3-(2H)-on hatóanyagot tartalmaz, amely a bőr, a szem, a nyálkahártyák és a felső légutak irritációját okozhatja. A reagensek kezeléséhez viseljen egyszer használatos kesztyűt. Minden potenciálisan toxikus összetevő ártalmatlanításával kapcsolatban kövesse a szövetségi, állami és helyi előírásokat. A mintákat fixálás előtt és után, valamint a velük érintkező összes anyagot fertőzések terjesztésére képes anyagként kell kezelni, és megfelelő körültekintéssel kell ártalmatlanítani.1 Soha ne pipettázza szájjal a reagenseket, továbbá kerülje a bőr és a nyálkahártyák érintkezését a reagensekkel és a mintákkal. Ha a reagensek vagy minták érzékeny területtel érintkeznek, bő vízzel mossa le az érintett területet. Forduljon orvoshoz. Minimálisra kell csökkenteni a reagensek mikrobiális szennyeződését, különben megnövekedhet a nem specifikus festődés. A megadottaktól eltérő inkubációs idők és hőmérsékletek hibás eredményekhez vezethetnek. Minden ilyen változást a felhasználónak kell validálnia.

Total Protein

IGG-L-CE Page 42

Minőség-ellenőrzésA felhasználó laboratóriumában alkalmazott szövetfeldolgozási és technikai eljárások eltérései jelentős különbséget okozhatnak az eredményekben, ami az alábbi eljárásokon túl belső kontrollok rendszeres futtatását teszi szükségessé. Kontrollként friss boncolási/biopsziás/sebészeti mintákat kell használni, amelyeket a lehető leghamarabb a betegmintákkal megegyező módon kell formalinban fixálni, feldolgozni és paraffinviaszba ágyazni.

Pozitív szövetkontrollA megfelelő szövet-előkészítés és festési technikák ellenőrzésére használatos. Minden tesztelési körülményegyüttes esetében és minden megfestési sorozatban kell alkalmazni egy pozitív szövetkontrollt. A gyengén pozitív festődésű szövet alkalmasabb az erősebben pozitív festődésű szövetnél az optimális minőség-ellenőrzéshez, valamint a kismértékű reagensbomlás észleléséhez.2

A javasolt pozitív kontrollszövet a tonsilla. Ha a pozitív szövetkontroll nem mutat pozitív festődést, a vizsgált minták eredményeit érvénytelennek kell tekinteni.

Negatív szövetkontrollA pozitív szövetkontroll után azért kell megvizsgálni, hogy a vizsgált antigén elsődleges antitest segítségével történő jelölésének specificitását ellenőrizni lehessen. A javasolt negatív kontrollszövet a mellékpajzsmirigy. Ezenkívül a legtöbb szövetmetszetben jelen lévő különböző sejttípusok gyakran használhatók negatív kontrollként, de ezeket a felhasználónak kell ellenőriznie. Ha van nem specifikus festődés, az rendszerint diffúz megjelenésű. A formalinban túlfixált szövetekből származó metszeteknél a kötőszövet szórványos festődése is megfigyelhető. A festési eredmények értelmezésére ép sejteket használjon. A nekrotizált vagy degenerálódott sejtek gyakran nem specifikusan festődnek meg.3 A fehérjék vagy a szubsztrát reakciótermékeinek nem immunológiai kötődése miatt álpozitív eredmények jelentkezhetnek. Az alkalmazott immunfestés típusától függően álpozitív eredményeket okozhatnak olyan endogén enzimek is, mint a pszeudoperoxidáz (vörösvérsejtek), endogén peroxidáz (citokróm C), illetve endogén biotin (pl. máj, emlő, agy, vese). Az endogén enzim aktivitásának vagy az enzimek nem specifikus kötődésének a specifikus immunreakciótól való megkülönböztetésére további betegszövetek festhetők kizárólag szubsztrát–kromogén oldattal vagy enzimkomplexekkel (avidin-biotin, sztreptavidin, jelölt polimer) és szubsztrát–kromogénnel. Ha a negatív szövetkontroll specifikus festődést mutat, a betegminták eredményeit érvénytelennek kell tekinteni.

Negatív reagenskontrollA nem specifikus festődés kiértékeléséhez és az antigén helyén létrejövő specifikus festődés jobb értelmezéséhez minden betegminta esetén egy metszeten alkalmazzon az elsődleges antitest helyett nem specifikus negatív reagenskontrollt.

BetegszövetAz NCL-L-IgG-vel festett betegmintákat utolsóként vizsgálja meg. A pozitív festődés intenzitását a negatív reagenskontroll esetleges nem specifikus háttérfestődésének viszonylatában értékelje. Mint minden immunhisztokémiai vizsgálatnál, a negatív eredmény azt jelenti, hogy az antigén nem volt kimutatható, nem pedig azt, hogy az antigén nem volt jelen a vizsgált sejtekben/szövetben. Szükség esetén az álnegatív reakciók azonosítására használjon antitestpanelt.

Várható eredményekNormál szövetek Az RWP49 klón kimutatta az IgG fehérjét a plazmasejteknek, valamint a köpenyzóna és a csíraközpontok B-sejtjeinek citoplazmájában és membránján. Emellett az IgG fehérje kimutatható volt számos szövetben, beleértve a vastagbélben (epitélium), vékonybélben (epitélium), kisagyban (Purkinje-sejtek, gliasejtek), vesében (tubulusok, glomerulusok), mellékvesében (kéreg, velő), hasnyálmirigyben (acinusok, szigetek, vezetékek), tüdőben (alveolusok, hörgőepitélium), májban (hepatociták), nyelőcsőben (epitélium), bőrben (epitélium), lépben (vörös pulpa), petefészekben (sztróma), méhnyakban (epitélium), herében (tubulusok), prosztatában (acinusok), csecsemőmirigyben, agyalapi mirigyben, tonsillában (csíraközpontok, epitélium, plazmasejtek), csontvelőben, vakbélben (mezotélium) és köldökzsinórban (mezotélium). (Normál esetek összesített száma = 33).Tumorszövetek A RWP49 klón megfestett 8/14 mielómát. 38/43 kiértékelt egyéb hematológiai malignitás volt pozitív (beleértve 13/14 diffúz nagy B-sejtes limfóma, 5/6 perifériás T-sejtes limfóma, 4/6 follikuláris limfóma, 5/5 Hodgkin-limfóma, 2/2 köpenysejtes limfóma, 2/2 anaplasztikus nagy sejtes limfóma, 1/2 MALTóma, 1/1 Burkitt-limfóma, 1/1 margináliszóna-limfóma, 1/1 angioimmunoblasztos limfóma, 1/1 NK/T-sejtes limfóma, 1/1 T-sejt-gazdag B-sejtes limfóma és 1/1 limfoblasztos limfóma). Az infiltráló limfocitákat leszámítva kimutatta az IgG-t 31/41 nem limfoid rosszindulatú betegségnél (beleértve 9/10 laphámsejtes karcinóma, 4/4 májdaganat, 3/4 petefészek-daganat, 3/3 kolorektális daganat, 2/2 gyomordaganat, 2/2 hasnyálmirigy-daganat, 2/2 vesedaganat, 2/2 prosztatadaganat, 2/2 tüdődaganat, 1/2 emlődaganat és 1/2 áttétes nyirokcsomó-karcinóma esetén). A pajzsmirigydaganatok (0/4) és az agydaganatok (0/2) esetében nem mutatkozott festődés. (Kóros esetek összesített száma = 98).Az NCL-L-IgG az IgG antigén detektálására ajánlott egészséges és tumoros szövetekben, a nem immunológiai hisztokémiai festést használó hagyományos kórszövettani eljárások kiegészítéseként.

Általános korlátozásokAz immunhisztokémia több lépésből álló diagnosztikai folyamat, amely a következőket foglalja magában: speciális képzés alapján a megfelelő reagensek kiválasztása; a szövetek kiválasztása, fixálása és feldolgozása; az IHC tárgylemez előkészítése; és a festési eredmények értelmezése. A szövet festődése függ a szövet festés előtti kezelésétől és feldolgozásától. A nem megfelelő fixálás, a fagyasztás, olvasztás, mosás, szárítás, melegítés, metszetkészítés, illetve a más szövetekkel vagy folyadékokkal történő szennyezés műtermékeket, az antitestek befogását, illetve álnegatív eredményeket okozhat. Ellentmondó eredményekhez vezethetnek a fixálási vagy beágyazási módszerek eltérései, illetve a szövet eredendő rendellenességei.4 A túlzott vagy hiányos kontrasztfestés ronthatja az eredmények megfelelő értelmezését.

IGG-L-CE Page 43

Minden festődés meglétének vagy hiányának klinikai értelmezését morfológiai vizsgálatokkal és megfelelő kontrollokkal kell kiegészíteni, valamint az értékelést a beteg klinikai kórtörténete és egyéb diagnosztikai vizsgálatok figyelembevételével, képzett patológusnak kell elvégeznie. A Leica Biosystems Newcastle Ltd által biztosított antitestek specifikus fixálási követelmények mellett, az utasításoknak megfelelően fagyasztott vagy paraffinba ágyazott metszeteken történő felhasználásra szolgálnak. Időnként váratlan antigén-expresszió fordulhat elő, különösen daganatok esetében. Bármely festett szövetmetszet klinikai értelmezéséhez morfológiai elemzést is kell végezni, és ki kell értékelni a megfelelő kontrollokat.

Bibliográfia – általános1. National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS). Protection of laboratory workers from infectious diseases

transmitted by blood and tissue; proposed guideline. Villanova, P.A. 1991; 7(9). Order code M29-P.2. Battifora H. Diagnostic uses of antibodies to keratins: a review and immunohistochemical comparison of seven monoclonal and

three polyclonal antibodies. Progress in Surgical Pathology. 6:1–15. eds. Fenoglio-Preiser C, Wolff CM, Rilke F. Field & Wood, Inc., Philadelphia.

3. Nadji M, Morales AR. Immunoperoxidase, part I: the techniques and pitfalls. Laboratory Medicine. 1983; 14:767.4. Omata M, Liew CT, Ashcavai M, Peters RL. Nonimmunologic binding of horseradish peroxidase to hepatitis B surface antigen: a

possible source of error in immunohistochemistry. American Journal of Clinical Pathology. 1980; 73:626.5. Karamchandani JR, Younes SF, Warnke RA. IgG4-related systemic sclerosing disease of the ocular adnexa. American Journal of

Clinical Pathology. 2012; 137: 699-711.6. Janeway C, Travers P, Walport M et al. Immunobiology: The immune system in health and disease. Chapter 3. Garland Science. New

York and London. 2001.7. Fridman W. Fc receptors and immunoglobulin binding factors. FASEB Journal. 1991; 5: 2684-2690.

Módosítások az előző változathoz képestReagens összetétele, antitest koncentráció, felhasználási ajánlások, figyelmeztetések és óvintézkedések.

Kiadás dátuma12 december 2019

IGG-L-CE Page 44

Novocastra Anticorp monoclonal lichid de șoareceImmunoglobulin GCod produs: NCL-L-IgG

Utilizare prevăzutăPentru diagnosticare in vitro. NCL-L-IgG este destinat identificării calitative, prin intermediul microscopiei optice, a moleculelor de imunoglobulină G (IgG) umană în secțiunile de parafină. Interpretarea clinică a oricărei colorări sau a absenței acesteia trebuie completată cu studii morfologice utilizând controale adecvate și trebuie evaluată în contextul antecedentelor clinice ale pacientului, precum și al altor teste de diagnosticare efectuate de către un patolog calificat.

Principiul de procedurăTehnicile de colorare imunohistochimică (IHC) permit vizualizarea antigenilor prin aplicarea secvențială a unui anumit anticorp pe antigen (anticorp primar), a unui anticorp secundar pe anticorpul primar și a unui complex enzimatic cu un substrat cromogen, cu etape de spălare intercalate. Activarea enzimatică a cromogenului duce la un produs de reacție vizibil la locul aplicării antigenului. Specimenul poate fi apoi contracolorat și acoperit cu lamelă. Rezultatele sunt interpretate folosind un microscop optic și ajută la diagnosticul diferențial al proceselor patofiziologice, care pot sau nu să fie asociate cu un anumit antigen.

ClonăRWP49

ImunogenProteină procariotică recombinantă corespunzând la 327 de aminoacizi din molecula IgG umană.

SpecificitateIgG umană.

Compoziția reactivuluiNCL-L-IgG este un supernatant de cultură tisulară lichid care conține conține 0,35 % ProClin™ 950 drept conservant.

Clasa IgIgG1

Concentrație proteină totalăConsultați eticheta flaconului pentru concentrația proteinelor totale specifică lotului.

Concentrație anticorpiMai mare sau egală cu 59 mg/L, așa cum este determinată prin ELISA. Consultați eticheta flaconului pentru concentrația Ig specifică lotului.

Recomandări privind utilizareaImunohistochimie pe secțiuni de parafină. Recuperarea indusă de căldură a epitopilor (HIER): Urmați instrucțiunile de utilizare din Novocastra Epitope Retrieval Solution pH 6. Diluție sugerată: 1:200 timp de 30 de minute la 25 °C. Aceste informații sunt furnizate cu rol de îndrumare, iar utilizatorii trebuie să-și stabilească singuri propriile diluții de lucru optime. Vizualizare: Respectați instrucțiunile de utilizare din Novolink Polymer Detection Systems. Pentru asistență sau informații suplimentare cu privire la produs, luați legătura cu distribuitorul dvs. local sau cu biroul regional al Leica Biosystems sau, ca alternativă, vizitați site-ul web al Leica Biosystems, www.LeicaBiosystems.com. Eficiența acestui anticorp trebuie validată atunci când este utilizat cu alte sisteme de colorare manuală sau alte platforme automatizate.

Depozitare și stabilitateA se depozita la 2–8 °C. A nu se congela. A se returna la 2–8 °C imediat după utilizare. A nu se utiliza după data expirării indicată pe eticheta flaconului. Alte condiții de depozitare decât cele specificate mai sus trebuie verificate de către utilizator.

Pregătirea specimenuluiMediul de fixare recomandat este formalină tamponată neutru 10% pentru secțiunile de țesut încorporate în parafină.

Avertismente și precauțiiAcest reactiv a fost pregătit din supernatantul culturii celulare. Întrucât este un produs biologic, trebuie să se acționeze cu prudență rezonabilă la manipularea sa. Concentrația de ProClin™ 950 este 0,35 %. Acesta conține ingredientul activ 2-methilizotiazol-3(2H)-onă și poate cauza iritarea pielii, ochilor, membranelor mucoase și tractului respirator superior. Purtați mănuși de unică folosință atunci când manipulați reactivii. Consultați reglementările naționale sau locale pentru informații privind eliminarea la deșeuri a tuturor componentelor potențial toxice. Specimenele, înainte și după fixare, precum și toate materialele expuse la acestea, trebuie manevrate ca și când ar avea potențialul de a transmite infecții și trebuie eliminate luând măsurile de precauție adecvate.1 Nu pipetați niciodată reactivii cu gura și evitați contactul reactivilor și specimenelor cu pielea și membranele mucoase. Dacă reactivii sau probele vin în contact cu suprafețele sensibile, spălați cu apă din abundență. Solicitați asistență medicală. Reduceți la minimum contaminarea microbiană a reactivilor, în caz contrar poate apărea o creștere a colorării nespecifice. Timpii sau temperaturile de incubație care diferă de valorile specificate pot genera rezultate eronate. Orice astfel de modificări trebuie validate de către utilizator.

Total Protein

IGG-L-CE Page 45

Controlul calitățiiDiferențele în ceea ce privește procesarea țesutului și procedurile tehnice în laboratorul utilizatorului pot cauza o variabilitate semnificativă a rezultatelor, necesitând efectuarea cu regularitate de controale interne, în plus față de următoarele proceduri. Probele de control trebuie să fie probe proaspete de autopsie/biopsie/chirurgicale, fixate în formalină, procesate și încorporate în ceară de parafină cât mai curând posibil și în aceeași manieră ca și probele pacientului.

Țesutul de control pozitivFolosit pentru a indica țesuturile pregătite corect și tehnicile de colorare adecvate. O probă de țesut de control pozitiv trebuie să fie inclusă pentru fiecare set de condiții de testare în fiecare etapă de colorare. Un țesut cu colorare pozitivă slabă este mai adecvat decât un țesut cu colorare pozitivă puternică în vederea unui control optim al calității și pentru a detecta nivelurile minore de degradare a reactivului.2

Țesutul de control pozitiv recomandat este de amigdale. Dacă țesutul de control pozitiv nu demonstrează colorația pozitivă, rezultatele obținute cu acele probe de testare trebuie considerate nevalide.

Țesutul de control negativTrebuie examinat după țesutul de control pozitiv pentru a verifica specificitatea informațiilor de etichetare ale antigenului țintă în funcție de anticorpul primar. Țesutul de control negativ recomandat este paratiroida. Ca alternativă, varietatea de tipuri diferite de celule prezente în majoritatea secțiunilor tisulare oferă frecvent locuri de control negativ, dar acest lucru trebuie verificat de către utilizator. Colorația nespecifică, dacă este prezentă, are, de obicei, un aspect difuz. Colorația sporadică a țesutului conjunctiv poate fi observată, de asemenea, în secțiuni de țesuturi fixate în mod excesiv în formalină. Folosiți celule intacte pentru interpretarea rezultatelor de colorare. Celulele necrotice sau degenerate se colorează deseori într-un mod nespecific.3 Se pot observa rezultate fals pozitive ca urmare a legării non-imunologice a proteinelor sau produșilor de reacție ai substratului. Acestea pot fi cauzate, de asemenea, de enzimele endogene precum pseudoperoxidaza (eritrocite), peroxidaza endogenă (citocromul C) sau biotina endogenă (de exemplu, ficat, sân, creier, rinichi), în funcție de tipul de imunocolorație folosit. Pentru a diferenția activitatea enzimelor endogene sau legarea nespecifică a enzimelor de imunoreactivitatea specifică, pot fi colorate țesuturi suplimentare de la pacient numai cu substrat-cromogen sau, respectiv, complexe enzimatice (avidină-biotină, streptavidină, polimer etichetat) și substrat-cromogen. În cazul în care colorația specifică are loc în țesutul de control negativ, rezultatele obținute pe probele pacientului trebuie să fie considerate nevalide.

Reactivul de control negativFolosiți un reactiv de control negativ non-specific în locul anticorpului primar cu o secțiune din fiecare specimen al pacientului pentru a evalua colorația nespecifică și a permite o mai bună interpretare a colorării specifice la situl antigenului.

Țesutul pacientuluiExaminați specimenele pacientului colorate cu NCL-L-IgG ultimele. Intensitatea colorației pozitive trebuie evaluată în contextul oricărei colorații de fond nespecifice a reactivului de control negativ. La fel ca în cazul oricărui test imunohistochimic, un rezultat negativ înseamnă că antigenul nu a fost detectat, și nu că antigenul a fost absent în celulele/țesuturile analizate. Dacă este necesar, folosiți un panel pentru anticorpi pentru identificarea reacțiilor fals negative.

Rezultate așteptateȚesuturi normale Clona RWP49 a detectat proteina IgG în citoplasma și pe membrana celulelor plasmatice, celulelor B din zona mantalei și centrelor germinale. În plus, proteina IgG a fost detectată într-o varietate de țesuturi incluzând colon (epiteliu), intestin subțire (epiteliu), cerebel (celule Perkinje, celule gliale), rinichi (tubule, glomerule), suprarenală (cortex, medula), pancreas (acini, insule, canale), plămân (alveole, epiteliu bronhial), ficat (hepatocite), esofag (epiteliu), piele (epiteliu), splină (pulpa roșie), ovar (stroma), col uterin (epiteliu), testicule (tubule), prostată (acini), timus, pituitară, amigdală (centre germinale, epiteliu, celule plasmatice), măduvă osoasă, apendice (mezoteliu) și cordonul ombilical (mezoteliu). (Numărul total al cazurilor normale = 33).Țesuturi anormale Clona RWP49 a colorat 8/14 mieloame. 38/43 alte malignități hematologice evaluate au fost pozitive (incluzând 13/14 limfoame difuze cu celule B mari, 5/6 limfoame periferice cu celule T, 4/6 limfoame foliculare, 5/5 limfoame Hodgkin, 2/2 limfoame cu celule de manta, 2/2 limfoame anaplastice cu celule mari, 1/2 limfoame MALT, 1/1 limfoame Burkitt, 1/1 limfoame de zonă marginală, 1/1 limfoame angioimunoblastice, 1/1 limfoame cu celule NK/T, 1/1 limfoame cu celule B bogate în celule T și 1/1 limfoame limfoblastice). În afara limfocitelor infiltrante, proteina IgG a fost de asemenea detectată în 31/41 malignități non-limfoide incluzând 9/10 carcinoame cu celule scuamoase, 4/4 tumori ale ficatului, 3/4 tumori ovariene, 3/3 tumori colorectale, 2/2 tumori ale stomacului, 2/2 tumori pancreatice, 2/2 tumori renale, 2/2 tumori ale prostatei, 2/2 tumori pulmonare, 1/2 tumori mamare și 1/2 carcinoame metastatice ale ganglionilor limfatici. Nu s-a detectat colorare în tumorile tiroidei (0/4) și tumorile cerebrale (0/2). (Numărul total al cazurilor anormale = 98).NCL-L-IgG este recomandat pentru detectarea antigenului IgG în țesuturile normale și neoplazice, ca adjuvant al histopatologiei convenționale, utilizând coloranți histochimici non-imunologici.

Limitări generaleImunohistochimia este un proces de diagnostic cu mai multe etape, care constă din instruirea specializată în ceea ce privește alegerea reactivilor adecvați; alegerea, fixarea și procesarea țesutului; prepararea lamei IHC; și interpretarea rezultatelor de colorare. Colorarea tisulară depinde de manipularea și procesarea țesutului înainte de colorare. Fixarea, congelarea, dezghețarea, spălarea, uscarea, încălzirea, secționarea necorespunzătoare sau contaminarea cu alte țesuturi ori fluide pot cauza artefacte, captura anticorpilor sau rezultate fals negative. Rezultatele inconsecvente pot fi atribuite diferențelor în ceea ce privește metodele de fixare și încorporare, ori neregularităților inerente ale țesutului.4 Contracolorația excesivă sau incompletă poate compromite interpretarea adecvată a rezultatelor. Interpretarea clinică a oricărei colorări sau a absenței acesteia trebuie completată cu studii morfologice utilizând controale adecvate și trebuie evaluată în contextul antecedentelor clinice ale pacientului, precum și al altor teste de diagnosticare efectuate de către un patolog calificat.

IGG-L-CE Page 46

Anticorpii de la Leica Biosystems Newcastle Ltd sunt destinați utilizării, conform indicațiilor, fie pe secțiuni congelate, fie pe secțiuni încorporate în parafină cu cerințe de fixare specifice. Poate apărea exprimarea neașteptată a antigenului, în special în neoplasme. Interpretarea clinică a oricărei secțiuni tisulare colorate trebuie să includă analiza morfologică și evaluarea probelor de control adecvate.

Bibliografie - General1. National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS). Protection of laboratory workers from infectious diseases

transmitted by blood and tissue; proposed guideline. Villanova, P.A. 1991; 7(9). Order code M29-P.2. Battifora H. Diagnostic uses of antibodies to keratins: a review and immunohistochemical comparison of seven monoclonal and

three polyclonal antibodies. Progress in Surgical Pathology. 6:1–15. eds. Fenoglio-Preiser C, Wolff CM, Rilke F. Field & Wood, Inc., Philadelphia.

3. Nadji M, Morales AR. Immunoperoxidase, part I: the techniques and pitfalls. Laboratory Medicine. 1983; 14:767.4. Omata M, Liew CT, Ashcavai M, Peters RL. Nonimmunologic binding of horseradish peroxidase to hepatitis B surface antigen: a

possible source of error in immunohistochemistry. American Journal of Clinical Pathology. 1980; 73:626.5. Karamchandani JR, Younes SF, Warnke RA. IgG4-related systemic sclerosing disease of the ocular adnexa. American Journal of

Clinical Pathology. 2012; 137: 699-711.6. Janeway C, Travers P, Walport M et al. Immunobiology: The immune system in health and disease. Chapter 3. Garland Science. New

York and London. 2001.7. Fridman W. Fc receptors and immunoglobulin binding factors. FASEB Journal. 1991; 5: 2684-2690.

Amendamente la ediția anterioarăCompoziția reactivilor, concentrarea anticorpilor, recomandări privind utilizarea, avertismente și precauții.

Data publicării12 decembrie 2019

IGG-L-CE Page 47

Жидкая форма моноклональных антител мыши NovocastraImmunoglobulin GКод продукта: NCL-L-IgG

НазначениеДля диагностики in vitro Препарат NCL-L-IgG предназначен для качественной идентификации молекул иммуноглобулина G (IgG) человека в парафиновых срезах методом световой микроскопии. Клиническая интерпретация любого окрашивания или его отсутствия должна быть дополнена морфологическими исследованиями с надлежащими контролями и должна быть оценена квалифицированным патологом с учетом анамнеза пациента и других диагностических тестов.

Принцип методаИммуногистохимические (ИГХ) методы окрашивания позволяют визуализировать антигены путем последовательного связывания специфического антитела с антигеном (первичное антитело), вторичного антитела с первичным антителом и ферментного комплекса с хромогенным субстратом. Между этими этапами выполняется промежуточная промывка. Ферментная активация хромогена приводит к образованию видимого продукта реакции в месте расположения антигена. После этого образцы можно подвергать контрастному окрашиванию и заключить под покровную пленку. Интерпретацию результатов выполняют под световым микроскопом и используют для дифференциальной диагностики патофизиологических процессов, которые могут быть связаны или не связаны с конкретным антигеном.

КлонRWP49

ИммуногенРекомбинантный белок из прокариотических клеток, соответствующий 327 аминокислотам молекулы IgG человека.

СпецифичностьМолекула IgG человека.

Состав реактиваNCL-L-IgG является супернатантом жидкой культуры тканей, 0,35 % ProClin™ 950 в качестве консерванта.

Класс иммуноглобулиновIgG1

Общая концентрация белкаОбщая концентрация белка в каждой партии указана на этикетке флакона.

Концентрация антителаНе менее 59 мг/л при измерении методом ИФА. Общая концентрация иммуноглобулина в каждой партии указана на этикетке флакона.

Рекомендации по применениюИммуногистохимическое окрашивание парафиновых срезов. Тепловая демаскировка эпитопа (Heat Induced Epitope Retrieval, HIER): выполняйте инструкцию по применению, прилагаемую к препарату Novocastra Epitope Retrieval Solution pH 6. Рекомендуемое разведение: 1:200 в течение 30 минут при температуре 25 °C. Данная информация носит рекомендательный характер, и пользователям следует самостоятельно определять оптимальные рабочие разведения. Визуализация: Следуйте инструкциям по применению, которые прилагаются к системам визуализации Novolink Polymer Detection Systems. Для получения дополнительной информации о продукции и технической поддержки обратитесь к местному дистрибьютору или в региональный офис компании Leica Biosystems либо, в качестве альтернативы, посетите веб-сайт компании Leica Biosystems, www.LeicaBiosystems.com В случае применения этого антитела с другими ручными системами окрашивания или автоматизированными платформами следует выполнять валидацию его рабочих параметров.

Хранение и стабильностьХранить при температуре 2–8 °C. Не замораживать. После использования незамедлительно вернуть на хранение при температуре 2–8 °C. Не использовать после указанной на этикетке флакона даты истечения срока годности. Условия хранения, отличающиеся от указанных выше, должны быть проверены пользователем.

Подготовка образцовДля приготовления залитых в парафин срезов тканей рекомендуется фиксация в 10 % нейтральном забуференном формалине.

Предупреждения и меры предосторожностиЭтот реактив был изготовлен из супернатанта культуры клеток. При обращении с этим продуктом, как и с другими биологическими продуктами, следует соблюдать разумную осторожность. Концентрация ProClin™ 950 составляет 0,35 %. Продукт содержит активный компонент 2-метилизотиазол-3(2H)-он и может раздражать кожу, глаза, слизистые оболочки и верхние дыхательные пути. При работе с реактивами надевайте одноразовые перчатки.

Total Protein

IGG-L-CE Page 48

В отношении утилизации любых потенциально опасных компонентов следуйте требованиям федеральных, региональных и местных нормативных документов. С образцами (до и после фиксации) и всеми материалами, которые находятся под их воздействием, следует обращаться как со способными к передаче инфекции и утилизировать, соблюдая соответствующие меры предосторожности.1 Никогда не набирайте реактивы в пипетку ртом и не допускайте контакта реактивов и образцов с кожей и слизистыми оболочками. В случае контакта реактивов или образцов с чувствительными зонами промойте их большим количеством воды. Обратитесь за медицинской помощью. Сводите к минимуму микробное загрязнение реактивов во избежание усиления неспецифического окрашивания. Инкубация при сроках и температурах, отличных от указанных в инструкции, может дать ошибочные результаты. Любые подобные изменения должны быть валидированы пользователем.

Контроль качестваРазличия в методах обработки тканей и технических процедурах, выполняемых в лаборатории пользователя, могут привести к существенной вариабельности результатов, в связи с чем требуется регулярное выполнение внутрилабораторных контролей в дополнение к указанным ниже процедурам. В качестве контролей следует использовать свежие образцы, полученные при аутопсии, биопсии или хирургических процедурах, фиксированные в формалине, обработанные и как можно скорее залитые в парафин так же, как были обработаны полученные у пациентов образцы.

Положительный контроль тканиПрименяется для проверки правильности подготовки тканей и методов окрашивания. В каждый набор условий теста при каждом цикле окрашивания следует включать один срез ткани для положительного контроля. Для оптимального контроля качества и обнаружения незначительных уровней деградации реактива более подходит ткань со слабым положительным окрашиванием, чем ткань с сильным положительным окрашиванием.2

В качестве положительного контроля рекомендуется использовать ткань миндалин. При отсутствии положительного окрашивания ткани, использующейся в качестве положительного контроля, результаты, полученные с исследуемыми образцами, считаются недействительными.

Отрицательный контроль тканиЭтот тест необходимо выполнять после положительного контроля ткани для проверки специфичности мечения целевого антигена первичным антителом. В качестве отрицательного контроля рекомендуется ткань паращитовидной железы. Кроме того, разнообразные типы клеток для отрицательного контроля можно часто найти в большинстве срезов тканей, однако такие препараты должны быть проверены пользователем. Неспецифическое окрашивание, если оно присутствует, обычно выглядит диффузным. В срезах тканей, избыточно фиксированных формалином, можно также иногда увидеть окрашивание соединительной ткани. Для интерпретации результатов окрашивания используйте интактные клетки. Некротизированные или разрушенные клетки часто окрашиваются неспецифически.3 Неиммунное связывание белков или продуктов реакции с субстратом может привести к ложноположительным результатам. Такие же результаты могут быть связаны с эндогенными ферментами, например псевдопероксидазой (в эритроцитах), эндогенной пероксидазой (цитохром C) или эндогенным биотином (например, в печени, молочной железе, головном мозге или почке) в зависимости от типа использованного иммунного окрашивания. Чтобы отличить активность эндогенных ферментов или неспецифическое связывание ферментов от специфической иммунореактивности, можно выполнить окрашивание дополнительных тканей пациента исключительно хромогенным субстратом или ферментными комплексами (авидин-биотин, стрептавидин, меченый полимер) и хромогенным субстратом соответственно. При наличии специфического окрашивания в отрицательном контроле ткани результаты исследования полученных у пациентов образцов считаются недействительными.

Отрицательный контроль реактиваДля оценки неспецифического окрашивания и лучшей интерпретации специфического окрашивания в области связывания антигена, исследуя срезы каждого образца, взятого у пациента, вместо первичных антител используйте реактив, служащий в качестве неспецифического отрицательного контроля.

Ткань, полученная у пациентаИсследуйте полученные у пациентов образцы, окрашенные NCL-L-IgG, последнюю очередь. Интенсивность положительного результата окрашивания следует оценивать с учетом любого неспецифического фонового окрашивания реактива, представляющего собой отрицательный контроль. Как и при любом иммуногистохимическом исследовании, отрицательный результат означает необнаружение антигена, но не его отсутствие в исследованных клетках или ткани. При необходимости следует использовать панель антител для выявления ложноотрицательных реакций.

Ожидаемые результатыНормальные ткани Клон RWP49 обнаружил IgG-протеин в цитоплазме и на мембране плазматических клеток, B-клеток мантийной зоны и зародышевых центров. Кроме того, IgG-протеин также был обнаружен в различных тканях, включая толстый кишечник (эпителий), тонкий кишечник (эпителий), мозжечок (клетки Пуркинье, глиальные клетки), почки (канальцы, клубочки), надпочечники (кора, медуллярный слой), поджелудочная железа (пузырьки, островки, протоки), легкое (альвеолы, бронхиальный эпителий), печень (гепатоциты), пищевод (эпителий), кожа (эпителий), селезенка (красная пульпа), яичник (строма), шейка матки (эпителий), яичко (канальцы), простата (пузырьки), вилочковая железа, гипофиз, миндалина (зародышевые центры, эпителий, клетки плазмы), костный мозг, аппендикс (мезотелий) и пуповина (мезотелий). (Общее число образцов неизмененных тканей, которые были исследованы = 33.)

IGG-L-CE Page 49

Патологически измененные ткани Клон RWP49 окрасил 8/14 случаев миеломы. 38/43 других исследованных злокачественных образований гематологической природы имели положительное окрашивание (включая 13/14 случаев диффузной крупноклеточной B-лимфоцитарной лимфомы, 5/6 случаев периферийной Т-лимфоцитарной лимфомы, 4/6 случаев фолликулярной лимфомы, 5/5 случаев лимфомы Ходжкина, 2/2 случаев лимфомы из клеток мантийной зоны, 2/2 случаев анапластической крупноклеточной лимфомы, 1/2 случаев MALT-лимфомы, 1/1 случая лимфомы Беркитта, 1/1 случая лимфомы из клеток маргинальной зоны, 1/1 случая ангиоиммунобластной лимфомы, 1/1 случая NK/T-лимфоцитарной лимфомы, 1/1 богатой T-лимфоцитами B-лимфоцитарной лимфомы и 1/1 случая лимфобластной лимфомы). За исключением инфильтрирующих лимфоцитов, IgG-протеин также был обнаружен в 31/41 случаев злокачественных новообразований нелимфоидного происхождения, (включая 9/10 случаев плоскоклеточной карциномы, 4/4 случаев опухоли печени, 3/4 случаев опухоли яичников, 3/3 случаев колоректальной опухоли, 2/2 случаев опухоли желудка, 2/2 случаев опухоли поджелудочной железы, 2/2 случаев опухоли почек, 2/2 случаев опухоли простаты, 2/2 случаев опухоли легких, 1/2 случаев молочной железы и 1/2 случаев метастатической карциномы лимфатических узлов). Не было обнаружено окрашивания при опухолях щитовидной железы (0/4) и опухолях мозга (0/2). (Общее число исследованных образцов патологически измененных тканей = 98.)NCL-L-IgG рекомендуется использовать для обнаружения антигена IgG в здоровых и пораженных опухолью тканях в качестве дополнения к обычным гистопатологическим исследованиям с неиммунным гистохимическим окрашиванием.

Общие ограниченияИммуногистохимическое исследование является многостадийным диагностическим процессом, требующим специальных навыков в выборе надлежащих реактивов; выборе, фиксации и обработке тканей; приготовлении среза с ИГХ препаратом; интерпретации результатов окрашивания. Окрашивание тканей зависит от обращения с тканями и их обработкой перед окрашиванием. Неправильные процедуры фиксации, замораживания, оттаивания, промывки, сушки, нагрева, приготовления срезов, а также загрязнение другими тканями или жидкостями могут приводить к артефактам, захвату антител или ложноотрицательным результатам. Противоречивые результаты могут быть обусловлены различиями методов фиксации и заливки препарата или присущей тканям внутренней неравномерностью структуры.4 Чрезмерное или неполное контрастирование может негативно отразиться на точности интерпретации результатов. Клиническая интерпретация любого окрашивания или его отсутствия должна быть дополнена морфологическими исследованиями с надлежащими контролями и должна быть оценена квалифицированным патологом с учетом анамнеза пациента и других диагностических тестов. Изготовленные компанией Leica Biosystems Newcastle Ltd антитела предназначены, как указано выше, для применения на замороженных или залитых в парафин срезах и требуют выполнения конкретных требований по фиксации. Возможна непредвиденная экспрессия антигена, особенно в опухолях. Клиническая интерпретация любого окрашенного среза ткани должна включать морфологический анализ и оценку соответствующих контролей.

Литература — общая1. National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS). Protection of laboratory workers from infectious diseases

transmitted by blood and tissue; proposed guideline. Villanova, P.A. 1991; 7(9). Order code M29-P.2. Battifora H. Diagnostic uses of antibodies to keratins: a review and immunohistochemical comparison of seven monoclonal and

three polyclonal antibodies. Progress in Surgical Pathology. 6:1–15. eds. Fenoglio-Preiser C, Wolff CM, Rilke F. Field & Wood, Inc., Philadelphia.

3. Nadji M, Morales AR. Immunoperoxidase, part I: the techniques and pitfalls. Laboratory Medicine. 1983; 14:767.4. Omata M, Liew CT, Ashcavai M, Peters RL. Nonimmunologic binding of horseradish peroxidase to hepatitis B surface antigen: a

possible source of error in immunohistochemistry. American Journal of Clinical Pathology. 1980; 73:626.5. Karamchandani JR, Younes SF, Warnke RA. IgG4-related systemic sclerosing disease of the ocular adnexa. American Journal of

Clinical Pathology. 2012; 137: 699-711.6. Janeway C, Travers P, Walport M et al. Immunobiology: The immune system in health and disease. Chapter 3. Garland Science. New

York and London. 2001.7. Fridman W. Fc receptors and immunoglobulin binding factors. FASEB Journal. 1991; 5: 2684-2690.

Дополнения к предыдущему выпускуСостав реагентов, концентрация антител, рекомендации по применению, предупреждения и меры предосторожности.

Дата выпуска12 Декабрь 2019

IGG-L-CE Page 50

Płynne mysie przeciwciało monoklonalne NovocastraImmunoglobulin GKod produktu: NCL-L-IgG

PrzeznaczenieDo diagnostyki in vitro. Produkt NCL-L-IgG jest przeznaczony do jakościowej identyfikacji za pomocą mikroskopii świetlnej cząsteczek ludzkiej immunoglobuliny G (IgG) w skrawkach parafinowych. Kliniczną interpretację barwienia lub jego braku należy uzupełnić badaniami morfologicznymi oraz odpowiednimi kontrolami. Ocenę powinien przeprowadzić wykwalifikowany patolog w kontekście historii choroby pacjenta oraz innych badań diagnostycznych.

Zasady postepowaniaMetody barwienia immunohistochemicznego (IHC) umożliwiają wizualizację antygenów dzięki zastosowaniu – po kolei – swoistego przeciwciała przeciwko antygenowi (przeciwciała pierwszorzędowego), przeciwciała drugorzędowego przeciwko przeciwciału pierwszorzędowemu i kompleksu enzymu z substratem chromogennym z etapami przemywania. Aktywacja enzymatyczna chromogenu prowadzi do wytworzenia widocznego produktu reakcji w miejscu antygenu. Następnie można wykonać barwienie kontrastowe próbki i zakryć ją szkiełkiem nakrywkowym. Wyniki są interpretowane przy użyciu mikroskopu świetlnego i pomagają w diagnostyce różnicowej procesów patofizjologicznych, które mogą mieć związek z określonym antygenem.

KlonRWP49

ImmunogenProkariotyczne rekombinowane białko odpowiadające 327 aminokwasom ludzkiej molekuły IgG

SwoistośćHuman IgG.

Skład odczynnikaNCL-L-IgG jest płynnym supernatantem hodowli tkankowej konserwowanym azydkiem 0,35% ProClin™ 950.

Klasa IgIgG1

Całkowite stężenia białkaCałkowite stężenie białka w danej serii podano na etykiecie fiolki.

Stężenie przeciwciałWiększe lub równe 59 mg/L oznaczone za pomocą testu ELISA. Stężenie lg w danej serii podano na etykiecie fiolki.

Zalecenia dotyczące stosowaniaBadanie immunohistochemiczne skrawków zatopionych w parafinie. Cieplne odmaskowywanie epitopu (HIER): Należy postępować zgodnie z instrukcją stosowania załączoną do roztworu Novocastra Epitope Retrieval Solution pH 6. Sugerowane rozcieńczenie: 1:200 przez 30 minut w temperaturze 25 °C. Te informacje stanowią jedynie wskazówkę – użytkownicy powinni sami określić swoje optymalne rozcieńczenie robocze. Wizualizacja: Należy postępować zgodnie z instrukcją stosowania dołączoną do Novolink Polymer Detection Systems. W celu uzyskania dodatkowych informacji o produkcie lub dalszej pomocy należy skontaktować się z lokalnym dystrybutorem lub regionalnym biurem Leica Biosystems, lub odwiedzić stronę internetową, www.LeicaBiosystems.com Działanie tego przeciwciała należy zweryfikować podczas używania z innymi ręcznymi metodami barwienia lub platformami automatycznymi.

Przechowywanie i trwałośćPrzechowywać w temperaturze 2-8 °C. Nie zamrażać. Niezwłocznie po użyciu ponownie umieścić w temperaturze 2–8 °C. Nie używać po upływie daty ważności podanej na etykiecie fiolki. Przechowywanie w warunkach innych od wskazanych powyżej wymaga weryfikacji użytkownika.

Przygotowanie próbekZalecanym utrwalaczem jest 10-procentowa obojętna buforowana formalina do zatopionych w parafinie skrawków tkankowych.

Ostrzeżenia i środki ostrożnościOdczynnik został przygotowany z supernatantu hodowli tkankowej. Ponieważ jest to produkt biologiczny, podczas jego używania należy zachować odpowiednie środki ostrożności. Stężenie ProClin™ 950 wynosi 0,35 %. Zawiera składnik czynny, 2-metyloizotiazol-3(2H)-on, który może powodować podrażnienie skóry, oczu, błon śluzowych i górnych dróg oddechowych. Podczas pracy z odczynnikami należy nosić rękawice jednorazowe. Próbki przed i po utrwaleniu oraz wszelkie materiały narażone na kontakt z nimi należy traktować jak materiały potencjalnie zakaźne i należy je utylizować z zachowaniem odpowiednich środków ostrożności.1 Podczas pobierania pipetą nie wolno zasysać odczynników ustami i należy unikać kontaktu odczynników i preparatów ze skórą oraz błonami śluzowymi. W razie kontaktu odczynników lub próbek ze szczególnie narażonymi miejscami przemyć miejsce kontaktu dużą ilością wody. Należy zasięgnąć porady lekarza.

Total Protein

IGG-L-CE Page 51

Chronić odczynniki przed skażeniem drobnoustrojami, ponieważ może ono doprowadzić do zwiększonego barwienia niespecyficznego. Zastosowanie okresów inkubacji i temperatur innych niż podano w instrukcji może spowodować błędne wyniki. Wszelkie zmiany tego typu muszą zostać zweryfikowane przez użytkownika.

Kontrola jakościRóżnice w przetwarzaniu tkanek i procedurach technicznych w laboratorium użytkownika mogą doprowadzić do znacznej zmienności wyników, co oznacza konieczność dodatkowego przeprowadzania regularnych kontroli wewnętrznych. Kontrole należy przeprowadzać jak najszybciej na świeżych próbkach z autopsji/biopsji/operacji chirurgicznej utrwalonych, przetworzonych i zatopionych w parafinie, taką samą metodą, jaką badane są pobrane tkanki.

Tkankowa kontrola pozytywnaStosowana w celu wskazania prawidłowo przygotowanych tkanek i prawidłowych technik barwienia. W każdej serii barwienia każdy zestaw warunków testowych powinien uwzględniać jedną tkankową kontrolę pozytywną. Do optymalnej kontroli jakości i do wykrywania niewielkich poziomów degradacji odczynników bardziej nadaje się tkanka o słabym barwieniu pozytywnym niż tkanka o silnym barwieniu pozytywnym.2

Tkankowa kontrola pozytywna powinna obejmować migdałek. Jeśli tkankowa kontrola pozytywna nie wykaże odpowiedniego barwienia pozytywnego, wyniki testu przeprowadzonego na próbkach pobranych od pacjenta należy uznać za nieważne.

Tkankowa kontrola negatywnaNależy ją wykonać po tkankowej kontroli pozytywnej, aby sprawdzić swoistość znakowania docelowego antygenu przez przeciwciało pierwszorzędowe. Tkankowa kontrola negatywna powinna obejmować przytarczyce. Ewentualnie tkankowa kontrola negatywna może obejmować różne typy komórek obecne w większości skrawków tkankowych, jednak powinno to zostać zweryfikowane przez użytkownika. Barwienie niespecyficzne, jeżeli jest obecne, zwykle ma charakter rozproszony. Na skrawkach wykonanych z materiału tkankowego nadmiernie utrwalonego w formalinie można również zaobserwować sporadyczne barwienie tkanki łącznej. Do interpretacji wyników barwienia należy używać nieuszkodzonych komórek. Komórki martwicze lub zdegenerowane często powodują barwienie niespecyficzne.3 Wyniki fałszywie pozytywne mogą pojawić się w następstwie nieimmunologicznego wiązania białek lub występowania produktów reakcji substratów. Mogą być również spowodowane przez endogenne enzymy, takie jak pseudoperoksydaza (erytrocyty), endogenna peroksydaza (cytochrom C) lub endogenna biotyna (np. wątroba, piersi, mózg, nerki), w zależności od zastosowanego barwnika immunohistochemicznego. Aby odróżnić endogenną aktywność enzymatyczną lub niespecyficzne wiązanie enzymów od swoistej immunoreaktywności, dodatkowe tkanki pacjenta mogą być barwione wyłącznie substratem chromogenem lub kompleksem enzymatycznym (awidyna-biotyna, streptawidyna, znakowany polimer) i substratem-chromogenem. Jeśli w trakcie tkankowej kontroli negatywnej nastąpi barwienie specyficzne, wyniki testu przeprowadzonego na próbkach pobranych od pacjenta należy uznać za nieważne.

Negatywna kontrola odczynnikaAby przeprowadzić ocenę barwienia niespecyficznego oraz umożliwić lepszą interpretację barwienia specyficznego na każdym skrawku z próbki pobranej od pacjenta należy przeprowadzić nieswoistą kontrolę negatywną odczynnika w miejscu wiązania przeciwciała pierwszorzędowego.

Tkanka pacjentaPróbki pacjenta wybarwione testem NCL-L-IgG należy badać jako ostatnie. Intensywność barwienia pozytywnego należy oceniać w kontekście ewentualnego barwienia niespecyficznego tła w negatywnej kontroli odczynnika. Tak jak we wszystkich innych badaniach immunohistochemicznych wynik ujemny oznacza, że antygen nie został wykryty, co jednak nie oznacza, że jest on nieobecny w badanych komórkach/tkankach. W razie konieczności do identyfikacji reakcji fałszywie negatywnych należy wykorzystać panel przeciwciał.

Oczekiwane wynikiTkanki prawidłowe Klon RWP49 wykrył białko IgG w cytoplazmie i na membranie komórek plazmatycznych, limfocytach B strefy płaszcza i ośrodkach rozrodczych. Białko IgG wykryto również w różnych tkankach, w tym w okrężnicy (nabłonek), jelicie cienkim (nabłonek), móżdżku (komórki Purkinjego, komórki glejowe), nerce (kanaliki, kłębuszki nerkowe), nadnerczu (kora, rdzeń), trzustce (pęcherzyki, wysepki, kanaliki), płucach (pęcherzyki, nabłonek oskrzeli), wątrobie (hepatocyty), przełyku (nabłonek), skórze (nabłonek), śledzionie (miazga czerwona), jajniku (podścielisko), szyjce macicy (nabłonek), jądrach (kanaliki), gruczole krokowym (pęcherzyki), grasicy, przysadce, migdałkach (ośrodki rozmnażania, nabłonek, komórki plazmatyczne), szpiku kostnym, wyrostku robaczkowym (mezotelium) i pępowinie (mezotelium). (Łączna liczba prawidłowych przypadków = 33).Tkanki nieprawidłowe Klon RWP49 wybarwił 8/14 mięsaki gładkokomórkowe. 38/43 inne oceniane nowotwory hematologiczne dały wynik pozytywny (w tym 13/14 rozlanych chłoniaków z dużych limfocytów B, 5/6 chłoniaków z obwodowych limfocytów T, 4/6 chłoniaki grudkowe, 5/5 chłoniaków Hodgkina, 2/2 chłoniaki z komórek płaszcza, 2/2 chłoniaki anaplastyczne z dużych limfocytów, 1/2 chłoniaka MALToma, 1/1 chłoniaka Burkitta, 1/1 chłoniaka strefy brzeżnej, 1/1 chłoniaka naczyniowo-limfatycznego, 1/1 chłoniaka z limfocytów NK/T, 1/1 chłoniaka z limfocytów B bogatego w limfocyty T i 1/1 chłoniaka limfoblastycznego). Oprócz limfocytów naciekających białko IgG wykryto również w 31/41 nowotworach nielimfatycznych, w tym 9/10 rakach płaskonabłonkowych, 4/4 guzach wątroby, 3/4 guzach jajnika, 3/3 guzach okrężnicy i odbytu, 2/2 guzach żołądka, 2/2 guzach trzustki, 2/2 guzach nerki, 2/2 guzach gruczołu krokowego, 2/2 guzach płuca i 1/2 guzie sutka i 1/2 przerzutowym raku węzłów chłonnych . Nie stwierdzono barwienia w guzach tarczycy (0/4) i guzach mózgu (0/2). (Łączna liczba nieprawidłowych przypadków = 98).Zaleca się stosowanie NCL-L-IgG do wykrywania antygenu IgA w tkankach zdrowych i rakowych, jako uzupełnienie konwencjonalnego badania histopatologicznego opartego na nieimmunologicznym barwieniu histologicznym.

IGG-L-CE Page 52

Ograniczenia ogólneBadanie immunohistochemiczne to wieloetapowy proces diagnostyczny, który wymaga specjalistycznego szkolenia w zakresie doboru odpowiednich odczynników i tkanek, utrwalania i przetwarzania tkanek, przygotowywania preparatów immunohistochemicznych oraz interpretacji wyników barwienia. Barwienie tkanek zależy od postępowania z tkanką i jej przetwarzania przed barwieniem. Nieprawidłowe utrwalanie, zamrażanie, rozmrażanie, przemywanie, suszenie, podgrzewanie, ścinanie skrawków lub skażenie innymi tkankami lub płynami może powodować artefakty, zatrzymywanie przeciwciał lub wyniki fałszywie negatywne. Niespójne wyniki mogą wynikać z różnic w metodach utrwalania i zatapiania lub nieprawidłowości związanej z tkanką.4 Nadmierne lub niepełne barwienie kontrastowe może negatywnie wpływać na właściwą interpretację wyników. Kliniczną interpretację barwienia lub jego braku należy uzupełnić badaniami morfologicznymi oraz odpowiednimi kontrolami. Ocenę powinien przeprowadzić wykwalifikowany patolog w kontekście historii choroby pacjenta oraz innych badań diagnostycznych. Przeciwciała firmy Leica Biosystems Newcastle Ltd są przeznaczone do badania skrawków zamrożonych lub zatopionych w parafinie, które utrwalono zgodnie z określonymi wymogami. Może wystąpić nieoczekiwana ekspresja antygenu, szczególnie w przypadku nowotworów. Interpretacja kliniczna wybarwionych skrawków musi obejmować analizę morfologiczną oraz ocenę przeprowadzoną w ramach odpowiednich kontroli.

Piśmiennictwo - ogólne.1. National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS). Protection of laboratory workers from infectious diseases

transmitted by blood and tissue; proposed guideline. Villanova, P.A. 1991; 7(9). Order code M29-P.2. Battifora H. Diagnostic uses of antibodies to keratins: a review and immunohistochemical comparison of seven monoclonal and

three polyclonal antibodies. Progress in Surgical Pathology. 6:1–15. eds. Fenoglio-Preiser C, Wolff CM, Rilke F. Field & Wood, Inc., Philadelphia.

3. Nadji M, Morales AR. Immunoperoxidase, part I: the techniques and pitfalls. Laboratory Medicine. 1983; 14:767.4. Omata M, Liew CT, Ashcavai M, Peters RL. Nonimmunologic binding of horseradish peroxidase to hepatitis B surface antigen: a

possible source of error in immunohistochemistry. American Journal of Clinical Pathology. 1980; 73:626.5. Karamchandani JR, Younes SF, Warnke RA. IgG4-related systemic sclerosing disease of the ocular adnexa. American Journal of

Clinical Pathology. 2012; 137: 699-711.6. Janeway C, Travers P, Walport M et al. Immunobiology: The immune system in health and disease. Chapter 3. Garland Science. New

York and London. 2001.7. Fridman W. Fc receptors and immunoglobulin binding factors. FASEB Journal. 1991; 5: 2684-2690.

Zmiany wprowadzone do poprzedniego wydaniaSkład odczynnika, stężenie przeciwciał, zalecenia dotyczące stosowania, ostrzeżenia i środki ostrożności.

Data publikacji12 grudnia 2019

IGG-L-CE Page 53

Tekoče mišje monoklonsko protitelo NovocastraImmunoglobulin GKoda izdelka: NCL-L-IgG

Predvidena uporabaZa diagnostično uporabo in vitro. Izdelek NCL-L-IgG je namenjen za kvalitativno identifikacijo molekul humanega imunoglobulina G (IgG) v parafinskih rezinah s pomočjo svetlobne mikroskopije. Klinično razlago obarvanja ali odsotnosti le-tega morajo dopolnjevati morfološke študije ustreznih kontrolnih vzorcev, ki jih v okviru klinične anamneze bolnika in drugih diagnostičnih testov oceni usposobljen patolog.

Načelo postopkaImunohistokemijske (IHC) tehnike barvanja omogočajo vizualizacijo antigenov z izvajanjem zaporednega nanosa - z vmesnimi koraki izpiranja - specifičnega protitelesa na antigen (primarno protitelo), sekundarnega protitelesa na primarno protitelo in encimskega kompleksa s kromogenim substratom. Encimska aktivacija kromogena povzroči vidno reakcijo izdelka na mestu antigena. Tak vzorec lahko nato nasprotno barvamo in pokrijemo s krovnim stekelcem. Rezultate nato obdelamo s pomočjo svetlobnega mikroskopa in jih uporabimo pri diferencialni diagnozi patološko-fizioloških procesov, ki so morda povezani z določenim antigenom ali pa tudi ne.

KlonRWP49

ImunogenProkariontski rekombinantni protein, ki ustreza 327 aminokislinam molekule človeškega IgG.

SpecifičnostČloveško protitelo IgG.

Sestava reagentaNCL-L-IgG je tekočinski supernatant kulture tkiva in 0,35 % konzervansa ProClin™ 950 kot konzervans.

Razred IgIgG1

Skupna koncentracija beljakovinSkupna koncentracija beljakovin v določeni seriji je navedena na oznaki na viali.

Koncentracija protitelesVišja ali enaka 59 mg/l, določena s testom ELISA. Glejte oznako na viali za koncentracijo Ig določene serije.

Priporočila za uporaboImunohistokemija parafinskih rezin. Toplotno pridobivanje epitopa (HIER): Upoštevajte navodila za uporabo raztopine za pridobivanje epitopov Novocastra Epitope Retrieval Solution pH 6. Predlagano redčenje: 1:200 za 30 minut pri 25 °C. To so samo smernice; uporabniki naj poiščejo svoje lastne najbolj učinkovite delovne razredčine. Vizualizacija: Upoštevajte navodila za uporabo sistemov za zaznavanje polimerov Novolink Polymer Detection Systems. Za dodatne informacije o izdelku ali podporo se obrnite na svojega lokalnega distributerja ali regionalno pisarno družbe Leica Biosystems, lahko pa tudi obiščete spletno mesto družbe Leica Biosystems na naslovu www.LeicaBiosystems.com. Učinkovitost tega protitelesa je treba validirati, kadar ga uporabljate z drugimi sistemi za ročno barvanje ali avtomatiziranimi okolji.

Shranjevanje in stabilnostHraniti pri temperaturi 2–8 °C. Ne zamrzujte. Takoj po uporabi ohladite na temperaturo 2–8 °C. Ne uporabljajte po datumu izteka roka uporabnosti, ki je naveden na oznaki na viali. Uporabnik naj preveri pogoje shranjevanja, ki se razlikujejo od zgoraj navedenih.

Priprava vzorcevPriporočena fiksirna raztopina je 10-% formalin v nevtralnem pufru za tkivne rezine, vstavljene v parafin.

Opozorila in previdnostni ukrepiVir priprave tega reagenta je supernatant celične kulture. Ker je to biološki izdelek, je treba z njim ravnati z ustrezno skrbnostjo. Koncentracija konzervansa ProClin™ 950 je 0,35 %. Vsebuje aktivno učinkovino 2-metilizotiazol-3(2H)-on in lahko povzroči draženje kože, oči, sluznice ter zgornjih dihalnih poti. Kadar delate z reagenti, nosite rokavice za enkratno uporabo. Z vzorci, pred fiksiranjem in po njem, in vsemi materiali, s katerimi so prišli v stik, morate rokovati, kot da bi lahko prenašali okužbe, in pri njihovem odstranjevanju slediti ustreznim previdnostnim ukrepom.1 Nikoli ne pipetirajte reagentov z usti; pazite, da reagenti in vzorci ne pridejo v stik s kožo in sluznicami. Če reagenti ali vzorci pridejo v stik z občutljivimi deli, jih izperite z obilo vode. Poiščite zdravniško pomoč. Pazite, da ne pride do mikrobne okužbe reagentov, saj lahko povzroči nespecifično barvanje. Če uporabite čas ali temperature inkubacije, ki se razlikujejo od navedenih, lahko pridobite napačne rezultate. Uporabnik mora validirati morebitne spremembe.

Total Protein

IGG-L-CE Page 54

Kontrola kakovostiRazlike pri obdelavi tkiva in tehničnih postopkih v laboratoriju uporabnika lahko vodijo do precejšnje variabilnosti rezultatov, kar zahteva redne interne kontrole učinkovitosti poleg spodaj navedenih postopkov. Kontrolni vzorci morajo biti sveži vzorci, pridobljeni z obdukcijo/biopsijo/kirurškim posegom, fiksirani s formalinom, obdelani in shranjeni v parafinskem vosku kakor hitro je mogoče ter na isti način, kot vzorci bolnikov.

Pozitivni kontrolni vzorci tkivaUporabite jih za opredelitev pravilno pripravljenih tkiv in ustreznih tehnik barvanja. Pri vsakem postopku barvanja morate vsakemu sklopu preizkusnih pogojev dodati en pozitiven kontrolni vzorec tkiva. Za kar najboljšo kontrolo kakovosti in boljše zaznavanje manjših stopenj razkroja reagenta je bolj primerno uporabiti tkivo s šibkim pozitivnim obarvanjem kot tkivo z močnim pozitivnim obarvanjem.2

Za pozitivni kontrolni vzorec tkiva priporočamo tkivo tonzil. Če pozitivni kontrolni vzorci tkiva ne pokažejo pozitivnega obarvanja, morate rezultate preizkusnih vzorcev zavreči kot neveljavne.

Negativni kontrolni vzorci tkivaPregledati jih morate po pregledu pozitivnih kontrolnih vzorcev tkiva, da preverite specifičnost oznake ciljnega antigena glede na primarno protitelo. Za negativni kontrolni vzorec tkiva priporočamo tkivo obščitnice. Drugače pa se kot negativni kontrolni vzorci pogosto uporablja vrsta različnih celic, ki so prisotne v večini rezin tkiv, vendar pa mora tako uporabo preveriti uporabnik. Nespecifično barvanje, če je prisotno, je običajno razpršeno. Opazite lahko tudi posamično obarvanje vezivnega tkiva v rezinah tkiv, kot posledica premočnega fiksiranja s formalinom. Za razlago rezultatov obarvanja uporabite nespremenjene celice. Obarvanje nekrotičnih ali degeneriranih celic je pogosto nespecifično.3 Lažno pozitivni rezultati se lahko pojavijo zaradi ne-imunološke vezave proteinov ali produktov reakcije substrata. Povzročijo jih lahko tudi endogeni encimi, kot so psevdoperoksidaza (eritrociti), endogena peroksidaza (citokromni C) ali endogeni biotin (npr. jetra, dojke, možgani, ledvice), odvisno od vrste uporabljenega imunskega barvila. Za razlikovanje med endogensko aktivnostjo encimov ali nespecifično vezavo encimov zaradi specifične imunske reaktivnosti, lahko barvate dodatna tkiva bolnika izključno ali s kromogenskim substratom ali encimskimi kompleksi (avidin-biotin, streptavidin, označeni polimer) in kromogenskim substratom. Če pride do specifičnega obarvanja negativnih kontrolnih vzorcev tkiva, morate rezultate vzorcev bolnika zavreči kot neveljavne.

Negativni kontrolni reagentZa oceno nespecifičnega barvanja in boljšo razlago specifičnega obarvanja na antigenskem mestu uporabite nespecifični negativni kontrolni reagent namesto primarnega protitelesa z eno rezino vsakega vzorca bolnika.

Bolnikovo tkivoNazadnje preglejte bolnikove vzorce, obarvane z izdelkom NCL-L-IgG. Intenzivnost pozitivnega obarvanja ocenite v okviru morebitnega nespecifičnega obarvanja ozadja z negativnim kontrolnim reagentom. Tako kot pri vseh imunohistokemijskih preizkusih negativen rezultat pomeni, da antigen ni bil zaznan, ne pa odsotnosti antigena v testiranih celicah/tkivih. Po potrebi uporabite nabor protiteles za opredelitev napačnih negativnih reakcij.

Pričakovani rezultatiNormalna tkiva Klon RWP49 je obarval protein IgG v citoplazmi in na membrani plazmatskih celic, celic B plaščnega območja in germinalnih središč. Poleg tega so protein IgG zaznali tudi v različnih tkivih, vključno s kolonom (epitelij), tankim črevesom (epitelij), malimi možgani (Purkinijeve celice, glialne celice), ledvicami (tubuli, glomeruli), nadledvično žlezo (skorja, medula), trebušno slinavko (acinusi, otočki, kanali), pljuči (alveole, bronhialni epitelij), jetri (hepatociti), požiralnikom (epitelij), kožo (epitelij), vranico (rdeča sredica), jajčniki (stroma), materničnim vratom (epitelij), testisi (tubuli), prostato (acinusi), priželjcem, hipofizo, tonzilami (germinalna središča, epitelij, plazemske celice), kostnim mozgom, slepičem (mezotelij) in popkovino (mezotelij). (Skupno število normalnih primerov = 33).Nenormalna tkiva Klon RWP49 je obarval 8/14 mielomov. Pozitivnih je bilo 38/43 drugih hematoloških malignosti (vključno s 13/14 difuznih velikoceličnih limfomov celic B, 5/6 limfomov perifernih celic T, 4/6 folikularnih limfomov, 5/5 Hodgkinovih limfomov, 2/2 limfomov plaščnih celic, 2/2 anaplastičnih velikoceličnih limfomov, 1/2 MALTomov, 1/1 Burkittovega limfoma, 1/1 limfoma obrobnih celic, 1/1 angioimunoblastnega limfoma, 1/1 limfoma celic NK/T, 1/1 limfoma B-celic, bogatega s celicami T in 1/1 limfoblastnega limfoma). Razen pri infiltrirajočih limfocitih so protein IgG zaznali tudi pri 31/41 nelimfoidnih malignosti (vključno z 9/10 karcinomov ploščatih celic, 4/4 tumorjev jeter, 3/4 tumorjev jajčnikov, 3/3 kolorektalnih tumorjev, 2/2 tumorjev želodca, 2/2 tumorjev trebušne slinavke, 2/2 tumorjev ledvic, 2/2 tumorjev prostate, 2/2 tumorjev pljuč, 1/2 tumorjev dojke in 1/2 metastatskih karcinomov bezgavk). Pri tumorjih ščitnice (0/4) in možganov (0/2) niso zaznali nobenega obarvanja. (Skupno število ocenjenih primerov z nepravilnostmi = 98).Izdelek NCL-L-IgG se priporoča za zaznavanje antigena IgG v normalnih in neoplastičnih tkivih kot dodatna analiza konvencionalni histopatologiji z uporabo neimunoloških histokemičnih barvil.

Splošne omejitveImunohistokemija je diagnostični postopek z več koraki, ki zahteva specializirano usposabljanje za izbiro ustreznih reagentov, izbiro, fiksiranje in obdelavo tkiv, pripravo IHC preparata in razlago rezultatov obarvanja. Obarvanje tkiva je odvisno od rokovanja s tkivom in njegovo obdelavo pred barvanjem. Nepravilno fiksiranje, zamrzovanje, odtajanje, izpiranje, sušenje, segrevanje, rezanje ali okužba z drugimi tkivi ali tekočinami lahko povzroči nastanek artefaktov, lovljenje protitelesa ali lažne negativne rezultate. Nedosledni rezultati so lahko posledica razlik pri metodah fiksiranja in priprave ali pa so del nepravilnosti tkiva samega.4Prekomerno ali nepopolno nasprotno barvanje lahko neugodno vpliva na pravilno tolmačenje rezultatov. Klinično razlago obarvanja ali odsotnosti le-tega morajo dopolnjevati morfološke študije ustreznih kontrolnih vzorcev, ki jih v okviru klinične anamneze bolnika in drugih diagnostičnih testov oceni usposobljen patolog. Protitelesa družbe Leica Biosystems Newcastle Ltd so namenjena uporabi, kot je navedeno, na zamrznjenih ali v parafin vstavljenih rezinah z določenimi zahtevami za fiksiranje. Lahko pride do nepričakovanega izražanja antigena, zlasti pri neoplazmah. Pri klinični razlagi obarvane rezine tkiva morate upoštevati morfološko analizo in oceno ustreznih kontrol.

IGG-L-CE Page 55

Splošna literatura1. National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS). Protection of laboratory workers from infectious diseases

transmitted by blood and tissue; proposed guideline. Villanova, P.A. 1991; 7(9). Order code M29-P.2. Battifora H. Diagnostic uses of antibodies to keratins: a review and immunohistochemical comparison of seven monoclonal and

three polyclonal antibodies. Progress in Surgical Pathology. 6:1–15. eds. Fenoglio-Preiser C, Wolff CM, Rilke F. Field & Wood, Inc., Philadelphia.

3. Nadji M, Morales AR. Immunoperoxidase, part I: the techniques and pitfalls. Laboratory Medicine. 1983; 14:767.4. Omata M, Liew CT, Ashcavai M, Peters RL. Nonimmunologic binding of horseradish peroxidase to hepatitis B surface antigen: a

possible source of error in immunohistochemistry. American Journal of Clinical Pathology. 1980; 73:626.5. Karamchandani JR, Younes SF, Warnke RA. IgG4-related systemic sclerosing disease of the ocular adnexa. American Journal of

Clinical Pathology. 2012; 137: 699-711.6. Janeway C, Travers P, Walport M et al. Immunobiology: The immune system in health and disease. Chapter 3. Garland Science. New

York and London. 2001.7. Fridman W. Fc receptors and immunoglobulin binding factors. FASEB Journal. 1991; 5: 2684-2690.

Dodatki in spremembe k prejšnji izdajiSestava reagenta, koncentracija protiteles, priporočila o uporabi, opozorila in previdnostni ukrepi.

Datum izdaje12 december 2019

IGG-L-CE Page 56

Novocastra Tekutá myší monoklonální protilátkaImmunoglobulin GKód výrobku: NCL-L-IgG

Zamýšlené použitíPro diagnostické použití in vitro. NCL-L-IgG je určen ke kvalitativnímu stanovení lidského imunoglobulinu-G (IgG) světelnou mikroskopií na parafínových řezech. Klinickou interpretaci jakéhokoliv barvení nebo jeho nepřítomnosti je nutné doplnit morfologickým vyšetřením s použitím správných kontrol a zhodnotit je musí kvalifikovaný patolog v kontextu s klinickou anamnézou pacienta a jinými diagnostickými testy.

Princip metodyImunohistochemické (IHC) barvicí techniky umožňují vizualizaci antigenů pomocí sekvenční aplikace specifické protilátky proti antigenu (primární protilátka), sekundární protilátky proti primární protilátce a enzymového komplexu s chromogenním substrátem s interponovanými omývacími kroky. Enzymatická aktivace chromogenu má za následek viditelnou reakci produktu v místě antigenu. Vzorek pak může být kontrastně nabarven a překryt krycím sklíčkem. Výsledky se interpretují ve světelném mikroskopu; jsou pomůckou v diferenciální diagnostice patofyziologických procesů, které mohou, ale nemusí, souviset s příslušným antigenem.

KlonRWP49

ImunogenProkaryotický rekombinantní protein odpovídající 327 aminokyselinám molekuly lidského IgG.

SpecificitaLidské IgG.

Složení reagencieProdukt NCL-L-IgG je tekutý supernatant z tkáňové kultury obsahující jako konzervační prostředek 0,35% ProClin™ 950.

Třída IgIgG1

Koncentrace celkového proteinuKoncentrace celkového proteinu specifická pro šarži je uvedena na štítku na lahvičce.

Koncentrace protilátek59 mg/l nebo vyšší, stanovená metodou ELISA. Koncentrace imunoglobulinu (Ig) specifická pro šarži je uvedena na štítku na lahvičce.

Doporučení k použitíImunohistochemické vyšetření na parafínových řezech. Teplem indukované odmaskování epitopu (Heat Induced Epitope Retrieval, HIER): Postupujte podle pokynů k použití k roztoku Novocastra Epitope Retrieval Solution pH 6. Doporučené ředění: 1:200 po dobu 30 minut při teplotě 25 °C. Toto doporučení je uvedeno jako vodítko; uživatelé musí stanovit vlastní optimální pracovní ředění. Vizualizace: Postupujte podle návodu k použití k systémům pro detekci polymerů Novolink. Další informace o produktu nebo podporu si vyžádejte od místního distributora nebo oblastní kanceláře společnosti Leica Biosystems, nebo alternativně navštivte web Leica Biosystems: www.LeicaBiosystems.com Výkon této protilátky je třeba validovat, pokud se používá s jinými systémy pro ruční barvení nebo na automatických platformách.

Skladování a stabilitaSkladujte při teplotě 2–8 °C. Nezmrazujte. Okamžitě po použití vraťte do teploty 2–8 °C. Nepoužívejte po uplynutí data exspirace uvedeného na štítku na lahvičce. Podmínky skladování jiné než výše uvedené musí uživatel validovat.

Příprava vzorkuFixační roztok doporučený pro řezy tkáně zalité v parafinu je 10% formalín pufrovaný na neutrální pH.

Varování a bezpečnostní opatřeníTato reagencie byla připravena ze supernatantu z buněčné kultury. Protože jde o biologický produkt, je nutno manipulaci s ní věnovat náležitou pozornost. Koncentrace přípravku ProClin™ 950 je 0,35 %. Obsahuje aktivní složku 2-methylisothiazol-3(2H)-on a může způsobit podráždění kůže, očí, sliznic a horních cest dýchacích. Při manipulaci s reagenciemi používejte rukavice na jedno použití. Údaje o likvidaci jakýchkoli potenciálně toxických komponent prostudujte ve federálních, státních nebo místních nařízeních. Se vzorky, před fixací i po fixaci, a se všemi materiály jim vystavenými, je nutno zacházet, jako by mohly způsobit přenos infekce, a likvidovat je s náležitými bezpečnostními opatřeními.1 Reagencie nikdy nepipetujte ústy a zabraňte styku reagencií a vzorků s kůží a sliznicemi. Pokud se reagencie nebo vzorky dostanou do kontaktu s citlivými oblastmi, omyjte je velkým množstvím vody. Vyhledejte lékařskou pomoc. Minimalizujte mikrobiální kontaminaci reagencií, mohlo by dojít ke zvýšení výskytu nespecifického barvení. Inkubační doby nebo teploty jiné než předepsané mohou vést k chybným výsledkům. Všechny takové změny musí být uživatelem validovány.

Total Protein

IGG-L-CE Page 57

Kontrola jakostiRozdíly ve zpracování tkání a v technických postupech v laboratoři uživatele mohou způsobit významnou variabilitu výsledků, což vyžaduje kromě níže uvedených postupů i pravidelné provádění kontrol v laboratoři. Kontroly musí být čerstvé pitevní/bioptické/operační vzorky co nejdříve fixované formalínem, zpracované a zalité do parafínového vosku, stejným způsobem jako vzorek/vzorky pacienta.

Pozitivní tkáňová kontrolaPoužívá se k průkazu správně připravených tkání a správných barvicích technik. V každém barvicím cyklu musí být použita jedna pozitivní tkáňová kontrola pro každý soubor testovacích podmínek. Pro optimální kontrolu jakosti a k detekci menšího stupně degradace reagencie je vhodnější tkáň se slabým pozitivním barvením než tkáň se silným pozitivním barvením.2

Doporučená pozitivní tkáňová kontrola je tonzila. Pokud pozitivní tkáňová kontrola nevykazuje pozitivní barvení, musí být výsledky testovaných vzorků považovány za neplatné.

Negativní tkáňová kontrolaMusí být vyšetřena po pozitivní tkáňové kontrole k ověření specificity označení cílového antigenu primární protilátkou. Doporučená negativní tkáňová kontrola je tkáň příštítných tělísek. Alternativně často představuje místa negativní kontroly řada různých typů buněk přítomných ve většině tkáňových řezů, to ale musí uživatel validovat. Nespecifické barvení, je-li přítomno, má obvykle difúzní vzhled. V řezech ze tkání nadměrně fixovaných formalínem může být také zjištěno sporadické barvení pojivové tkáně. K interpretaci výsledků barvení použijte neporušené buňky. Nekrotické nebo degenerované buňky se často barví nespecificky.3 Falešně pozitivní výsledky mohou být důsledkem neimunologické vazby proteinů nebo produktů reakčního substrátu. Mohou být také způsobeny endogenními enzymy, jako je např. pseudoperoxidáza (erytrocyty), endogenní peroxidáza (cytochrom C) nebo endogenní biotin (např. játra, prs, mozek, ledviny), podle typu použitého imunobarviva. K odlišení aktivity endogenních enzymů či nespecifické vazby enzymů od specifické imunoreaktivity mohou být barveny další tkáně pacienta výlučně chromogenním substrátem, případně enzymovými komplexy (avidin-biotin, streptavidin, značený polymer) a chromogenním substrátem. Pokud dojde v negativní tkáňové kontrole ke specifickému barvení, musí být výsledky vzorků pacienta považovány za neplatné.

Negativní reagenční kontrolaK vyhodnocení nespecifického barvení a umožnění lepší interpretace specifického barvení v místě antigenu použijte na řezu z každého vzorku pacienta nespecifickou negativní reagenční kontrolu místo primární protilátky.

Tkáň pacientaNakonec vyšetřete vzorky pacienta barvené pomocí NCL-L-IgG. Intenzita pozitivního barvení musí být zhodnocena v kontextu se vším nespecifickým barvením pozadí u negativní reagenční kontroly. Jako u každého imunohistochemického vyšetření, negativní výsledek znamená, že antigen nebyl zjištěn, nikoli, že antigen není ve vyšetřovaných buňkách/tkáních přítomen. V případě potřeby použijte k identifikaci falešně negativních reakcí panel protilátek.

Očekávané výsledkyNormální tkáně Klon RWP49 detekoval protein IgG v cytoplazmě a membráně plazmatických buněk, B buněk plášťové zóny a germinálních center. Dále byl protein IgG detekován rovněž v řadě tkání, včetně tlustého střeva (epitel), tenkého střeva (epitel), mozečku (Purkyňovy buňky, gliové buňky), ledvin (tubuly, glomeruly), nadledvin (kůra, dřeň), pankreatu (aciny, ostrůvky, dukty), plic (alveoly, bronchiální epitel), jater (hepatocyty), jícnu (epitel), kůže (epitel), sleziny (červená dřeň), vaječníků (stroma), děložního hrdla (epitel), varlat (tubuly), prostaty (aciny), brzlíku, hypofýzy, tonzil (germinální centra, epitel, plazmatické buňky), kostní dřeně, apendixu (mezotel) a pupečníku (mezotel). (Celkový počet normálních tkání = 33).Abnormální tkáně Klon RWP49 obarvil 8/14 myelomů. 38/43 dalších vyšetřovaných vzorků hematologických malignit bylo pozitivních (včetně 13/14 difuzních velkobuněčných B lymfomů, 5/6 periferních T lymfomů, 4/6 folikulárních lymfomů, 5/5 Hodgkinových lymfomů, 2/2 lymfomů z plášťových buněk, 2/2 anaplastických velkobuněčných lymfomů, 1/2 MALT lymfomů, 1/1 Burkittova lymfomu, 1/1 lymfomu marginální zóny, 1/1 angioimunoblastického lymfomu, 1/1 NK/T lymfomu, 1/1 B lymfomu bohatého na T buňky a 1/1 lymfoblastického lymfomu). S výjimkou infiltrujících lymfocytů byl protein IgG rovněž detekován u 31/41 vzorků nelymfoidních malignit (včetně 9/10 karcinomů skvamózních buněk, 4/4 nádorů jater, 3/4 ovariálních nádorů, 3/3 kolorektálních nádorů, 2/2 nádorů žaludku, 2/2 nádorů pankreatu, 2/2 nádorů ledviny, 2/2 nádorů prostaty, 2/2 nádorů plic, 1/2 nádorů prsu a 1/2 metastatických karcinomů lymfatických uzlin). Barvení nebylo detekován u nádorů štítné žlázy (0/4) a nádorů mozku (0/2). (Celkový počet abnormálních nádorů = 98).NCL-L-IgG se doporučuje k detekci antigenu IgG v normálních a neoplastických tkáních, jako doplněk ke konvenční histopatologii s použitím neimunologických histochemických nátěrů.

Obecná omezeníImunohistochemické vyšetření je vícekrokový diagnostický proces, který spočívá ve specializovaném školení ve výběru vhodných reagencií; výběru, fixaci a zpracování tkání; přípravě imunohistochemickího sklíčka; a v interpretaci výsledků barvení. Barvení tkáně závisí na manipulaci s tkání a jejím zpracování před barvením. Nesprávným postupem při fixaci, zmrazení, rozmrazení, omývání, sušení, zahřívání, krájení řezů nebo kontaminací jinými tkáněmi či tekutinami mohou vzniknout artefakty, může dojít k vychytávání protilátek nebo k falešně negativním výsledkům. Nekonzistentní výsledky mohou být důsledkem odchylek ve fixačních metodách a metodách zalití, nebo přirozených odchylek ve tkáni.4 Nadměrné nebo nedostatečné kontrastní barvení může narušit správnou interpretaci výsledků. Klinickou interpretaci jakéhokoliv barvení nebo jeho nepřítomnosti je nutné doplnit morfologickým vyšetřením s použitím správných kontrol a zhodnotit je musí kvalifikovaný patolog v kontextu s klinickou anamnézou pacienta a jinými diagnostickými testy. Protilátky společnosti Leica Biosystems Newcastle Ltd se používají, jak bylo uvedeno, u zmrazených nebo u parafínových řezů se specifickými požadavky na fixaci. Může dojít k expresi neočekávaných antigenů, zejména u nádorů. Klinická interpretace jakéhokoli barveného tkáňového řezu musí zahrnovat morfologickou analýzu a zhodnocení příslušných kontrol.

IGG-L-CE Page 58

Literatura - všeobecná1. National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS). Protection of laboratory workers from infectious diseases

transmitted by blood and tissue; proposed guideline. Villanova, P.A. 1991; 7(9). Order code M29-P.2. Battifora H. Diagnostic uses of antibodies to keratins: a review and immunohistochemical comparison of seven monoclonal and

three polyclonal antibodies. Progress in Surgical Pathology. 6:1–15. eds. Fenoglio-Preiser C, Wolff CM, Rilke F. Field & Wood, Inc., Philadelphia.

3. Nadji M, Morales AR. Immunoperoxidase, part I: the techniques and pitfalls. Laboratory Medicine. 1983; 14:767.4. Omata M, Liew CT, Ashcavai M, Peters RL. Nonimmunologic binding of horseradish peroxidase to hepatitis B surface antigen: a

possible source of error in immunohistochemistry. American Journal of Clinical Pathology. 1980; 73:626.5. Karamchandani JR, Younes SF, Warnke RA. IgG4-related systemic sclerosing disease of the ocular adnexa. American Journal of

Clinical Pathology. 2012; 137: 699-711.6. Janeway C, Travers P, Walport M et al. Immunobiology: The immune system in health and disease. Chapter 3. Garland Science. New

York and London. 2001.7. Fridman W. Fc receptors and immunoglobulin binding factors. FASEB Journal. 1991; 5: 2684-2690.

Opravy předchozího vydáníSložení reagencií, koncentrace protilátek, doporučení k použití, varování a bezpečnostní opatření.

Datum vydání12 prosinec 2019

IGG-L-CE Page 59

Tekutá myšia monoklonálna protilátka NovocastraImunoglobulin GKód produktu: NCL-L-IgG

Zamýšľané použitieNa diagnostické použitie in vitro. NCL-L-IgG slúži na kvalitatívnu identifikáciu ľudských molekúl imunoglobulínu G (IgG) v parafínových rezoch pomocou svetelnej mikroskopie. Klinická interpretácia akéhokoľvek zafarbenia alebo jeho absencie musí byť kombinovaná s morfologickými vyšetreniami pri použití zodpovedajúcich kontrol. Výsledky je nutné vyhodnotiť v kontexte klinickej anamnézy pacienta a ďalších diagnostických testov vedených kvalifikovaným patológom.

Princíp postupuTechniky imunohistochemického (IHC) zafarbenia umožňujú vizualizáciu antigénov sekvenčnou aplikáciou špecifickej protilátky proti antigénu (primárna protilátka), sekundárnej protilátky proti primárnej protilátke a enzymatického komplexu s chromogénnym substrátom. Medzi jednotlivými krokmi prebieha premývanie. Enzymatická aktivácia chromogénu vytvára v mieste antigénu viditeľné produkty reakcie. Môžete doplniť kontrastné zafarbenie vzorky a zakryť ju krycím sklíčkom. Výsledky sa interpretujú pomocou svetelného mikroskopu a napomáhajú pri diferenciálnej diagnostike patofyziologických procesov, ktoré môžu, ale nemusia byť spojené s určitým antigénom.

KlonRWP49

ImunogénProkaryotický rekombinantný proteín zodpovedajúci 327 aminokyselinám ľudskej molekuly IgG.

ŠpecificitaĽudský IgG.

Zloženie činidlaNCL-L-IgG je tekutý supernatant na tkanivovú kultiváciu obsahujúci 0,35 % prípravku ProClin™ 950 ako konzervačnú látku.

Trieda IgIgG1

Celková koncentrácia proteínovCelkovú koncentráciu proteínov špecifickú pre šaržu nájdete na štítku fľaštičky.

Koncentrácia protilátokVyššia alebo rovná 59 mg/l podľa ELISA. Koncentráciu Ig špecifickú pre šaržu nájdete na štítku fľaštičky.

Odporúčania na použitieImunohistochémia parafínových rezov. Záchyt epitopov s tepelnou indukciou (HIER): Postupujte podľa návodu na použitie systému Novocastra Epitope Retrieval Solution pH 6. Odporúčané riedenie: 1:200 po dobu 30 minút pri teplote 25 °C. Táto hodnota je orientačná, používatelia si musia stanoviť svoje vlastné optimálne pracovné riedenia. Vizualizácia: Postupujte podľa návodu na použitie systémov Novolink Polymer Detection Systems. Ďalšie informácie o produkte alebo podporu vám poskytne váš miestny distribútor alebo lokálne zastúpenie spoločnosti Leica Biosystems. Takisto môžete navštíviť internetovú stránku spoločnosti Leica Biosystems: www.LeicaBiosystems.com Funkčnosť tejto protilátky je nutné validovať pri použití s inými manuálnymi systémami farbenia alebo automatizovanými platformami.

Uskladnenie a stabilitaSkladujte pri teplote 2 – 8 °C. Nezmrazujte. Okamžite po použití vráťte do teploty 2 – 8 °C. Nepoužívajte po uplynutí dátumu exspirácie uvedeného na štítku fľaštičky. Iné než vyššie uvedené podmienky skladovania si vyžadujú validáciu používateľom.

Príprava vzorkyOdporúčaný fixačný prípravok je 10 % neutrálny pufrovaný formalín pre bločky tkaniva zaliate do parafínu.

Varovania a bezpečnostné opatreniaToto činidlo bolo pripravené zo supernatantu bunkovej kultúry. Keďže ide o biologický produkt, pri manipulácii je nutné vynaložiť zodpovedajúcu starostlivosť. Koncentrácia produktu ProClin™ 950 je 0,35 %. Obsahuje aktívnu zložku 2-metylizotiazol-3(2H)-ón a môže spôsobiť podráždenie kože, očí, slizníc a horných dýchacích ciest. Pri manipulácii s činidlami používajte jednorazové rukavice. Likvidáciu prípadných potenciálne toxických súčastí definujú federálne, štátne alebo miestne predpisy. So vzorkami pred fixáciou a po nej a všetkými materiálmi, ktoré s nimi prišli do kontaktu, je nutné manipulovať ako s potenciálne infekčnými a zlikvidovať ich pri dodržaní zodpovedajúcich bezpečnostných opatrní.1 Činidlá nikdy nepipetujte ústami a zabráňte kontaktu činidiel a vzoriek s kožou a sliznicami. Ak sa činidlá alebo vzorky dostanú do kontaktu s citlivými oblasťami, umyte ich veľkým množstvom vody. Vyhľadajte lekársku pomoc. Minimalizujte mikrobiálnu kontamináciu činidiel. V opačnom prípade môže dôjsť k zvýšeniu nešpecifického zafarbenia. Nedodržanie predpísaných inkubačných dôb alebo teplôt môže viesť k nesprávnym výsledkom. Všetky takéto zmeny si vyžadujú validáciu používateľom.

Total Protein

IGG-L-CE Page 60

Kontrola kvalityRozdiely v spracovaní tkaniva a technických postupoch v laboratóriu používateľa môžu viesť k významnému kolísaniu výsledkov, čo si vyžaduje, okrem nasledujúcich postupov, aj pravidelné interné kontroly. Kontroly by mali byť čerstvé pitevné/bioptické/chirurgické vzorky fixované čo najskôr formalínom a spracované zaliatím do parafínu rovnakým spôsobom ako vzorky pacienta.

Pozitívna kontrola tkanivomIdentifikuje správne pripravené tkanivá a správne techniky zafarbenia. Každá súprava testových podmienok v každom cykle zafarbenia musí obsahovať jednu pozitívnu kontrolu tkanivom. Tkanivo so slabým pozitívnym farbením je pre optimálnu kontrolu kvality a na detekciu slabšej degradácie činidla vhodnejšie než tkanivo so silným pozitívnym farbením.2

Odporúčané tkanivo na pozitívnu kontrolu je tonzila. Ak pozitívna kontrola tkanivom nebude vykazovať pozitívne zafarbenie, výsledky testovaných vzoriek je nutné považovať za neplatné.

Negatívna kontrola tkanivomNutné vyšetriť po pozitívnej kontrole tkanivom s cieľom overiť špecificitu značenia cieľového antigénu primárnou protilátkou. Odporúčané tkanivo na negatívnu kontrolu je prištítna žľaza. Ako negatívnu kontrolu je možné použiť aj rôzne typy buniek prítomné vo väčšine tkanivových rezov, takýto postup si však vyžaduje validáciu používateľom. Prípadné nešpecifické farbenie má obvykle difúzny vzhľad. V rezoch tkanív silne fixovaných formalínom môže byť pozorované sporadické farbenie spojiva. Na interpretáciu výsledkov farbenia používajte intaktné bunky. Nekrotické alebo degenerované bunky sa často farbia nešpecificky.3 Falošne pozitívne výsledky môžu byť pozorované v dôsledku neimunologickej väzby proteínov alebo produktov reakcie substrátu. Môžu byť spôsobené aj endogénnymi enzýmami, ako napr. pseudoperoxidázou (erytrocyty), endogénnou peroxidázou (cytochróm C) alebo endogénnym biotínom (napr. pečeň, prsník, mozog, oblička) v závislosti od typu imunologického farbenia. S cieľom diferencovať endogénnu enzymatickú aktivitu alebo nešpecifickú väzbu enzýmov od špecifickej imunoreaktivity môžete nafarbiť ďalšie vzorky tkanív pacienta výhradne substrátovým chromogénom alebo enzymatickými komplexmi (avidín-biotín, streptavidín, značený polymér), resp. substrátovým chromogénom. V prípade špecifického farbenia v negatívnej kontrole tkanivom je nutné výsledky vzoriek pacienta považovať za neplatné.

Negatívna kontrola činidlom Na vyhodnotenie nešpecifického zafarbenia použite nešpecifickú negatívnu kontrolu činidlom miesto primárnej protilátky s rezom jednotlivých vzoriek pacienta, čo umožní lepšiu interpretáciu špecifického farbenia na mieste antigénu.

Tkanivo pacienta Pacientske vzorky zafarbené prípravkom NCL-L-IgG preskúmajte ako posledné. Intenzitu pozitívneho farbenia je nutné vyhodnotiť v kontexte prípadného nešpecifického zafarbenia negatívnej kontroly činidlom na pozadí. Podobne ako pri všetkých imunohistochemických testov znamená negatívny výsledok, že antigén nebol detegovaný. Nepotvrdzuje jeho absenciu v testovaných bunkách/tkanivách. V prípade potreby identifikujte falošne negatívne reakcie pomocou panelu protilátok.

Očakávané výsledkyNormálne tkanivá Klon RWP49 detegoval proteín IgG v cytoplazme a na membráne plazmatických buniek, B-buniek z plášťovej zóny a germinačnom centre. Okrem toho bol proteín IgG tiež detegovaný v rôznych tkanivách vrátane hrubého čreva (epitel), tenkého čreva (epitel), mozočka (Purkyňove bunky, gliové bunky), obličiek (kanáliky, glomeruly), nadobličiek (kôra, dreň), pankreasu (lalôčiky, ostrovčeky, vývody), pľúc (alveoly, bronchiálny epitel), pečene (hepatocyty), pažeráka (epitel), kože (epitel), sleziny (červená pulpa), vaječníkov (stróma), krčka maternice (epitel), semenníkov (kanáliky), prostaty (lalôčiky), týmusu, hypofýzy, tonzíl (zárodočné centrá, epitel, plazmatické bunky), kostnej drene, slepého čreva (mezotel) a pupočnej šnúry (mezotel). (Celkový počet normálnych prípadov = 33).Abnormálne tkanivá Klon RWP49 zafarbil 8/14 myelómov. Pozitívnych bolo aj 38/43 ďalších hodnotených hematologických malignít (vrátane 13/14 difúznych veľkobunkových B-lymfómov, 5/6 periférnych T-bunkových lymfómov, 4/6 folikulárnych lymfómov, 5/5 Hodgkinových lymfómov, 2/2 lymfómov z plášťových buniek, 2/2 anaplastických veľkobunkových lymfómov, 1/2 MALT lymfómov, 1/1 Burkittovho lymfómu, 1/1 lymfómu okrajovej zóny, 1/1 angioimunoblastového lymfómu, 1/1 NK/T-bunkového lymfómu, 1/1 B-lymfómu bohatého na T-bunky a 1/1 lymfoblastového lymfómu). Okrem infiltrujúcich lymfocytov bol IgG detegovaný aj v 31/41 nelymfoidných malignít (vrátane 9/10 skvamocelulárnych karcinómov, 4/4 nádorov pečene, 3/4 nádorov vaječníkov, 3/3 kolorektálnych nádorov, 2/2 nádorov žalúdka, 2/2 nádorov pankreasu, 2/2 nádorov obličiek, 2/2 nádorov prostaty, 2/2 nádorov pľúc, 1/2 nádorov prsníka a 1/2 metastatických karcinómov lymfatických uzlín). Pri nádoroch štítnej žľazy (0/4) a nádoroch mozgu (0/2) nebolo pozorované žiadne zafarbenie. (Celkový počet abnormálnych prípadov = 98).NCL-L-IgG sa odporúča na detekciu antigénu IgG v normálnych a neoplastických tkanivách ako doplnok konvenčnej histopatológie pri použití neimunologických histochemických zafarbení.

Všeobecné limitácieImunohistochémia je diagnostický postup pozostávajúci z viacerých krokov, ktorý si vyžaduje špecializované zaškolenie vo výbere zodpovedajúcich činidiel, výbere tkanív, fixácie a spracovania, príprave IHC sklíčka a interpretácii výsledkov farbenia. Farbenie tkaniva závisí od manipulácie s tkanivom a od jeho spracovania pred farbením. Nesprávna fixácia, zmrazovanie,rozmrazovanie, premývanie, sušenie, ohrievanie, rezanie alebo kontaminácia inými tkanivami či tekutinami môžu viesť k vzniku artefaktov, záchytu protilátok alebo falošne negatívnym výsledkom. Inkonzistentné výsledky môžu byť spôsobené zmenami metód fixácie a montáže preparátov alebo inherentnými nepravidelnosťami v tkanive.4 Nadmerné alebo neúplné kontrastné farbenie môže narušiť správnosť interpretácie výsledkov. Klinická interpretácia akéhokoľvek zafarbenia alebo jeho absencie musí byť kombinovaná s morfologickými vyšetreniami pri použití zodpovedajúcich kontrol. Výsledky je nutné vyhodnotiť v kontexte klinickej anamnézy pacienta a ďalších diagnostických testov vedených kvalifikovaným patológom.

IGG-L-CE Page 61

Protilátky spoločnosti Leica Biosystems Newcastle Ltd sú určené na použitie na zmrazených rezoch alebo rezoch zaliatych parafínom so špecifickými požiadavkami na fixáciu, ako uvádza tento dokument. Najmä pri neopláziách môže dôjsť k nečakanej expresii antigénov. Klinická interpretácia akýchkoľvek farbených tkanivových rezov musí zahŕňať morfologickú analýzu a vyhodnotenie zodpovedajúcich kontrol.

Bibliografia – všeobecne1. National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS). Protection of laboratory workers from infectious diseases

transmitted by blood and tissue; proposed guideline. Villanova, P.A. 1991; 7(9). Order code M29-P.2. Battifora H. Diagnostic uses of antibodies to keratins: a review and immunohistochemical comparison of seven monoclonal and

three polyclonal antibodies. Progress in Surgical Pathology. 6:1–15. eds. Fenoglio-Preiser C, Wolff CM, Rilke F. Field & Wood, Inc., Philadelphia.

3. Nadji M, Morales AR. Immunoperoxidase, part I: the techniques and pitfalls. Laboratory Medicine. 1983; 14:767.4. Omata M, Liew CT, Ashcavai M, Peters RL. Nonimmunologic binding of horseradish peroxidase to hepatitis B surface antigen: a

possible source of error in immunohistochemistry. American Journal of Clinical Pathology. 1980; 73:626.5. Karamchandani JR, Younes SF, Warnke RA. IgG4-related systemic sclerosing disease of the ocular adnexa. American Journal of

Clinical Pathology. 2012; 137: 699-711.6. Janeway C, Travers P, Walport M et al. Immunobiology: The immune system in health and disease. Chapter 3. Garland Science. New

York and London. 2001.7. Fridman W. Fc receptors and immunoglobulin binding factors. FASEB Journal. 1991; 5: 2684-2690.

Úpravy predchádzajúceho vydaniaZloženie činidla, koncentrácia protilátky, odporúčania na použitie, varovania a bezpečnostné opatrenia.

Dátum vydania12 December 2019

IGG-L-CE Page 62

Leica Biosystems Newcastle LtdBalliol Business Park WestBenton LaneNewcastle Upon Tyne NE12 8EWUnited Kingdom ( +44 191 215 4242

Leica Biosystems Canada71 Four Valley DriveConcord, Ontario L4K 4V8Canada( +1 800 248 0123

Leica Biosystems Inc1700 Leider LaneBuffalo Grove IL 60089USA( +1 800 248 0123

Leica Biosystems Melbourne Pty Ltd495 Blackburn RoadMt Waverley VIC 3149Australia( +61 2 8870 3500 © Leica Biosystems Newcastle Ltd. • NCL-CE-L Rev E • IGG-L-CE 12/12/2019