manual del submodulo 2 reproduccion de plantas

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Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 1 CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLOGICO AGROPECUARIO NO 38 COM. MARTE R. GÓMEZ Y TOBARITO, CAJEME, SONORA. MANUAL DEL ESTUDIANTE DE REPRODUCCIÓN DE PLANTAS ING. RAMÓN CARLOS SÁNCHEZ BARRON

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Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 1

CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLOGICO

AGROPECUARIO NO 38

COM. MARTE R. GÓMEZ Y TOBARITO, CAJEME, SONORA.

MANUAL DEL

ESTUDIANTE DE REPRODUCCIÓN DE PLANTAS

ING. RAMÓN CARLOS SÁNCHEZ BARRON

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 2

ÍNDICE

Pagina Presentación ................................................................................................................... 4 Introducción ................................................................................................................... 5 Objetivo general ............................................................................................................. 5 Objetivo específicos ........................................................................................................ 5

I. Reproducción sexual y asexual de las plantas cultivadas .................................... 6

Evaluación diagnostica .................................................................................................... 7 1.1. Reproducción sexual ......................................................................................... 8

1.1.1. Morfología de la flor ............................................................................... 8 1.1.2. La meiosis .......................................................................................... 9-10 1.1.3. Polinización ..................................................................................... 11-12 1.1.4. Formación de frutos y semillas ........................................................ 13,14 1.1.5. Morfología y fisiología de la semilla ..................................................... 15 1.1.6. El proceso de germinación ............................................................... 16-17 1.1.7. Manejo de semillas .......................................................................... 18-19 1.1.8. Siembra, germinación y labores culturales ....................................... 20-23

Evaluación diagnostica .................................................................................................. 24 1.2. Reproducción asexual...................................................................................... 25

1.2.1. Mitosis ............................................................................................ 25-28 1.2.2. Tejidos y diferenciación celular ............................................................. 29 1.2.3. El cambium generador de células ......................................................... 30

Instrumentos de evaluacion ..................................................................................... 31-45

II. Estructuras y medios de propagación de plantas .............................................. 46

Evaluación diagnostica .................................................................................................. 47 2.1 El sustrato como medio de propagación ...................................................... 48-50

2.1.1. Materiales orgánicos e inorgánicos .................................................. 51-57 2.1.2. Estructuras para la reproducción de plantas ......................................... 57

2.1.2.1. Almácigos, bancales y camas de siembra ...................................... 58 2.1.2.2. Invernaderos .......................................................................... 59, 60

2.1.2.2.1. Tipo raspa y amagado ..................................................... 60, 61 2.1.2.2.2. Tipo asimétrico ............................................................... 61, 62 2.1.2.2.3. Tipo capilla............................................................................ 62 2.1.2.2.4. Tipo doble capilla .................................................................. 63 2.1.2.2.5. Tipo túnel o semicilíndrico .................................................... 63

2.1.2.3. Sombreaderos .............................................................................. 64 2.1.2.4. Camas de crecimiento................................................................... 65

Instrumentos de evaluación ..................................................................................... 66-69

II. Estructuras y medios de propagación de plantas .......................................... 70

Evaluación diagnostica .................................................................................................. 71

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 3

2.2. Propagación asexual ........................................................................................ 72

2.2.1. Método de propagación por estacado .................................................. 72 2.2.1.1. Importancia y ventajas de la propagación por estacas .................. 72 2.2.1.2. Tipos de estacas ...................................................................... 73-75

2.2.2. Acodo aéreo y subterráneo .................................................................. 76 2.2.2.1. Factores que afectan la regeneración de las plantas por acodado . 77 2.2.2.2. Características y usos del acodado .......................................... 77, 78 2.2.2.3. Acodado de punta ........................................................................ 78 2.2.2.4. Acodado simple ............................................................................ 79 2.2.2.5. Acodado Compuesto o Serpentino ................................................ 80 2.2.2.6. Acodado Aéreo ....................................................................... 80, 81 2.2.2.7. Acodado en Montículo o Banquillo ............................................... 82 2.2.2.8. Acodado en Trinchera ................................................................... 83

2.2.3. Propagación por injertos de yema y púa ............................................... 83 2.2.3.1. Injerto inglés o de lengüeta ........................................................... 84 2.2.3.2. Injerto de tocón de rama .............................................................. 85 2.2.3.3. Injerto de estaca lateral subcortical .............................................. 86 2.2.3.4. Injerto lateral en cuña en Coníferas .............................................. 86 2.2.3.5. Injerto de hendidura simple .......................................................... 87 2.2.3.6. Injerto de hendidura doble ..................................................... 87, 88 2.2.3.7. Injerto de corteza o de corona ................................................ 88, 89 2.2.3.8. Injerto de aproximación ................................................................ 89 2.2.3.9. Injerto de puente .......................................................................... 90 2.2.3.10 Injerto de escudete o yema en T ............................................ 90, 91 2.2.3.11 Injerto de parche ......................................................................... 92 2.2.3.12 Injerto de astilla o injerto de chip ................................................. 92

2.2.4. Cuidado de las plantas injertadas .......................................................... 93 2.2.5. Mejoramiento genético de plantaciones ............................................... 93

Instrumentos de evaluación ..................................................................................... 94-97

II. Estructuras y medios de propagación de plantas .......................................... 98 Evaluación diagnostica .................................................................................................. 99 2.3. El vivero ............................................................................................................... 100 2.3.1. Factores abióticos a considerar en un vivero ....................................... 100

2.3.2. Construcción de un vivero ........................................................... 101-103 2.3.3. Producción escalonada de plantas ...................................................... 104 2.3.4. Manejo del vivero ........................................................................ 105,108

Evaluación actividades de aprendizaje ................................................................. 109-111 Bibliografía ......................................................................................................... 112, 113

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1.- PRESENTACION

En la actualidad la reproducción de plantas, es una forma indispensable para la explotación de cultivos en todas las áreas productivas, para lograr resultados favorables se requiere que el alumno en este submodulo Reproducción de plantas adquiera las técnicas de reproducción para poder obtener plantas de mejor calidad.

En estos tiempos la sociedad demanda nuevas técnicas de producción, para acortar los plazos o ciclos productivos, además de eficientar los recursos naturales y humanos. Razón por la cual pongo a tu disposición este manual que te servirá de herramienta para adquirir los conocimientos básicos para realizar la reproducción de plantas en las diferentes técnicas más utilizadas en la región.

Para que en este submodulo tengas la oportunidad de aprovecharlo al máximo y que tu aprendizaje sea significativo, se te proporcionan una serie de actividades que te llevaran de la mano en la aventura de producir plantas por los métodos sexual y asexual, logrando así alcanzar los objetivos establecidos en este manual del estudiante.

Este manual se complementara con una serie de prácticas, que te serán de mucha utilidad en este proceso.

El esfuerzo que le dediques a este submodulo se verá recompensado con la apropiación de una serie de conocimientos, habilidades y destrezas, pero sin dejar por fuera el cambio de actitud que se reflejara en tus actos, además, tomaras amor al campo, lugar donde pertenecemos y debemos de hacerlo producir.

MODULO 2: PRACTICANDO LA AGRICULTURA

SUBMODULO II: REPRODUCCIÓN DE PLANTAS

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2.- INTRODUCCIÓN

ste manual te brinda la oportunidad de conocer y analizar las técnicas de reproducción de plantas en sus dos modalidades sexual (a través de la unión de células) y asexual (por medio de la multiplicación

vegetativa).

Quiero decirte que no basta con saber o conocer las formas de reproducción de plantas, si no que debes de aplicar las técnicas utilizadas en la reproducción acorde al tipo de cultivo a establecer. Además debes de saber que tienes una oportunidad de negocio con los conocimientos que adquirirás en este submodulo 2. De reproducción de plantas.

Joven estudiante este manual está hecho con toda la intención de propiciar un ambiente de confianza, para que se te facilite el aprendizaje, espero que te sea de utilidad.

Te recuerdo que la sociedad requiere de jóvenes, educados, responsables y honestos, para poder incursionar en un trabajo digno. Estoy seguro que tú puedes lograrlo.

3.- OBJETIVO GENERAL

1.- El alumno debe adquirir los conocimientos básicos que le permitan desarrollar sus habilidades y destrezas en la aplicación de las técnicas de reproducción en plantas de diferentes especies.

2.- Que el estudiante sea capaz de aplicar adecuadamente las técnicas para la reproducción de plantas

OBJETIVOS ESPECIFICOS.

1.- Al concluir el submodulo 2. Reproducción en plantas, el alumno conocerá las diferentes formas de reproducción de plantas.

2.- El alumno tendrá la habilidad y la técnica para reproducir las plantas

3.- Al término del submodulo 2. El alumno debe aplicar las diferentes técnicas para la reproducción de plantas.

E

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Se basa en este proceso Debes de conocer la

Se lleva a cabo por dos formas

UNIDAD I

Reproducción

sexual y asexual de

las plantas

cultivadas.

1.1.

La reproducción

sexual

1.2.

La reproducción

asexual.

1.1.1.

Morfología de la

flor 1.1.2.

La meiosis

1.1.3.

Polinización y

fertilización. 1.1.4.

Formación de

frutos y semillas.

1.1.5.

Morfología y

fisiología de las

semillas.

1.1.6.

El proceso de

germinación.

1.1.7.

Manejo de semillas.

1.1.8.

Siembra

germinación y labores culturales.

1.2.1.

Bases celulares de la reproducción

asexual.

1.2.2.

La mitosis

1.2.3.

Tejidos y diferenciación

celular.

1.2.4.

Cambium.

Donde inicia

Que inicia en

Ocasionando

Que se genera en el

Cuando se efectúa la

Da comienzo la

Y debemos conocer la

Y

Para dar un correcto

Para saber si son aptas para la

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Evaluación Evaluación Evaluación Evaluación DIAGNOSTICA.DIAGNOSTICA.DIAGNOSTICA.DIAGNOSTICA.

1.- ¿Qué entiende por reproducción? ___________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________ 2.- ¿Cuántos tipos de reproducción existen? ____________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________ 3.- ¿En qué consiste la reproducción sexual? ___________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________ 4.- ¿Cómo crees que se reproducen las plantas? ____________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________ 5.- ¿Qué es una semilla? ____________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________ 6.- ¿Cuántos tipos de semilla conoces? ___________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________ 7.- ¿Cuándo sabemos que un fruto está maduro? ____________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________ 8.- ¿Define germinación de la semilla? ____________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________ 9.- ¿Menciona las partes principales de la semilla y su función? ____________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________ 10.- Dibuja una flor completa.

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MÓDULO 2: PRACTICANDO LA AGRICULTURA

SUBMODULO 2: REPRODUCCIÓN EN PLANTAS

1. LA REPRODUCCIÓN SEXUAL Y ASEXUAL DE LAS PLANTAS CULTIVADAS

Reproducción en las plantas

La reproducción consiste en la capacidad de los seres vivos de producir seres semejantes a los existentes pues el fin de todas las especies es perpetuarse en el espacio y en el tiempo. Aún así hay que distinguir entre reproducción y multiplicación que es sólo un aumento de la población.

Existen dos tipos de reproducción: vegetativa o asexual y sexual o generativa. La reproducción asexual no implica la unión de células y en ella los individuos se desarrollan para dar otros idénticos a ellos. La reproducción sexual implica la unión de células germinales especiales, los gametos. Además, genera variabilidad genética debido a la meiosis.

1.1 REPRODUCCIÓN SEXUAL

La reproducción sexual implica la unión de células germinales especiales, los gametos, y está encaminada a la variabilidad genética por recombinación cromosómica. O fecundación (unión de núcleos).

1.1.1. MORFOLOGIA DE LA FLOR

Las flores:

• son las partes de las plantas que forman los frutos y semillas

• pueden aparecer aisladas o agrupadas en inflorescencias

• suelen tener órganos masculinos (estambres) y femeninos (pistilos) y se denominan por esto hermafroditas

• cuando sólo tienen estambres o sólo tienen pistilos se llaman flores unisexuales.

Partes de una flor hermafrodita

o sépalos, generalmente verdes, forman el cáliz

o pétalos, generalmente coloreados, forman la corola

o estambres, órgano masculino

o carpelo o pistilo, órgano femenino

Actividad 1. Leer el texto y en equipo dibujar una flor con todas sus partes,

exponer realizando un rompecabezas.

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1.1.2. LA MEIOSIS.

La reproducción sexual requiere, en general, de dos progenitores y siempre involucra dos hechos: la fecundación y la meiosis. La fecundación es el medio por el cual las dotaciones genéticas de ambos progenitores se reúnen y forman una nueva identidad genética, la de la progenie. La meiosis es un tipo especial de división nuclear en el que se redistribuyen los cromosomas y se producen células que tienen un número haploide de cromosomas (n). La fecundación restablece el número diploide (2n). Cada una de las células haploides producidas por meiosis contiene un complejo único de cromosomas, debido al entrecruzamiento. De esta manera, la meiosis es una fuente de variabilidad en la descendencia. Los acontecimientos que tienen lugar durante la meiosis se asemejan a los de la mitosis, proceso de reproducción en el cual el material genético -el ADN- se reparte en partes iguales entre dos nuevas células hijas. Existen importantes diferencias entre los procesos de mitosis y meiosis. Durante la meiosis, cada núcleo diploide se divide dos veces, produciendo un total de cuatro núcleos. Sin embargo, los cromosomas se duplican sólo una vez, antes de la primera división nuclear. Por lo tanto, cada uno de los cuatro núcleos producidos contiene la mitad del número de cromosomas presentes en el núcleo original. A diferencia de lo que ocurre en la meiosis, en la mitosis, luego de la duplicación de los cromosomas, cada núcleo de divide sólo una vez. En consecuencia, el número cromosomas se mantiene invariable. La mitosis puede ocurrir en células haploides o diploides, mientras que la meiosis ocurre solamente en células con un número diploide de cromosomas (para producir células haploides).

Aunque la mitosis, luego de la duplicación de los cromosomas, cada núcleo de divide sólo una vez. En consecuencia, el número cromosomas se mantiene invariable. La mitosis puede ocurrir en células haploides o diploides, mientras que la meiosis ocurre solamente en células con un número diploide de cromosomas (para producir células haploides).Aunque la meiosis en los animales produce gametos, en las plantas produce esporas. Con la formación de gametos y esporas por meiosis, se obtiene el mismo resultado: en algún momento del ciclo vital de un organismo que se reproduce sexualmente, se reduce la dotación diploide de cromosomas a la dotación haploide.Las Fases de la Meiosis: recuerda que enla meiosis, un tipo especial de división nuclear se van a dar dos divisiones nucleares sucesivas, designadas convencionalmente meiosis I y meiosis II.Durante la interfase que precede a la meiosis, los cromosomas se duplican. Durante la profase I de la

Actividad 2. Investigar

tipos de sexo de las flores.

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meiosis, los cromosomas homólogos se disponen de a pares -se aparean-. Cada par homólogo está formado por cuatro cromátidas por lo que también se conoce como tétrada (del griego, tetra que significa "cuatro"). Entre las cromátidas de los dos cromosomas homólogos se produce el entrecruzamiento, es decir, el intercambio de segmentos cromosómicos.

Los cromosomas homólogos permanecen asociados en los puntos de entrecruzamiento -o quiasmas- hasta el final de la profase I. Luego, los cromosomas comienzan a separarse. Como se puede ver, las cromátidas hermanas de cada homólogo ya no son completamente idénticas; el entrecruzamiento da como resultado una recombinación del material genético de los dos homólogos.En la metafase I: Las tétradas se alinean en el plano ecuatorial, a la mitad de los polos del huso. En la Anafase I: Se caracteriza por la migración de los cromosomas homólogos a los dos polos de la célula. Sin embargo, a diferencia de la mitosis, las cromátidas hermanas que formó cada cromosoma al duplicarse, permanecen unidas por sus centrómeros. En la Telofase I: Los cromosomas llegan a los polos de la célula, pero aún están formados por sus cromátidas hermanas.

Ilustración de la meiosis:

En la interfase de la meiosis II, NO ocurre la replicación del ADN. Durante la profase II: se forma el huso, desaparece envoltura nuclear y nucléolos. En la metafase II, las

cromátidas hermanas se alinean en el plano ecuatorial de la célula, justo como sucede en la mitosis. En la anafase II: los centrómeros de las cromátidas hermanas, se separan, y las cromátidas hermanas de cada par, ahora cromosomas hijos individuales, se mueven hacia polos opuestos de la célula. En la telofase II se forma

Actividad 3. Leer las fases de la meiosis y en equipo componer una canción y grabarla en video y presentarla al grupo, ver ejemplo. http://www.youtube.com/watch?v=xwnqxYeEhzU&feature=related

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la envoltura nuclear en cada una de las 4 células hijas, cada una con un numero de haploide de cromosomas.

1.1.3. POLINIZACION

Paso del polen desde los estambres o estructuras masculinas de la flor al estigma del pistilo, que es la estructura femenina, de la misma flor o de otra distinta. Cuando el polen pasa del estambre al estigma de la misma flor, se habla de autopolinización o autogamia; la polinización cruzada o alogamia es el paso del polen de los estambres de una flor a otra de la misma planta (geitonogamia) o de una planta distinta de la misma especie (xenogamia).

De estas dos formas de fecundación, la autopolinización es la más sencilla y segura, en particular para las numerosas especies que colonizan el territorio repitiendo muchas veces una misma estirpe parental. Pero estas especies que producen una descendencia siempre uniforme corren el riesgo de sufrir el exterminio de toda su población por un único azar evolutivo. La polinización cruzada produce una descendencia más variada y mejor equipada para afrontar los cambios del medio. Asimismo, las plantas que se reproducen a través de polinización cruzada suelen producir semillas de mejor calidad.

Las ventajas de la polinización cruzada son tan grandes que las plantas han formado, a lo largo de la evolución, refinados mecanismos para evitar la autopolinización y lograr el transporte del polen a otros individuos alejados. Muchos vegetales evitan la autopolinización sintetizando compuestos químicos que impiden la maduración del grano del polen en el estigma de la misma flor o la emisión del tubo polínico en el estilo. Otras especies, como la palmera datilera o ciertos frutales, son dioicas, y cada individuo forma sólo flores masculinas o femeninas. En las llamadas dicógamas, el pistilo madura antes o después de que el estigma de la misma flor sea receptivo.

Actividad 4. Leer el texto y hacer un cuadro sinóptico de las diferentes formas de polinización, apoyarse con videos.

http://www.youtube.com/watch?v=fNuouwMeal4&NR=1

http://www.youtube.com/watch?v=LYGYSYnRAbE&NR=1

http://www.youtube.com/watch?v=fFCLqti1I-M&NR=1

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El viento es el agente más común de la polinización cruzada (polinización anemófila). Debido a que distribuye el polen sobre grandes extensiones, las plantas que se reproducen de esta forma (las coníferas, por ejemplo) deben producirlo en cantidades enormes para garantizar la fecundación, hasta el extremo de que los bosques de pinos quedan a menudo envueltos en una especie de neblina de polen. La palmera datilera es anemófila en la naturaleza, pero en Oriente Medio se poliniza de forma manual desde hace siglos.

Las abejas y otros insectos, los pájaros y los murciélagos son portadores de polen más discriminativos, porque visitan en su vuelo flores de la misma especie. La relación entre plantas y abejas es en ocasiones muy específica; sólo una especie determinada de abejorro, que visita las flores de la retama (Cytisus scoparius) hace que los estambres se desplieguen y cubran de polvo de polen la parte inferior del cuerpo del insecto. Quizá los principales agentes de polinización cruzada sean las abejas melíferas y, por ello, es habitual instalar colmenas en los huertos de frutales. Ciertas flores especializadas atraen a especies tropicales de murciélagos de lengua gruesa por el olor nocturno, la abundancia de néctar y el polen rico en proteínas.

Las flores contienen las estructuras necesarias para la reproducción sexual. La parte masculina es el estambre, formado por el filamento y la antera. La parte femenina, el carpelo, incluye el estigma, que recoge el polen; el ovario que contiene el óvulo; y el estilo, un tubo que conecta el estigma con el ovario (A). El polen es producido en la antera (B) y cuando está maduro es liberado (C). Cada grano de polen contiene dos gametos masculinos. Cuando tiene lugar la autopolinización el polen llega al estigma de la misma flor, pero en las plantas con polinización cruzada (la mayoría) el polen es transportado por el aire, el agua, los insectos o pequeños animales hasta una flor distinta. Si el polen alcanza el estigma de una flor de la misma especie, se forma un tubo polínico que crece hacia abajo por el estilo y transporta los gametos masculinos hasta el óvulo (D).

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Dentro del saco embrionario del óvulo, un gameto masculino fecunda la ovocélula y forma un cigoto que da lugar al embrión. El segundo gameto masculino se une a dos células del saco embrionario llamadas núcleos polares para formar el endospermo nutritivo que rodea el embrión de la semilla (E).

1.1.4. FORMACION DE FRUTOS Y SEMILLAS

Tras la fecundación se desarrollan embriones dentro de la semilla por transformación de los primordios seminales el pistilo se engruesa rodeando a las semillas en formación y desarrollando el fruto

y a la vez se caen los pétalos y a veces los sépalos. La semilla es el óvulo maduro. Son estructuras reproductoras de las plantas de las semillas.

Las semillas se forman en las plantas con flores (angiospermas) dentro de una estructura llamada fruto. La semilla tiene un embrión, en el cuál se guarda una vida pero que está carente (latente).

Las características de las plantas de semillas

Las plantas de semilla son plantas vasculares que se reproducen al formar semillas.

Las plantas de semillas se dividen en dos grupos de acuerdo con el lugar donde se desarrolla la semilla: (1) las angiospermas o plantas de flores, son las plantas cuyas semillas se desarrollan dentro de una estructura llamada fruta. (2) las gimnospermas, son las plantas cuyas semillas no se desarrollan dentro de los frutos.

Una semilla es una estructura que se compone de un embrión vegetal, de alimento para el embrión y de una cubierta externa.

Gimnospermas

Hay muchas clases de gimnospermas y todos comparten una característica: que tienen semillas desnudas, las cuales no están rodeadas de un fruto. Las cicadáceas, los gingcos, las gnetáceas y las coníferas son gimnospermas.

Las cicadáceas son un grupo de plantas tropicales que parecen helechos grandes o palmas.

Las más familiares y más importantes de las gimnospermas son las coníferas. Las coníferas son el grupo de plantas que usualmente, producen conos: como el pino.

Actividad 5. Investigar los tipos de frutos, hacer una relación de especies de plantas con cada tipo de fruto existente, presentar al grupo.

Actividad 6. Observar video y hacer un resumen de manera individual. http://www.youtube.com/watch?v=PNT7lt

kUeGI&feature=related

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Angiospermas

Las angiospermas o plantas de flores son más diversas que las gimnospermas. Hoy en día, hay aproximadamente 215,000 especies de estas plantas, las cuales componen el grupo mayor de plantas.

La flor, que es una característica de las angiospermas, aumenta las posibilidades de la planta de tener una reproducción exitosa. Dentro de las angiospermas existen dos grupos que son las monocotiledones y dicotiledones.

Sobre la base de la diferencia de la cantidad de cotiledones, las angioespermica, se dividen en dos grupos:

1. MONOCOTILEDON: Las monocotiledóneas son angiospermas cuya semilla contiene una hoja primaria En las monocotiledóneas, la producción de tejido leñoso es rara.

2. DICOTILEDON: Las dicotiledóneas son angiospermas en las que cada semilla posee dos hojas primarias, las hojas primarias se llaman cotiledón. En las dicotiledóneas, el engrosamiento del tallo ocasiona la producción del tejido leñoso.

Clases de semillas

EPIGEAS: Cuando al desarrollarse, el tallo embrionario, se desarrolla activamente, llevando consigo los cotiledones que se guardan adheridos a él.

HIPOGEAS: Conservan sus cotiledones en el suelo.

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1.1.5. MORFOLOGIA Y FISIOLOGIA DE LA SEMILLA.

Las semillas como se vio en el apartado anterior, son óvulos maduros. Se forman en el ovario el cual se desarrolla para formar el fruto; sin embargo, hay ocasiones en que participan otras estructuras además del ovario en la formación del fruto. La semilla, consta de una cubierta o testa, material alimenticio almacenado y un embrión. Todas las semillas están rodeadas por una cubierta llamada testa (Figura 1), la cual puede tener muy distintas texturas y apariencias.

El endospermo tiene como función almacenar las reservas alimenticias de las semillas, aunque no siempre está presente. Entre las semillas que tienen un endospermo bien desarrollado están las gramíneas como el trigo, el maíz, la cebada y algunas dicotiledóneas como Ricinus communis.

El endospermo de las gramíneas y de otras especies se caracteriza por presentar una capa externa o aleurona. Tienen paredes gruesas y en su interior se desarrollan los llamados granos de aleurona

El embrión es el origen de la raíz, hojas y tallo de la nueva planta, por lo que resulta de interés entender con más detalle su funcionamiento.

El embrión maduro de las plantas que tienen flores consiste en un eje parecido a un tallo (eje embrionario) en cuyo extremo están uno o dos cotiledones (Figura 1).

Estos cotiledones frecuentemente se conocen como las hojas de las semillas o las hojas cotiledonarias.

Sintetizando, diríamos que el embrión está formado básicamente por un eje hipocótilo-raíz con uno o dos cotiledones (dependiendo si son mono o dicotiledóneas) y un meristemo apical en los ápices de raíz y tallo. Durante el proceso de germinación, generalmente la primera estructura en emerger de la semilla es la raíz del embrión, llamada radícula. Esta raíz rápidamente penetra en el suelo y permite que la planta se ancle y comience a absorber agua y nutrientes.

Actividad 8. Con la información presente realizar una exposición resaltando las funciones de las parte de la semilla, Hacer un dibujo mostrando las partes.

Actividad 7. Recolectar semillas y hacer una descripción de ellas.

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1.1.6. EL PROCESO DE GERMINACION.

Las semillas son los vehículos principales para propagar nueva vida de un lugar a otro por medio de los elementos, de los animales, y del hombre.

Las semillas también proporcionan alimentos a la humanidad, a los animales y a otros seres vivientes son la materia prima para gran cantidad de productos empleados por el hombre.

Existen muchos tipos de semillas de tamaños, formas, pesos y colores variados; unas muy germinadoras y otras previstas de membranas y/o sustancias químicas que bloquean la germinación y que solamente mediante tratamientos especiales pueden reactivarse, aunque algunas no del todo.

Es el proceso por el cual una semilla colocada en un medio ambiente, se convierte en una nueva planta.

¿Como ocurre el proceso? En la germinación el embrión se hincha, y la cubierta de la semilla se rompe. La radícula de la planta, en la punta del hipocotilo, es la primera parte del embrión que emerge o que sale de la cubierta seminal, forma la raíz primaria.

Actividad 9. Con las semillas recolectadas, ponerlas a germinar y observar el proceso de germinación, hacer una narración del proceso.

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Al fijarse esta raíz primaria al suelo, el epicotilo, emerge y empieza a desarrollarse en el joven vástago de la planta.

Los cotiledones permanecen en el suelo o serán llevados al aire por el crecimiento hacia arriba de la parte superior del hipocotilo.

Los cotiledones podrán permanecer en la planta durante varias semanas y algunas veces, se convierten en órganos verdes manufactureros de alimento a la manera de plantas o bien se marchitan y caen poco después de la germinación cuando sus reservas de alimento están reservadas.

El simple hecho de que una semilla absorbe agua, se hinche y desarrolle una pequeña raíz, no garantiza que ésta continúe creciendo y llegue a formar una planta adulta. Estas pueden solamente tener vigor suficiente para formar una raíz, o puede empezar a formar un rebrote y después morir.

Factores que afectan la germinación:

Factores internos (intrínsecos): propios de la semilla; madurez y viabilidad de las semillas.

Madurez de las semillas. Decimos que una semilla es madura cuando ha alcanzado su completo desarrollo desde el punto de vista morfológico como fisiológico. La madurez morfológica se consigue cuando las distintas estructuras de la semilla han completado su desarrollo, dándose por finalizada cuando el

Factores externos (extrínsecos): dependen del ambiente; agua, temperatura y gases.

Entre los factores ambientales más importantes que inciden en el proceso de germinación destacamos: humedad, temperatura y gases.

Humedad La absorción de agua es el primer paso y el más importante que tiene lugar durante la germinación; para que la semilla recupere su metabolismo es necesaria la rehidratación de sus tejidos..

Aunque es necesaria el agua para la rehidratación de las semillas, un exceso de la misma actuaría desfavorablemente para la germinación pues dificultaría la llegada de oxígeno al embrión.

Temperatura Es un factor decisivo en el proceso de la germinación, ya que influye sobre las enzimas que regulan la velocidad de las reacciones bioquímicas que ocurren en la semilla después de la rehidratación La temperatura mínima sería por debajo de la cual la germinación no se produce, y la máxima por encima de la cual se anula igualmente el proceso. La temperatura óptima, intermedia entre ambas, puede definirse como la más adecuada para conseguir el mayor porcentaje de germinación en el menor tiempo posible.

Las semillas de especies tropicales suelen germinar mejor a temperaturas elevadas, superiores a 25 ºC. Las máximas temperaturas están entre 40 ºC y 50 ºC (Cucumis sativus, pepino, 48 ºC). Sin embargo, las semillas de las especies de las zonas frías germinan mejor a temperaturas bajas, entre 5 ºC y 15 ºC.

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 18

Gases. La mayor parte de las semillas requieren para su germinación un medio suficientemente aireado que permita una adecuada disponibilidad de O2 y CO2. De esta forma el embrión obtiene la energía imprescindible para mantener sus actividades metabólicas. La mayoría de las semillas germinan bien en atmósfera normal con 21% de O2 y un 0.03% de CO2. Sin embargo, existen algunas semillas que aumentan su porcentaje de germinación al disminuir el contenido

de O2 por debajo del 20 %.

1.1.7. MANEJO DE SEMILLAS.

Calidad de semillas

En casi todos los países, las leyes obligan a los distribuidores a analizar la viabilidad y la pureza de las semillas antes de comercializarlas. Para ello se toma una muestra de cierto número de semillas y se colocan en un medio favorable para su desarrollo; el porcentaje de semillas viables de la muestra analizada constituye el índice de viabilidad de todas las semillas del mismo lote.

El análisis de las semillas garantiza también la comercialización de semillas fieles al tipo, es decir, que no difieren de la variedad deseada.

¿Cómo se puede saber si una semilla es buena?

La semilla buena siempre presenta grano o cariópside grande bien desarrollada. La reserva de alimento en la semilla no es más que el combustible o "gasolina" que permite a las plántulas crecer rápidamente durante los primeros días de vida. Después las plantas tienen que valerse por sí solas para continuar su crecimiento y llegar a formar una planta adulta.

¿Cuándo debe cosecharse la semilla?

La cosecha de la semilla es también clave para obtener grano de buena calidad. Esta debe de hacerse siempre y cuando la semilla está madura. La planta produce alimentos de reserva que los envía al fruto o la semilla para almacenarlos en la fase final del crecimiento de la misma. Es por eso que la semilla más llena y pesada tiene mejor germinación y producen plantas más vigorosas.

En forma general entre más bajo es el contenido de humedad mayor es el tiempo que éstas permanecen vivas. Los niveles de humedad óptimos para la semilla son entre 12 y 15 %.

La prueba de germinación se debe de hacer cada año, antes de la siembra, para asegurarse que la calidad de la semilla es buena.

¿Cómo debe seleccionarse la semilla?

Para facilitar la siembra mecanizada se requieren semillas uniformes, esto es especialmente necesario en caso de siembra con sembradoras de precisión que

Actividad 10. Utilizando el texto realice un mapa conceptual del manejo que se les da a las semillas.

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 19

colocan la semilla una por una a la tierra. Para eso debe separarse la semilla en clases de diferentes tamaños. La presencia de semillas grandes y chicas en una sola partida dificulta el ajuste de la sembradora.

Una gran cantidad de cultivos entre ellos las hortalizas requieren una germinación en semilleros para su posterior desplante en el campo. La razón principal para el uso de almácigos es que la semilla de muchas hortalizas son bastantes pequeñas. Para una germinación y desarrollo uniforme, requiere una capa de tierra fina que difícilmente se puede obtener en toda superficie del campo.

Tratamiento de la semilla

Los principales tipos de tratamientos son tres:

• Desinfección de la semilla, es decir tratamientos con funguicidas, insecticidas y bactericidas.

• Recubrimiento de las semillas en distintos grados en diferentes materiales acompañados o no de aditivos diversos.

• Inoculación de gérmenes de diversos microorganismos.

Desinfección.

Gran parte de las semillas comerciales de plantas de cultivo suelen venderse ya desinfectadas. Esta desinfección puede tener dos fines: evitar la difusión de plagas y enfermedades (cuarentena) o defender los materiales genéticos que se van a multiplicar de la misma forma que si se tratase de cultivos comerciales.

Inoculación

La inoculación consiste en recubrir las semillas con algún material que sirve vehículos a gérmenes vivos de microorganismos capaces de favorecer el desarrollo de las plántulas o de las plantas adultas.

Inoculación con rhizobium

Los organismos más utilizados para la inoculación de semillas son diversas especies del género rhizobium que, como es bien conocido, forman nódulos simbióticos en las raíces de las leguminosas, facilitando su nutrición nitrogenada.

La inoculación se realiza con material elaborado por laboratorios especializados; este material

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 20

consiste, generalmente, en un sustrato de turba portador de gérmenes de sepas estirpes seleccionadas de las especies de rhizobium, propia de la planta que se va a inocular.

La inoculación con rhizobium solo se practica en algunas leguminosas, como la soya y el trébol, así como en la semilla de alfalfa destinada a sembrarse en zonas de nuevos regadíos.

Tratamientos especiales

Los tratamientos que se indican a continuación afectan al metabolismo de las semillas, bien sea en el momento de efectuar el tratamiento, o bien sea, en el momento de la siembra.

Escarificación

La escarificación tiene por objeto abrir vías para la entrada de agua en las semillas. También se escarifican las partes de semillas de leguminosas cultivadas, cuyo porcentaje de semillas duras es superior al máximo ya que en determinadas condiciones de cultivo y maduración estos porcentajes pueden ser altos.

Estratificación

La estratificación es práctica usual para la ruptura del letargo de numerosas semillas de plantas arbóreas forestales o frutales, aunque también se utilizan con semillas de plantas herbáceas.

1.1.8. SIEMBRA, GERMINACION Y LABORES CULTURALES.

La calidad de la semilla se valora por los siguientes factores: pureza, poder de germinación, peso específico y vigor.

Temperatura de germinación

Cada especie de planta demanda que el suelo tenga cierta temperatura para poder germinar, esta temperatura son distintas de unas plantas a otras en el caso de que el suelo no tenga esas temperaturas optimas, será necesario aplicar calor artificial para una rápida y buena germinación.

Temperaturas óptimas y mínimas para la germinación en algunos cultivos

CULTIVO TEMPERATURAS ÓPTIMAS DÍAS TEMPERATURA MÍNIMA DÍAS

Tomate 25-30°c 4-6 10°c 6-9

Chile bell 25-30°c 7-9 13°c 9-11

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 21

Berenjena 20-25°c 6-8 13°c 8-10

Pepino 30-35°c 3-4 10°c 5-7

Calabacín 20-30°c 3-4 10°c 5-7

Melón 28-30°c 3-4 10°c 5-7

sandia 30-35°c 3-4 10°c 5-7

Sustrato.

El sustrato que se utiliza en la siembra de hortalizas es de importación; existen diferentes marcas y presentaciones, cada técnico selecciona la marca que mejores resultados le ha brindado.

La humedad del sustrato es un factor clave en la germinación de la semilla en el caso de que el sustrato tenga poca humedad se incrementa el número de días para que la semilla inicie la germinación cuando la humedad es excesiva, el sustrato tiende a compactarse lo que dificulta la emergencia.

Llenado de charolas

La práctica del llenado de charolas debe observarse constantemente si la tierra se deja floja no tiene consistencia para una buena perforación, y con el mismo movimiento, la semilla puede quedar a mayor profundidad de lo normal. Por lo contrario, si la tierra queda muy dura compactada la perforación es inadecuada quedando la semilla en la superficie de la charola y puede ser arrastrada al momento del tapado.

Perforación del sustrato dentro de la charola

Existen maquinas con planchas especiales para perforar el sustrato; en algunas partes se utiliza una especie de rodillo, en ocasiones, a cambiar el tipo de charolas se ajustan partes de la máquina para que la perforación quede en el centro de la cavidad, y tener así una buena colocación de la semilla.

Proceso de siembra

La siembra se realiza manualmente, colocándose una semilla por cavidad, algunos técnicos usan un producto en polvo (biozyme), para que la semilla se resbale con más facilidad y no se pegue con el sudor de la mano al momento de sembrar.

Tapado de charolas.

Después de la siembra se procede a tapar las charolas con vermiculita, este material se debe uniformizar, dejando una capa delgada, para evitar problemas posteriores, la charola ya tapada, se pasa por un sistema mecánico, a través de una fina aspersión que varía de acuerdo con el tipo de charola utilizada para una de 200 cavidades de 2.5 pulgadas de profundidad, la presión del agua espejada será de 30

Actividad 11. De acuerdo con el texto, realizar la siembra manual de semillas.

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 22

libras cuando se trate de una charola de 338 cavidades y de 1¾ de pulgadas de profundidad, la presión será de 20 libras. Esto es debido a que la charola es más delgada y no tiene capacidad para absorber esa cantidad de agua, lo que eliminaría la vermiculita y dejaría la semilla expuesta.

Estiba de charolas

En el momento en que sale cada charola tapada y mojada, se va colocando sobre una parrilla de 6 en 6, tratando de amarrarlas o cruzarlas para que no se muevan durante su transporte al invernadero.

Proceso de desarrollo de la plántula

Unos días antes de que inicie la siembra, los invernaderos son totalmente aseados y desinfectados, para cuando se presente el momento de extender las charolas todo esté listo, también se coloca la malla sombra la cual varía de acuerdo al cultivo., en el chile se utiliza una de 80% y en el tomate de 60% el tiempo que dura la malla sombra depende del cultivo, condiciones ambientales y tipo de plástico del invernadero.

El tiempo perfecto para extender las charolas, es cuando empieza a puntear a formarse el bastoncito, de lo contrario, la planta se dobla y al moverse bruscamente la charola corre el riego de romperla, para evitar esto, se debe revisar constantemente las charolas, tomando en cuenta el cultivo, la temperatura, el número de parrilla y la hora de siembra.

Las charolas se extienden una por una, tratando de levantarlas; no se debe de arrastrar para evitar ruptura de plántula.

Acomodo de charolas

Después de extender todas las charolas se van acomodando para que todas permanezcan parejas y las orillas no queden secas.

Manejo de riego

Antes de dar el primer riego a las charolas, dentro del invernadero, se revisan los cedazos, boquillas y mangueras del carro de riego es recomendable que el técnico encargado del invernadero realice el primer riego para que pueda corregir posibles errores desde el principio como son: fugas, boquillas mal colocadas o tapadas, altura del aguijón de riego, posición de las charolas, etc.

El primer riego es saturado, para uniformizar la humedad de las charolas, los riegos subsecuentes dependen del cultivo, tipo de charola, malla sombra y temperatura la cantidad de agua suministrada, se puede calcular con el peso de la charola, por la humedad del suelo, por escurrimiento del agua o, en un momento dado, por el aspecto de la planta.

Manejo de fertilización

En los primeros días de desarrollo de la plántula, se riega sin fertilizante, al séptimo día la fertilización en cada riego, evitando hasta donde sea posible la utilización de nitrógeno en grandes cantidades el agua de riego, con una solución

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 23

de fertilizante, debe tener un ph de 6.5 a 7 al salir en el carro de riego del invernadero.

Plagas y enfermedades

Las plagas económicamente más importantes son: los pulgones, la mosquita blanca, gusanos minadores, y pájaros.

Las otras plagas son fáciles de controlar mediante un programa de aplicaciones con productos específicos para cada problema, la inspección diaria de los invernaderos es básica para evitar la presencia de alguna plaga, que se pueda convertir en problema.

Las enfermedades más frecuentes son: el damping off, pytium, pytophthora, rhizonctonia, alternaria y pseudo monas algunas pueden controlarse con productos químicos o bien por las condiciones del ambiente dentro del invernadero, como pueden ser la temperatura y la humedad relativa.

Actividad 12. Ver video de “siembra mecánica de charolas, hacer una narración comparando con siembra manual destacando ventajas.

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 24

Evaluación Evaluación Evaluación Evaluación DIAGNOSTICA.DIAGNOSTICA.DIAGNOSTICA.DIAGNOSTICA.

Contesta con (V) en caso de los enunciados sean verdaderos o (F) si son falsos, esta actividad es solo de diagnóstico, no te preocupes, ¡adelante!.

1. La reproducción asexual es, formación de un nuevo individuo a partir de células

( )

2. Los vertebrados se reproducen asexualmente ( )

3. En la reproducción asexual se originan nuevos seres a partir de brotes

( )

4. La reproducción asexual se origina de la división celular ( )

5. En la reproducción asexual se requieren dos células ( )

6. EL lagarto se puede reproducir asexualmente ( )

7. En la reproducción asexual se requiere fecundación ( )

8. La reproducción asexual se lleva a cabo por polinización ( )

9.-En la reproducción asexual se requiere de un óvulo y un espermatozoide.

( )

10. La reproducción asexual se presenta en los humanos. ( )

Si solamente tuviste de 1 a 2 errores, te felicito, tienes muchos conocimientos previos para iniciar este tema.

Si te equivocaste 3 a 4 veces en tus respuestas, te invitamos a que no pierdas detalle del tema ya que requerirás de más esfuerzo.

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 25

1.2. REPRODUCCIÓN ASEXUAL

La reproducción asexual, también llamada reproducción vegetativa, consiste en que de un organismo se desprende una sola célula o trozos del cuerpo de un individuo ya desarrollado que, por procesos mitóticos, son capaces de formar un individuo completo genéticamente idéntico a él. Se lleva a cabo con un solo progenitor y sin la intervención de los núcleos de las células sexuales o gametos.

Ventajas e inconvenientes de la reproducción asexual

Entre las ventajas biológicas que conlleva están su rapidez de división y su simplicidad, pues no tienen que producir células sexuales, ni tienen que gastar energía en las operaciones previas a la fecundación. De esta forma un individuo aislado puede dar lugar a un gran número de descendientes, por medios como la formación asexual de esporas, la fisión transversal, o la gemación; facilitándose la colonización rápida de nuevos territorios. Así, algunos organismos se reproducen asexualmente cuando las condiciones ambientales son favorables, mientras que lo hace sexualmente cuando son adversas.

En cambio, presenta la gran desventaja de producir una descendencia sin variabilidad genética, clónica, al ser todos genotípicamente equivalentes a su parental y entre sí. La selección natural no puede "elegir" los individuos mejor adaptados (ya que todos lo están por igual) y estos individuos clónicos puede que no logren sobrevivir a un medio que cambie de modo hostil, pues no poseen la información genética necesaria para adaptarse a este cambio. Por lo tanto esa especie podría desaparecer, salvo que haya algún individuo portador de una combinación genética que le permita adaptarse al nuevo medio.

1.2.1. MITOSIS

La mitosis es el tipo de división celular por el cual se conservan los orgánulos y la información genética contenida en sus cromosomas, que pasa de esta manera a las células hijas resultantes de la mitosis. La mitosis es igualmente un verdadero proceso de multiplicación celular que participa en el desarrollo, el crecimiento y la regeneración del organismo. Este proceso tiene lugar por medio de una serie de operaciones sucesivas que se desarrollan de una manera continua, y que para facilitar su estudio han sido separadas en varias etapas.

El resultado esencial de la mitosis es la continuidad de la información hereditaria de la célula madre en cada una de las dos células hijas.

Actividad 13. Ver video “Enseñanza de la biología: división celular mitosis UPL IPB y realizar un resumen http://www.youtube.com/watch?v=75dnb90Zxyg&feature=channel

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 26

Fases del ciclo celular

La división de las células eucarióticas es parte de un ciclo vital continuo, el ciclo celular, en el que se distinguen dos períodos mayores, la interfase, durante la cual se produce la duplicación del ADN, y la mitosis, durante la cual se produce el reparto idéntico del material antes duplicado. La mitosis es una fase relativamente corta en comparación con la duración de la interfase.

Interfase

La célula está ocupada en la actividad metabólica preparándose para la mitosis (las próximas cuatro fases que conducen e incluyen la división nuclear). Los cromosomas no se disciernen claramente en el núcleo, aunque una mancha oscura llamada nucleolo, puede ser visible. La célula puede contener un centrosoma con un par de centriolos (o centros de organización de microtúbulos en los vegetales) los cuales son sitios de organización para los microtúbulos.

Profase: Los dos centros de origen de los microtúbulos (en verde) son los centrosomas. La cromatina ha comenzado a condensarse y se observan las cromátidas (en azul). Las estructuras en color rojo son los cinetocoros. (Micrografía obtenida utilizando marcajes fluorescentes).

Es la fase más larga de la mitosis. Se produce en ella la condensación del material genético (ADN, que en interfase existe en forma de cromatina), para formar unas estructuras altamente organizadas, los cromosomas.

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 27

Como el material genético se ha duplicado previamente durante la fase S, los cromosomas replicados están formados por dos cromátidas, unidas a través del centrómero por moléculas de cohesinas.

Además, durante esta fase se inicia la formación del huso mitótico bipolar.

Uno de los hechos más tempranos de la profase en las células animales es duplicación del centrosoma; los dos centrosomas hijos (cada uno con dos centriolos) migran entonces hacia extremos opuestos de la célula. Los centrosomas actúan como centros organizadores de microtúbulos, controlando la formación de unas estructuras fibrosas, los microtúbulos, mediante la polimerización de tubulina soluble. De esta forma, el huso de una célula mitótica tiene dos polos que emanan microtúbulos.

En la profase tardía desaparece el nucléolo y se desorganiza la envoltura nuclear.

Prometafase: La membrana nuclear se ha disuelto, y los microtúbulos (verde) invaden el espacio nuclear. Los microtúbulos pueden anclar cromosomas (azul) a través de los cinetocoros (rojo) o interactuar con microtúbulos emanados por el polo opuesto.

La membrana nuclear se desensambla y los microtúbulos invaden el espacio nuclear. Esto se denomina mitosis abierta, y ocurre en una pequeña parte de los organismos multicelulares. Los hongos y algunos protistas, como las algas o las tricomonas, realizan una variación denominada mitosis cerrada, en la que el huso se forma dentro del núcleo o sus microtúbulos pueden penetrar a través de la membrana nuclear intacta.

Cada cromosoma ensambla dos cinetocoros hermanos sobre el centrómero, uno en cada cromátida. Un cinetocoro es una estructura proteica compleja a la que se anclan los microtúbulos. Aunque la estructura y la función del cinetocoro no se conoce completamente, contiene varios motores moleculares, entre otros componentes. Cuando un microtúbulo se ancla a un cinetocoro, los motores se activan, utilizando energía de la hidrólisis del ATP para "ascender" por el microtúbulo hacia el centrosoma de origen. Esta actividad motora, acoplada con la polimerización/despolimerización de los microtúbulos, proporcionan la fuerza de empuje necesaria para separar más adelante las dos cromátidas de los cromosomas. Cuando el huso crece hasta una longitud suficiente, los microtúbulos asociados a cinetocoros empiezan a buscar cinetocoros a los que anclarse. Otros microtúbulos no se asocian a cinetocoros, sino a otros microtúbulos originados en el centrosoma opuesto para formar el huso mitótico. La prometafase se considera a veces como parte de la profase.

Metafase: A medida que los microtúbulos encuentran y se anclan a los cinetocoros durante la prometafase, los centrómeros de los cromosomas se congregan en la "placa metafásica" o "plano ecuatorial", una línea imaginaria que es equidistante de los dos centrosomas que se encuentran en los dos polos del huso. Este alineamiento equilibrado en la línea media del huso se debe a las fuerzas iguales y opuestas que se generan por los cinetocoros hermanos. El nombre "metafase" proviene del griego µετα que significa "después."

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 28

Dado que una separación cromosómica correcta requiere que cada cinetocoro esté asociado a un conjunto de microtúbulos (que forman las fibras cinetocóricas), los cinetocoros que no están anclados generan una señal para evitar la progresión prematura hacia anafase antes de que todos los cromosomas estén correctamente anclados y alineados en la placa metafásica. Esta señal activa el checkpoint de mitosis.

Anafase: Cuando todos los cromosomas están correctamente anclados a los microtúbulos del huso y alineados en la placa metafásica, la célula procede a entrar en anafase (del griego ανα que significa "arriba", "contra", "atrás" o "re-").

Entonces tienen lugar dos sucesos. Primero, las proteínas que mantenían unidas ambas cromatidas hermanas (las cohesinas), son cortadas, lo que permite la separación de las cromátidas. Estas cromátidas hermanas, que ahora son cromosomas hermanos diferentes, son separados por los microtúbulos anclados a sus microtúbulos al desensamblarse, dirigiéndose hacia los centrosomas respectivos.

A continuación, los microtúbulos no asociados a cinetocoros se alargan, empujando a los centrosomas (y al conjunto de cromosomas que tienen asociados) hacia los extremos opuestos de la célula. Este movimiento parece estar generado por el rápido ensamblaje de los microtúbulos.

Estos dos estadios se denominan a veces anafase temprana (A) y anafase tardía (B). La anafase temprana viene definida por la separación de cromátidas hermanas, mientras que la tardía por la elongación de los microtúbulos que produce la separación de los centrosomas. Al final de la anafase, la célula ha conseguido separar dos juegos idénticos de material genético en dos grupos definidos, cada uno alrededor de un centrosoma.

La telofase (del griego τελος, que significa "finales") es la reversión de los procesos que tuvieron lugar durante profase y prometafase. Durante la telofase, los microtúbulos no unidos a cinetocoros continúan alargándose, estirando aún más la célula. Los cromosomas hermanos se encuentran cada uno asociado a uno de los polos. La membrana nuclear se reforma alrededor de ambos grupos cromosómicos, utilizando fragmentos de la membrana nuclear de la célula original. Ambos juegos de cromosomas, ahora formando dos nuevos núcleos, se descondensan de nuevo en cromatina. La cariocinesis ha terminado, pero la división celular aún no está completa.

Errores en la mitosis

Aunque los errores en la mitosis son bastante poco frecuentes, este proceso puede fallar, especialmente durante las primeras divisiones celulares en el cigoto. Los errores mitóticos pueden ser especialmente peligrosos para el organismo, porque el descendiente futuro de la célula madre defectuosa mantendrá la misma anomalía.

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 29

1.2.2. TEJIDOS Y DIFERENCIACION CELULAR

“Cuando la semilla germina todas las células del embrión están en división. Con el crecimiento de la planta las divisiones quedan restringidas a zonas concretas que quedan activas durante toda la vida de la planta. El resto de las células se diferencian y dan lugar a los distintos tejidos. Lo meristemos son regiones en donde se producen nuevas células, durante toda la vida de la planta, a través de procesos de división. Las células originadas por la división de las células meristemáticas sufrirán un proceso de diferenciación hasta transformarse en diferentes tipos de células. De este modo, los tejidos se diferencian como grupos de células organizadas estructural y funcionalmente. Todos aquellos tejidos constituidos por células que poseen capacidad de división reciben el nombre de tejidos meristemáticos. El meristemo apical, cambium vascular y felógeno son ejemplos de tejidos meristemáticos. El tejido meristemático se encuentra constituido por células de paredes primarias delgadas, con citoplasma denso y núcleo grande. Los meristemos permiten que se produzca el crecimiento del árbol en sentido longitudinal y diametral. El crecimiento longitudinal, también llamado crecimiento primario, se produce por la acción del meristemo apical; mientras que el crecimiento diametral o en grosor, también denominado crecimiento secundario, se produce por divisiones que ocurren en el cambium vascular y, en menor proporción, en el cambium cortical.

La existencia de meristemos es la diferenciación entre plantas y animales ya que estos solo crecen hasta la cuarta edad mientras que las plantas gracias a los meristemos crecen toda su vida.

La diferenciación es el proceso de crecimiento y especulación anatómica y funcional de las células. Los tejidos que se diferencian pasan de ser meristemáticos a embrionarios los tejidos adultos o maduros.

La totipontencionalidad es la capacidad de las células vegetales (siempre y cuando no hayan perdido el núcleo) de perder todas las diferenciaciones y volver a ser meristemáticos. Gracias a esto una sola célula puede regenerar una nueva planta siempre y cuando tenga los requisitos necesarios, que son:

• Separarle del medio donde se ha diferenciado.

• Proporcionarle los estímulos adecuados (hormonas vegetales).

Tipos de meristemos:

• Según su posición en la planta:

o Meristemos apicales: aparecen en los ápices de raíces, tallos… Son responsables del crecimiento en longitud.

o Meristemos laterales: aparecen en paralelo a la circunferencia del órgano que ocupan. Son responsables del crecimiento en grosor.

Actividad 14. Hacer un ensayo sobre la clonación.

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 30

o Meristemos intercalares: aparecen entre tejidos maduros y solos en determinados tipos de plantas. Ej.: caña de azúcar.

Características de las células meristemáticas:

• Son células pequeñas

• Pared primaria fina

• Forma regular (isodiamétricas)

• Muchas vacuolas y pequeñas

• Sin sustancias de reserva

• Plastos en formas inmaduras (protoplastos)

• Según su origen:

• Meristemo primario: proviene directamente de células que nunca han perdido su capacidad de división.

• Meristemo secundario: se origina a partir de células diferenciadas que nuevamente adquieren su capacidad de división.”

1.2.3. EL CAMBIUM GENERADOR DE CELULAS

“El cámbium es un tejido vegetal meristemático específico de las plantas leñosas, situado entre la corteza y el leño, compuesto normalmente por una capa única de células embrionarias. Cada año el cámbium origina dos capas de células adultas. La primera, hacia el interior, es de leño (xilema); éstas son las que forman la madera y se reconocen luego como anillos de crecimiento. La segunda, hacia afuera, es otro tipo de tejido el floema, que transporta savia elaborada en dirección a las raíces.

El cámbium es un meristemo primario remanente, formado por un rastro de células embrionarias derivadas del meristemo apical. Éste, situado en el extremo de crecimiento, deja detrás de él además tejidos adultos. El cámbium es responsable del crecimiento secundario en grosor de los tallos, pero no es un meristemo secundario, que es el que se forma por des diferenciación de células adultas, que recobran así su capacidad de multiplicarse.”

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 31

ActividadesActividadesActividadesActividades de aprendizajede aprendizajede aprendizajede aprendizaje

LISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJO

REPRODUCCIÓN DE PLANTAS

MAESTRO INSTITUCION

Centro de Bachillerato Tecnológico

Agropecuario No. 38

ALUMNO TEMA

1.1.1. Morfología de la flor.

SEMESTRE Y GRUPO FECHA DE APLICACION

III “A” agropecuario

Producto a evaluar: Actividad 1. Rompecabezas partes de la flor.

Indicadores Cumplimiento Ejecución Observaciones

Si No Ponderación Calif.

1 Lo entrego a tiempo. 2.00

2 La presentación del trabajo es

impecable.

2.00

3 Presenta todas sus partes. 2.00

4 Diferencia las partes de la flor. 2.00

5 Explica para que sirven cada una de

las partes de la flor.

2.00

Calificación de esta evaluación:

EVALUADOR Tabla de ponderación

1= Si cumplió 0 = No Cumplió

La calificación se obtiene multiplicando el

cumplimiento por la ponderación

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 32

LISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJO

REPRODUCCIÓN DE PLANTAS

MAESTRO INSTITUCION

Centro de Bachillerato Tecnológico

Agropecuario No. 38

ALUMNO TEMA

1.1.1. Morfología de la flor.

SEMESTRE Y GRUPO FECHA DE APLICACION

III “A” agropecuario

Producto a evaluar: Actividad 2. Investigar tipos de sexo de las flores.

Indicadores Cumplimiento Ejecución Observaciones

Si No Ponderación Calif.

1 Entregó puntualmente 1.00

2 Tiene buena presentación 1.00

3 El contenido corresponde al tema

investigado

2.00

4 Presenta un orden y secuencia

lógica

2.00

5 Elaboró conclusiones 2.00

6 Presenta buena ortografía 1.00

7 Presenta bibliografía consultada. 1.00

Calificación de esta evaluación:

EVALUADOR Tabla de ponderación

1= Si cumplió 0 = No Cumplió

La calificación se obtiene multiplicando el

cumplimiento por la ponderación

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 33

LISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJO

REPRODUCCIÓN DE PLANTAS

MAESTRO INSTITUCION

Centro de Bachillerato Tecnológico

Agropecuario No. 38

ALUMNO TEMA

1.1.2. La meiosis.

SEMESTRE Y GRUPO FECHA DE APLICACION

III “A” agropecuario

Producto a evaluar: Actividad 3. Canción.

Indicadores Cumplimiento Ejecución Observaciones

Si No Ponderación Calif.

1 Entrego puntualmente. 2.00

2 La letra corresponde al tema. 2.00

3 Tiene buena presentación. 2.00

4 La dicción es clara. 2.00

5 Posee ritmo 2.00

6

7

Calificación de esta evaluación:

EVALUADOR Tabla de ponderación

1= Si cumplió 0 = No Cumplió

La calificación se obtiene multiplicando el

cumplimiento por la ponderación

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 34

LISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJO

REPRODUCCIÓN DE PLANTAS

MAESTRO INSTITUCION

Centro de Bachillerato Tecnológico

Agropecuario No. 38

ALUMNO TEMA

1.1.3. La polinización

SEMESTRE Y GRUPO FECHA DE APLICACION

II “A” agropecuario

Producto a evaluar: Actividad 4. Elabora un cuadro sinóptico con el tema “Las diferentes formas de

polinización”.

Indicadores Cumplimiento Ejecución Observaciones

Si No Ponderación Calif.

1 Lo entrego puntualmente. 1.00

2 Presenta buena ortografía 1.00

3 Utiliza los datos fundamentales 2.00

4 Existe articulación entre los datos 2.00

5 Lleva una secuencia cronológica 2.00

6 Es fácilmente comprensible 2.00

Calificación de esta evaluación:

EVALUADOR Tabla de ponderación

1= Si cumplió 0 = No Cumplió

La calificación se obtiene multiplicando el

cumplimiento por la ponderación

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 35

COEVALUACIÓNCOEVALUACIÓNCOEVALUACIÓNCOEVALUACIÓN

REPRODUCCIÓN DE PLANTAS MAESTRO INSTITUCION

Centro de Bachillerato Tecnológico

Agropecuario No. 38

ALUMNO TEMA

1.1.4. Formación de frutos y semillas.

SEMESTRE Y GRUPO FECHA DE APLICACION

III “A” agropecuario

Actividad 5: Investigar tipos de frutos existentes y hacer una relación de especies por cada tipo de

fruto que encontremos en la región.

Indicadores Cumplimiento Ejecución Observaciones

Si No Ponderación Calif.

1 Entrego puntualmente. 1.00

2 Presenta buena ortografía. 1.00

3 Define que es un fruto 2.00

4 Determina como se forman los

frutos.

2.00

5 Detalla los aspectos relevantes de

cada tipo de fruto.

2.00

6 Determina que especies existen en

la región por tipo de fruto.

2.00

Calificación de esta evaluación:

EVALUADOR Tabla de ponderación

1= Si cumplió 0 = No Cumplió

La calificación se obtiene multiplicando el

cumplimiento por la ponderación

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 36

LISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJO

REPRODUCCIÓN DE PLANTAS MAESTRO INSTITUCION

Centro de Bachillerato Tecnológico

Agropecuario No. 38

ALUMNO TEMA

1.1.4. Formación de frutos y semillas.

SEMESTRE Y GRUPO FECHA DE APLICACION

III “A” agropecuario

Producto a evaluar: Actividad 6. Hacer un resumen del video Dispersión de semillas y esporas.

Indicadores Cumplimiento Ejecución Observaciones

Si No Ponderación Calif.

1 Entrego puntualmente. 2.00

2 Presenta buena ortografía. 2.00

3 Identifico la idea principal que se

expone.

2.00

4 Menciona la forma como se

dispersan las semillas.

2.00

5 De dos ejemplos de especies de

plantas.

2.00

Calificación de esta evaluación:

EVALUADOR Tabla de ponderación

1= Si cumplió 0 = No Cumplió

La calificación se obtiene multiplicando el

cumplimiento por la ponderación

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 37

GUIA DE OBSERVACIÓNGUIA DE OBSERVACIÓNGUIA DE OBSERVACIÓNGUIA DE OBSERVACIÓN

REPRODUCCIÓN DE PLANTAS MAESTRO INSTITUCION

Centro de Bachillerato Tecnológico

Agropecuario No. 38

ALUMNO TEMA

1.1.5. Morfología y fisiología de la semilla.

SEMESTRE Y GRUPO FECHA DE APLICACION

III “A” agropecuario

Desempeño a evaluar: Actividad 7. Recolectar semillas y hacer una descripción de ellas.

Indicadores Cumplimiento Ejecución Observaciones

Si No Ponderación Calif.

1 Entrego puntualmente. 1.00

2 Presenta limpieza y orden. 1.00

3 Selecciono frutos maduros. 2.00

4 Menciona claramente las

características físicas de las semillas.

2.00

5 Dibuja las semillas de un tamaño

aceptable.

2.00

6 Identifica nombre de la planta

donde se obtuvo la semilla.

2.00

Calificación de esta evaluación:

EVALUADOR Tabla de ponderación

1= Si cumplió 0 = No Cumplió

La calificación se obtiene multiplicando el

cumplimiento por la ponderación

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 38

GUIA DE OBSERVACIÓNGUIA DE OBSERVACIÓNGUIA DE OBSERVACIÓNGUIA DE OBSERVACIÓN

EL DESARROLLO SUSTENTABLE Y LA PRODUCCION AGROPECUARIA MAESTRO INSTITUCION

Centro de Bachillerato Tecnológico

Agropecuario No. 38

ALUMNO TEMA

1.1.5. Morfología y fisiología de la semilla.

SEMESTRE Y GRUPO FECHA DE APLICACION

III “A” agropecuario

Desempeño a evaluar: Actividad 8. Exposición de las partes de la semilla y su función.

Indicadores Cumplimiento Ejecución Observaciones

Si No Ponderación Calif.

1 Existe organización, orden y trabajo

en equipo.

2.00

2 Muestran dominio del tema. 2.00

3 Los contenidos del tema fueron

expuestos con orden y claridad.

2.00

4 Contestaron correctamente las

preguntas de sus compañeros y

maestro.

2.00

5 Al hacer la exposición usaron

adecuadamente los recursos

didácticos.

2.00

Calificación de esta evaluación:

EVALUADOR Tabla de ponderación

1= Si cumplió 0 = No Cumplió

La calificación se obtiene multiplicando el

cumplimiento por la ponderación

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 39

LISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJO

REPRODUCCIÓN DE PLANTAS MAESTRO INSTITUCION

Centro de Bachillerato Tecnológico

Agropecuario No. 38

ALUMNO TEMA

1.1.6. El proceso de germinación.

SEMESTRE Y GRUPO FECHA DE APLICACION

III “A” agropecuario

Producto a evaluar: Actividad 9. Hacer una narración de la germinación de la semilla.

Indicadores Cumplimiento Ejecución Observaciones

Si No Ponderación Calif.

1 Entrego puntualmente. 1.00

2 Presenta limpieza y orden. 1.00

3 Presenta información técnica del

proceso de germinación.

2.00

4 Presenta un planteamiento,

desarrollo y conclusión.

2.00

5 El lenguaje es claro y preciso. 2.00

6 Presenta un orden lógico y

cronológico del proceso.

2.00

Calificación de esta evaluación:

EVALUADOR Tabla de ponderación

1= Si cumplió 0 = No Cumplió

La calificación se obtiene multiplicando el

cumplimiento por la ponderación

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 40

LISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJO

REPRODUCCIÓN DE PLANTAS MAESTRO INSTITUCION

Centro de Bachillerato Tecnológico

Agropecuario No. 38

ALUMNO TEMA

1.1.7. Manejo de semillas.

SEMESTRE Y GRUPO FECHA DE APLICACION

III “A” agropecuario

Producto a evaluar: Actividad 10. Mapa conceptual del tema el manejo de las semillas.

Indicadores Cumplimiento Ejecución Observaciones

Si No Ponderación Calif.

1 Entrego puntualmente. 1.00

2 Presenta limpieza y orden. 1.00

3 El mapa incluye conectores. 2.00

4 La información tiene secuencia

lógica.

2.00

5 Determina cuando las semillas son

de calidad.

2.00

6 Menciona que tratamientos se le da

a la semilla.

2.00

Calificación de esta evaluación:

EVALUADOR Tabla de ponderación

1= Si cumplió 0 = No Cumplió

La calificación se obtiene multiplicando el

cumplimiento por la ponderación

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 41

GUIA DE OBSERVACIONGUIA DE OBSERVACIONGUIA DE OBSERVACIONGUIA DE OBSERVACION

REPRODUCCIÓN DE PLANTAS MAESTRO INSTITUCION

Centro de Bachillerato Tecnológico

Agropecuario No. 38

ALUMNO TEMA

1.1.8. Siembra, germinación y labores

culturales.

SEMESTRE Y GRUPO FECHA DE APLICACION

III “A” agropecuario

Desempeño a evaluar: Actividad 11. Siembra de almácigos.

Indicadores Cumplimiento Ejecución Observaciones

Si No Ponderación Calif.

1 Presenta limpieza y orden. 1.00

2 Selecciono el almacigo adecuado de

acuerdo al tipo de siembra.

1.00

3 El sustrato quedo en condiciones

adecuadas para la siembra.

1.00

4 El llenado de la charola es el

correcto.

2.00

5 La siembra la realiza en la

profundidad adecuada.

2.00

6 Utiliza el sustrato adecuado para el

tapado de la charola.

2.00

7 Efectúa el riego en la cantidad de

agua aceptable para su

germinación.

1.00

Calificación de esta evaluación:

EVALUADOR Tabla de ponderación

1= Si cumplió 0 = No Cumplió

La calificación se obtiene multiplicando el

cumplimiento por la ponderación

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 42

LISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJO

REPRODUCCIÓN DE PLANTAS MAESTRO INSTITUCION

Centro de Bachillerato Tecnológico

Agropecuario No. 38

ALUMNO TEMA

1.1.8. Siembra, germinación y labores

culturales.

SEMESTRE Y GRUPO FECHA DE APLICACION

III “A” agropecuario

Producto: Actividad 12. Hacer una narración de video “La siembra mecánica de almácigos” y

comparar con siembra manual destacando ventajas.

Indicadores Cumplimiento Ejecución Observaciones

Si No Ponderación Calif.

1 Entrego puntualmente. 1.00

2 Presenta limpieza y orden. 1.00

3 Presenta información técnica del

proceso de siembra.

2.00

4 Presenta un planteamiento,

desarrollo y conclusión.

2.00

5 El lenguaje es claro y preciso. 2.00

6 Presenta un orden lógico y

cronológico del proceso.

2.00

Calificación de esta evaluación:

EVALUADOR Tabla de ponderación

1= Si cumplió 0 = No Cumplió

La calificación se obtiene multiplicando el

cumplimiento por la ponderación

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 43

LILILILISTA DE COTEJOSTA DE COTEJOSTA DE COTEJOSTA DE COTEJO

REPRODUCCIÓN DE PLANTAS MAESTRO INSTITUCION

Centro de Bachillerato Tecnológico

Agropecuario No. 38

ALUMNO TEMA

1.2.1. Mitosis.

SEMESTRE Y GRUPO FECHA DE APLICACION

III “A” agropecuario

Producto a evaluar: Actividad 13. Hacer un resumen del video “Enseñanza de la biología: división

celular mitosis UPL IPB”.

Indicadores Cumplimiento Ejecución Observaciones

Si No Ponderación Calif.

1 Entrego puntualmente. 2.00

2 Presenta buena ortografía. 2.00

3 Identifico la idea principal que se

expone.

2.00

4 Menciona las fases de la mitosis. 2.00

5 Menciona como se da la división

celular.

2.00

Calificación de esta evaluación:

EVALUADOR Tabla de ponderación

1= Si cumplió 0 = No Cumplió

La calificación se obtiene multiplicando el

cumplimiento por la ponderación

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 44

RUBRICARUBRICARUBRICARUBRICA

REPRODUCCIÓN DE PLANTAS MAESTRO INSTITUCION Centro de Bachillerato Tecnológico

Agropecuario No. 38 ALUMNO TEMA 1.2.2. Tejidos y diferenciación celular. SEMESTRE Y GRUPO FECHA DE APLICACION III “A” agropecuario

Producto a evaluar: Actividad 14. Hacer un ensayo del tema “La clonación.” Aspectos a evaluar: El ensayo debe cumplir con los siguientes puntos:

• Presentación.

• Introducción.

• Desarrollo.

• Conclusiones.

• Bibliografía. El trabajo debe entregarse sin faltas de ortografía, buena redacción y con una extensión de 5 cuartillas aproximadamente, en la fecha y hora pactada.

Aspectos a evaluar

Excelente 4 puntos

Bueno 3 puntos

Regular 2 puntos

Deficiente 1 puntos

Puntuación.

Fecha de entrega Entrega el trabajo el día y hora acordada.

Entregan el día, pero no a la hora acordada.

Entregan un día después.

Entregan dos días después o más del tiempo indicado.

Contenido Muestra la información de manera clara, utilizando medios escritos y gráficos.

Muestra la información de forma parcial.

Muestra la información de manera confusa.

Muestra la información incompleta Y sin claridad.

Cuerpo/estructura Integración

Contiene el ensayo todos los elementos solicitados.

Contiene el ensayo la mayoría de los elementos solicitados.

Contiene el ensayo algunos de los elementos solicitados.

Contiene solo uno o dos de los elementos solicitados.

Originalidad Presenta el trabajo originalidad, e incluye ejemplos y opiniones personales.

Presenta el trabajo originalidad con pocos ejemplos y opiniones personales.

Presenta el trabajo en su mayoría información pero incluye ejemplos y opiniones personales.

Presenta el trabajo información copiada o bajada de internet en su totalidad, no presenta ejemplos ni opiniones personales.

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 45

Redacción, ortografía y orden.

Entrega un trabajo sin faltas de ortografía, organizado.

Entrega el trabajo con pocas faltas de ortografía y organizado.

Entrega el trabajo con algunas faltas de ortografía y mínima organización.

Entrega el trabajo con demasiadas faltas de ortografía y nula organización.

Trabajo en equipo.

Manifiesta el equipo organización, gran interés y entusiasmo.

Manifiesta el equipo gran interés y organización.

Manifiesta el equipo poco interés y organización.

Manifiesta el equipo apatía.

Observaciones

generales. Porcentaje de competencia logrado

Juicio de competencia

( ) Competente

( ) Todavía no competente

EVALUADOR FIRMA DEL ALUMNO LUGAR Y FECHA DE APLICACIÓN

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 46

II.

Estructuras y medios de cultivo para la

propagación vegetal.

2.1.

El sustrato como medio de

propagación

2.1.1.

Materiales orgánicos e

inorgánicos.

2.1.2.

Estructuras para la reproducción de

plantas.

2.1.2.1.

Almácigos, bancales y camas de

siembra.

2.1.2.2.

Invernaderos.

2.1.2.3.

Sombreaderos.

2.1.2.4.

Camas de crecimiento

Se utiliza

Existen Es usado en

Como

También en

Además de

Y

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 47

Evaluación Evaluación Evaluación Evaluación DIAGNOSTICA.DIAGNOSTICA.DIAGNOSTICA.DIAGNOSTICA.

1.- Material orgánico e inorgánico que es utilizado como sostén de las raíces de las plantas, diferente del suelo.

a) Sustrato b) Tierra c) Agua

2.- Las pajas de trigo, estiércol, hojarascas, aserrín, son considerados como materiales:

a) Inorgánicos b) Inertes c) Orgánicos

3.- Los materiales como perlita, vermiculita, grava, arenas, son considerados como:

a) Orgánicos b) Inorgánicos c) Sólidos

4.- Espacio dedicado a la producción de plantas, que permanece cubierto de plástico y el ambiente es controlado.

a) Vivero b) Invernadero c) Sombreadero.

5.- Lugar donde se germinan semillas y se les dan cuidados especiales a las plántulas de riego, fertilización y control de plagas, antes de llevarlas al lugar definitivo.

a) Almacigo b) Invernadero c) Vivero

6.- Lugar dedicado al desarrollo de plantas en el vivero, antes de ser llevados al trasplante.

a) Cama de siembra b) Cama de crecimiento c) Camas frías

7.- Es una estructura, generalmente de madera cubierta con malla sombra donde se producen y desarrollan plantas, preferentemente de ornato y forestales.

a) Invernadero b) Almacigo c) Vivero

8.- Almacigo donde obtenemos plantas que al sacarlas lleva el sustrato cubriendo sus raíces y es muy usado para la producción de hortalizas.

a) Charolas de hielo seco b) Almacigo fijo c) semillero temporal

9.- Por su capacidad de almacenar grandes cantidades en un espacio reducido, este envase es utilizado para la germinación y desarrollo de plantas en el vivero.

a) Botellas de plástico b) Bolsas de polietileno negra

c) Latas de aceite

10.- Los almácigos que se construyen en el lugar adecuado y nunca son removidos de ese lugar del vivero, son conocidos como:

a) Almacigo temporal b) Almacigo permanente c) Almacigo semi fijo

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 48

2. ESTRUCTURAS Y MEDIOS DE PROPAGACION DE PLANTAS.

2.1. EL SUSTRATO COMO MEDIO DE PROPAGACION.

“Un sustrato es todo material sólido distinto del suelo, natural, de síntesis o residual, mineral u orgánico, que, colocado en un contenedor, en forma pura o en mezcla, permite el anclaje del sistema radicular de la planta, desempeñando, por tanto, un papel de soporte para la planta. El sustrato puede intervenir o no en el complejo proceso de la nutrición mineral de la planta.”

Tipos de sustratos de cultivo

Propiedades físicas.

a) porosidad.

Es el volumen total del medio no ocupado por las partículas sólidas, y por tanto, lo estará por aire o agua en una cierta proporción. Su valor óptimo no debería ser inferior al 80-85 %, aunque sustratos de menor porosidad pueden ser usados ventajosamente en determinadas condiciones.

La porosidad debe ser abierta, pues la porosidad ocluida, al no estar en contacto con el espacio abierto, no sufre intercambio de fluidos con él y por tanto no sirve como almacén para la raíz. El menor peso del sustrato será el único efecto positivo. El espacio o volumen útil de un sustrato corresponderá a la porosidad abierta.

El grosor de los poros condiciona la aireación y retención de agua del sustrato. Poros gruesos suponen una menor relación superficie/volumen, por lo que el equilibrio tensión superficial/fuerzas

gravitacionales se restablece cuando el poro queda solo parcialmente lleno de agua, formando una película de espesor determinado.

El equilibrio aire/agua se representa gráficamente mediante las curvas de humectación. Se parte de un volumen unitario saturado de agua y en el eje de ordenadas se representa en porcentaje el volumen del material sólido más el volumen de porosidad útil. Se le somete a presiones de succión creciente, expresadas en centímetros de columnas de agua, que se van anotando en el eje de abcisas. A cada succión corresponderá una extracción de agua cuyo volumen es reemplazado por el equivalente de aire. De modo que a un valor de abcisas corresponde una ordenada de valor igual al volumen del material sólido más el volumen de aire. El volumen restante hasta el 100 % corresponde al agua que aún retiene el sustrato.

Actividad 15. De acuerdo con el texto, prepara una exposición en power point y presentar al grupo, se calificara con guía de observacion.

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 49

B) densidad.

La densidad de un sustrato se puede referir bien a la del material sólido que lo compone y entonces se habla de densidad real, o bien a la densidad calculada considerando el espacio total ocupado por los componentes sólidos más el espacio poroso, y se denomina porosidad aparente.

La densidad real tiene un interés relativo. Su valor varía según la materia de que se trate y suele oscilar entre 2,5-3 para la mayoría de los de origen mineral. La densidad aparente indica indirectamente la porosidad del sustrato y su facilidad de transporte y manejo. Los valores de densidad aparente se prefieren bajos (0,7-01) y que garanticen una cierta consistencia de la estructura.

C) estructura.

Puede ser granular como la de la mayoría de los sustratos minerales o bien fibrilares. La primera no tiene forma estable, acoplándose fácilmente a la forma del contenedor, mientras que la segunda dependerá de las características de las fibras. Si son fijadas por algún tipo de material de cementación, conservan formas rígidas y no se adaptan al recipiente pero tienen cierta facilidad de cambio de volumen y consistencia cuando pasan de secas a mojadas.

D) granulometría.

El tamaño de los gránulos o fibras condiciona el comportamiento del sustrato, ya que además de su densidad aparente varía su comportamiento hídrico a causa de su porosidad externa, que aumenta de tamaño de poros conforme sea mayor la granulometría.

Propiedades químicas.

La reactividad química de un sustrato se define como la transferencia de materia entre el sustrato y la solución nutritiva que alimenta las plantas a través de las raíces. Esta transferencia es recíproca entre sustrato y solución de nutrientes y puede ser debida a reacciones de distinta naturaleza:

a) Químicas. Se deben a la disolución e hidrólisis de los propios sustratos y pueden provocar:

• Efectos fitotóxicos por liberación de iones H+ y OH- y ciertos iones metálicos como el Co+2.

• Efectos carenciales debido a la hidrólisis alcalina de algunos sustratos que provoca un aumento del pH y la precipitación del fósforo y algunos microelementos.

• Efectos osmóticos provocados por un exceso de sales solubles y el consiguiente descenso en la absorción de agua por la planta.

b) Físico-químicas. Son reacciones de intercambio de iones. Se dan en sustratos con contenidos en materia orgánica o los de origen arcilloso (arcilla expandida) es decir, aquellos en los que hay cierta capacidad de intercambio catiónico (C.I.C.).

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 50

Estas reacciones provocan modificaciones en el pH y en la composición química de la solución nutritiva por lo que el control de la nutrición de la planta se dificulta.

c) Bioquímicas. Son reacciones que producen la biodegradación de los materiales que componen el sustrato. Se producen sobre todo en materiales de origen orgánico, destruyendo la estructura y variando sus propiedades físicas. Esta biodegradación libera CO2 y otros elementos minerales por destrucción de la materia orgánica.

Normalmente se prefieren son sustratos inertes frente a los químicamente activos. La actividad química aporta a la solución nutritiva elementos adicionales por procesos de hidrólisis o solubilidad. Si éstos son tóxicos, el sustrato no sirve y hay que descartarlo, pero aunque sean elementos nutritivos útiles entorpecen el equilibrio de la solución al superponer su incorporación un aporte extra con el que habrá que contar, y dicho aporte no tiene garantía de continuidad cuantitativa (temperatura, agotamiento, etc). Los procesos químicos también perjudican la estructura del sustrato, cambiando sus propiedades físicas de partida.

Propiedades biológicas.

Cualquier actividad biológica en los sustratos es claramente perjudicial. Los microorganismos compiten con la raíz por oxígeno y nutrientes. También pueden degradar el sustrato y empeorar sus características físicas de partida. Generalmente disminuye su capacidad de aireación, pudiéndose producir asfixia radicular. La actividad biológica está restringida a los sustratos orgánicos y se eliminarán aquellos cuyo proceso degradativo sea demasiado rápido.

Así las propiedades biológicas de un sustrato se pueden concretar en:

a) Velocidad de descomposición.

La velocidad de descomposición es función de la población microbiana y de las condiciones ambientales en las que se encuentre el sustrato. Esta puede provocar deficiencias de oxígeno y de nitrógeno, liberación de sustancias fitotóxicas y contracción del sustrato. La disponibilidad de compuestos biodegradables (carbohidratos, ácidos grasos y proteínas) determina la velocidad de descomposición.

b) Efectos de los productos de descomposición.

Muchos de los efectos biológicos de los sustratos orgánicos se atribuyen a los ácidos húmicos y fúlvicos, que son los productos finales de la degradación biológica de la lignina y la hemicelulosa. Una gran variedad de funciones vegetales se ven afectadas por su acción.

c) Actividad reguladora del crecimiento.

Es conocida la existencia de actividad auxínica en los extractos de muchos materiales orgánicos utilizados en los medios de cultivo.

Características del sustrato ideal.

El mejor medio de cultivo depende de numerosos factores como son el tipo de material vegetal con el que se trabaja (semillas, plantas, estacas, etc.), especie

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 51

vegetal, condiciones climáticas, sistemas y programas de riego y fertilización, aspectos económicos, etc.

Para obtener buenos resultados durante la germinación, el enraizamiento y el crecimiento de las plantas, se requieren las siguientes características del medio de cultivo:

a) Propiedades físicas:

• Elevada capacidad de retención de agua fácilmente disponible.

• Suficiente suministro de aire.

• Distribución del tamaño de las partículas que mantenga las condiciones anteriores.

• Baja densidad aparente.

• Elevada porosidad.

• Estructura estable, que impida la contracción (o hinchazón del medio).

b) Propiedades químicas:

• Baja o apreciable capacidad de intercambio catiónico, dependiendo de que la fertirrigación se aplique permanentemente o de modo intermitente, respectivamente.

• Suficiente nivel de nutrientes asimilables.

• Baja salinidad.

• Elevada capacidad tampón y capacidad para mantener constante el pH.

• Mínima velocidad de descomposición.

c) Otras propiedades.

• Libre de semillas de malas hierbas, nematodos y otros patógenos y sustancias fitotóxicas.

• Reproductividad y disponibilidad.

• Bajo coste.

• Fácil de mezclar.

• Fácil de desinfectar y estabilidad frente a la desinfección.

• Resistencia a cambios externos físicos, químicos y ambientales.

2.1.1. MATERIALES ORGANICOS E INORGANICOS.

Existen diferentes criterios de clasificación de los sustratos, basados en el origen de los materiales, su naturaleza, sus propiedades, su capacidad de degradación, etc.

Actividad 16. Investigar mezclas de sustratos, traer sustratos y realizar mezclas, se calificara con lista de cotejo.

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 52

Según sus propiedades.

• Sustratos químicamente inertes. Arena granítica o silícea, grava, roca volcánica, perlita, arcilla expandida, lana de roca, etc.

• Sustratos químicamente activos. Turbas rubias y negras, corteza de pino, vermiculita, materiales ligno-celulósicos, etc.

Las diferencias entre ambos vienen determinadas por la capacidad de intercambio catiónico o la capacidad de almacenamiento de nutrientes por parte del sustrato. Los sustratos químicamente inertes actúan como soporte de la planta, no interviniendo en el proceso de adsorción y fijación de los nutrientes, por lo que han de ser suministrados mediante la solución fertilizante. Los sustratos químicamente activos sirven de soporte a la planta pero a su vez actúan como depósito de reserva de los nutrientes aportados mediante la fertilización. almacenándolos o cediéndolos según las exigencias del vegetal.

Las diferencias entre ambos vienen determinadas por la capacidad de intercambio catiónico o la capacidad de almacenamiento de nutrientes por parte del sustrato. Los sustratos químicamente inertes actúan como soporte de la planta, no interviniendo en el proceso de adsorción y fijación de los nutrientes, por lo que han de ser suministrados mediante la solución fertilizante. Los sustratos químicamente activos sirven de soporte a la planta pero a su vez actúan como depósito de reserva de los nutrientes aportados mediante la fertilización. Almacenándolos o cediéndolos según las exigencias del vegetal.

Según el origen de los materiales.

Materiales orgánicos.

• De origen natural. Se caracterizan por estar sujetos a descomposición biológica (turbas).

• De síntesis. Son polímeros orgánicos no biodegradables, que se obtienen mediante síntesis química (espuma de poliuretano, poliestireno expandido, etc.).

• Subproductos y residuos de diferentes actividades agrícolas, industriales y urbanas. La mayoría de los materiales de este grupo deben experimentar un proceso de compostaje, para su adecuación como sustratos (cascarillas de arroz, pajas de cereales, fibra de coco, orujo de uva, cortezas de árboles, serrín y virutas de la madera, residuos sólidos urbanos, lodos de depuración de aguas residuales, etc.).

Materiales inorgánicos o minerales.

• De origen natural. Se obtienen a partir de rocas o minerales de origen diverso, modificándose muchas veces de modo ligero, mediante tratamientos físicos sencillos. No son biodegradables (arena, grava, tierra volcánica, etc.).

• Transformados o tratados. A partir de rocas o minerales, mediante tratamientos físicos, más o menos complejos, que modifican notablemente las características de los materiales de partida (perlita, lana de roca, vermiculita, arcilla expandida, etc.).

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 53

• Residuos y subproductos industriales. Comprende los materiales procedentes de muy distintas actividades industriales (escorias de horno alto, estériles del carbón, etc.).

Descripción general de algunos sustratos.

Sustratos naturales.

a) agua.

Es común su empleo como portador de nutrientes, aunque también se puede emplear como sustrato.

B) gravas.

Suelen utilizarse las que poseen un diámetro entre 5 y 15 mm. Destacan las gravas de cuarzo, la piedra pómez y las que contienen menos de un 10% en carbonato cálcico. Su densidad aparente es de 1.500-1.800 kg/m3. Poseen una buena estabilidad estructural, su capacidad de retención del agua es baja si bien su porosidad es elevada (más del 40% del volumen). Su uso como sustrato puede durar varios años. Algunos tipos de gravas, como las de piedra pómez o de arena de río, deben lavarse antes de utilizarse. Existen

algunas gravas sintéticas, como la herculita, obtenida por tratamiento térmico de pizarras.

C) arenas.

Las que proporcionan los mejores resultados son las arenas de río. Su granulometría más adecuada oscila entre 0,5 y 2 mm de diámetro. Su densidad aparente es similar a la grava. Su capacidad de retención del agua es media (20 % del peso y más del 35 % del volumen); su capacidad de aireación disminuye con el tiempo a causa de la compactación; su capacidad de intercambio catiónico es nula. Es relativamente frecuente que su contenido en caliza alcance el 8-10 %. Algunos tipos de arena deben lavarse previamente. Su pH varía entre 4 y 8. Su durabilidad es elevada. Es bastante frecuente su mezcla con turba, como sustrato de enraizamiento y de cultivo en contenedores.

D) tierra volcánica.

Son materiales de origen volcánico que se utilizan sin someterlos a ningún tipo de tratamiento, proceso o manipulación. Están compuestos de sílice, alúmina y óxidos de hierro. También contiene calcio, magnesio, fósforo y algunos oligoelementos. Las granulometrías son muy variables al igual que sus propiedades físicas. El pH de las tierras volcánicas es ligeramente ácido con tendencias a la neutralidad. La C.I.C. es

tan baja que debe considerarse como nulo. Destaca su buena aireación, la inercia química y la estabilidad de su estructura. Tiene una baja capacidad de retención de agua, el material es poco homogéneo y de difícil manejo.

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 54

E) turbas.

Las turbas son materiales de origen vegetal, de propiedades físicas y químicas variables en función de su origen. Se pueden clasificar en dos grupos: turbas rubias y negras. Las turbas rubias tienen un mayor contenido en materia orgánica y están menos descompuestas, las turbas negras están más mineralizadas teniendo un menor contenido en materia orgánica.

Es más frecuente el uso de turbas rubias en cultivo sin suelo, debido a que las negras tienen una aireación deficiente y unos contenidos elevados en sales solubles. Las turbias rubias tiene un buen nivel de retención de agua y de aireación, pero muy variable en cuanto a su composición ya que depende de su origen. La inestabilidad de su estructura y su alta capacidad de intercambio catiónico interfiere en la nutrición vegetal, presentan un pH que oscila entre 3,5 y 8,5. Se emplea en la producción ornamental y de plántulas hortícolas en semilleros.

Propiedades de las turbas (Fernández et al. 1998)

Propiedades Turbas rubias Turbas negras

Densidad aparente (gr/cm3) 0,06 - 0,1 0,3 - 0,5

Densidad real (gr/cm3) 1,35 1,65 - 1,85

Espacio poroso (%) 94 o más 80 - 84

Capacidad de absorción de agua (gr/100 gr m.s.)

1.049 287

Aire (% volumen) 29 7,6

Agua fácilmente disponible (% volumen)

33,5 24

Agua de reserva (% volumen) 6,5 4,7

Agua difícilmente disponible (% volumen)

25,3 47,7

C.I.C. (meq/100 gr) 110 - 130 250 o más

F) corteza de pino.

Se pueden emplear cortezas de diversas especies vegetales, aunque la más empleada es la de pino, que procede básicamente de la industria maderera. Al ser un material de origen natural posee una gran variabilidad. Las cortezas se emplean en estado fresco (material crudo) o compostadas.

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 55

Las cortezas crudas pueden provocar problemas de deficiencia de nitrógeno y de fitotoxicidad. Las propiedades físicas dependen del tamaño de sus partículas, y se recomienda que el 20-40% de dichas partículas sean con un tamaño inferior a los 0,8 mm es un sustrato ligero, con una densidad aparente de 0,1 a 0,45 g/cm3. La porosidad total es superior al 80-85%, la capacidad de retención de agua es de baja a media, siendo su capacidad de aireación muy elevada. El pH varía de medianamente ácido a neutro. La CIC es de 55 meq/100 g.

G) fibra de coco.

Este producto se obtiene de fibras de coco. Tiene una capacidad de retención de agua de hasta 3 o 4 veces su peso, un pH ligeramente ácido (6,3-6,5) y una densidad aparente de 200 kg/m3. Su porosidad es bastante buena y debe ser lavada antes de su uso debido al alto contenido de sales que posee.

Sustratos artificiales.

a) lana de roca.

Es un material obtenido a partir de la fundición industrial a más de 1600 ºC de una mezcla de rocas basálticas, calcáreas y carbón de coke. Finalmente al producto obtenido se le da una estructura fibrosa, se prensa, endurece y se corta en la forma deseada. En su composición química entran componentes como el sílice y óxidos de aluminio, calcio, magnesio, hierro, etc.

Es considerado como un sustrato inerte, con una C.I.C. casi nula y un pH ligeramente alcalino, fácil de controlar. Tiene una estructura homogénea, un buen equilibrio entre agua y aire, pero presenta una degradación de su estructura, lo que condiciona que su empleo no sobrepase los 3 años.

Es un material con una gran porosidad y que retiene mucha agua, pero muy débilmente, lo que condiciona una disposición muy horizontal de las tablas para que el agua se distribuya uniformemente por todo el sustrato.

Propiedades de la lana de roca (Fernández et al. 1998)

Densidad aparente (gr/cm3) 0,09

Espacio poroso (%) 96,7

Material sólido (% volumen) 3,3

Aire (% volumen) 14,9

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 56

Agua fácilmente disponible + agua de reserva (% volumen)

77,8

Agua difícilmente disponible (% volumen) 4

B) perlita.

Material obtenido como consecuencia de un tratamiento térmico a unos 1.000-1.200 ºC de una roca silícea volcánica del grupo de las riolitas. Se presenta en partículas blancas cuyas dimensiones varían entre 1,5 y 6 mm, con una densidad baja, en general inferior a los 100 kg/m3. Posee una capacidad de retención de agua de hasta cinco veces su peso y una elevada porosidad; su C.I.C. es prácticamente nula (1,5-2,5 meq/100 g); su durabilidad está limitada al tipo de cultivo, pudiendo llegar a los 5-6 años. Su pH está cercano a la neutralidad (7-7,5) y se utiliza a veces,

mezclada con otros sustratos como turba, arena, etc.

Propiedades de la perlita (Fernández et al. 1998)

Propiedades físicas

Tamaño de las partículas (mm de diámetro)

0-15

(Tipo B-6)

0-5

(TipoB-12)

3-5

(Tipo A-13)

Densidad aparente (Kg/m3) 50-60 105-125 100-120

Espacio poroso (%) 97,8 94 94,7

Material sólido (% volumen) 2,2 6 5,3

Aire (% volumen) 24,4 37,2 65,7

Agua fácilmente disponible (% volumen)

37,6 24,6 6,9

Agua de reserva (% volumen) 8,5 6,7 2,7

Agua difícilmente disponible (% volumen)

27,3 25,5 19,4

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 57

C) vermiculita.

Se obtiene por la exfoliación de un tipo de micas sometido a temperaturas superiores a los 800 ºC. Su densidad aparente es de 90 a 140 kg/m3, presentándose en escamas de 5-10 mm. Puede retener 350 litros de agua por metro cúbico y posee buena capacidad de aireación, aunque con el tiempo tiende a compactarse. Posee una elevada C.I.C. (80-120 meq/l). Puede contener hasta un 8% de potasio asimilable y hasta un 12% de magnesio asimilable. Su pH es próximo a la neutralidad (7-7,2).

D) arcilla expandida.

Se obtiene tras el tratamiento de de nódulos arcillosos a más de 100 ºC, formándose como unas bolas de corteza dura y un diámetro, comprendido entre 2 y 10 mm. La densidad aparente es de 400 kg/m3 y posee una baja capacidad de retención de agua y una buena capacidad de aireación. Su C.I.C. es prácticamente nula (2-5 meq/l). Su pH está comprendido entre 5 y 7. Con relativa frecuencia se mezcla con turba, para la elaboración de sustratos.

E) poliestireno expandido.

Es un plástico troceado en flóculos de 4-12 mm, de color blanco. Su densidad es muy baja, inferior a 50 Kg/m3. Posee poca capacidad de retención de agua y una buena posibilidad de aireación. Su pH es ligeramente superior a 6. Suele utilizarse mezclado con otros sustratos como la turba, para mejorar la capacidad de aireación.

2.1.2. ESTRUCTURAS PARA LA REPRODUCCIÓN DE PLANTAS.

Como te habrás dado cuenta a través de libros, revistas y otros medios, los climas a nivel mundial han sufrido cambios probablemente te has hecho las preguntas a que se deben, porque antes llovía más que hoy?, ¿por qué se siente tanto calor?, ¿por qué los ríos se están secando, a qué se debe la escasez de agua en unas partes y la abundancia en otras que hasta destrozos causa, ¿qué se está haciendo para enfrentar estas adversidades que al mismo tiempo permitan seguir produciendo de acuerdo a la demanda de la población que cada día va en aumento?

Para asegurar la germinación, crecimiento y reproducción de las especies vegetales se han desarrollado nuevas y novedosas técnicas e instalaciones que te permitan manipular las condiciones adversas al crecimiento de una planta.

La variedad de vegetales requieren de cuidados especiales en el proceso de propagación de las mismas hasta llegar el sitio definitivo de siembra, especialmente las plántulas ya que son muy susceptibles al ataque de plagas y enfermedades, a la competencia de malezas y deshidratación por excesos de radiación solar, por esta razón para lograr una adecuada protección de las plantas

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 58

de los factores adversos, es muy importante utilizar construcciones tales como umbráculos, viveros e invernaderos.

De acuerdo con la utilidad y necesidades de producción y el material vegetal para plantar, se construyen viveros temporales o transitorios y viveros permanentes.

2,1.2.1. ALMACIGOS, BANCALES Y CAMAS DE SIEMBRA.

“Los almácigos se utilizan con el objetivo de reproducir plantas a partir de sus semillas, en las situaciones en las cuales la siembra efectuada en forma directa sobre el terreno puede llegar a acarrear algún tipo de problema. De esta manera, el almácigo permite controlar la germinación hasta que llegue el tiempo del trasplante, El almácigo puede utilizarse también para el enraizamiento de las estacas.”

Semillero semipermanente

Es aquel que se utiliza varias veces Para mejorar las condiciones del suelo se le acondiciona se área y se aplica materia orgánica. Para evitar el daño de los bordes se coloca madera, block de cemento u otro material de contención.

Para una mayor durabilidad, se coloca una banda de plástico a la parte que estará en contacto con el suelo.

Este tipo de semillero tiene como ventaja que su levantamiento y construcción son muy sencillos, el costo de construcción es relativamente bajo y al rotar el sitio del semillero se previene la posible incidencia de plagas o enfermedades comunes a un mismo sitio, por lo general, son de madera con una dimensión de 40 cm de ancho x 80 cm de largo x 20 cm de profundidad, se llena con tierra arena y abono orgánico y son recomendadas para pequeñas explotaciones o para investigación.

Semillero permanente

Se usa durante largo tiempo sin cambiar el sitio, en el fondo, se hace una excavación de 50 cm a 60 cm y de 1,10m. a 1 20m de ancho, ésta se llena con grava para facilitar el drenaje y con una mezcla tierra, abono orgánicos y arena, hasta una altura de 20 cm. tiene la desventaja de que tanto su construcción como mantenimiento son costosos.

Actividad 17. Investigar métodos de siembra y profundidad de siembra, realizar siembra en almácigos de vivero, utilizar semillas recolectadas, se calificara con lista de cotejo.

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 59

Semilleros en charolas de poliestireno espandido.

La utilización de bandejas de germinación, permite un mejor desarrollo de la raíz, facilita el transplante y evita situaciones de estrés para la planta, debido a que cada planta tiene un espacio determinado para crecer separada del resto, se tienen plantas

con abundancia de raíces y tallo fuerte.

2.1.2.2. INVERNADEROS,

Invernadero, edificio con paredes y cubierta de vidrio o plástico translúcido, empleado para el cultivo y la conservación de plantas delicadas, o para forzar su crecimiento fuera de temporada. Los invernaderos están ideados para transformar la temperatura, humedad y luz exteriores y conseguir así unas condiciones ambientales similares a las de otros climas. Los más típicos son los que reproducen una atmósfera tropical, ideal para las orquídeas y palmeras, o los de ambiente desértico indicado para el cultivo de cactus.

Los pequeños invernaderos domésticos suelen ser estructuras adosadas contra uno de los muros de la vivienda. Se componen de una pendiente plana y tres lados que la sustentan, todos ellos acristalados sobre una estructura ligera de hierro o madera.

La humedad se controla sobre todo a partir de la cantidad de agua del riego.

Esta estructura especial permite reproducir, simular y mejorar las condiciones bajo las cuales crecen las plantas en su hábitat natural, mediante el control de factores como la temperatura, el aire, la nutrición y la humedad optima para el crecimiento

Las ventajas del empleo de invernaderos son:

Precocidad en los frutos, aumento de la calidad y del rendimiento del producto, producción fuera de época, ahorro de agua y fertilizantes, mejora del control de insectos y enfermedades, Posibilidad de obtener más de un ciclo de cultivo al año, mayor comodidad para realizar el trabajo, uso más eficiente del agua e insumos, condiciones idóneas para la experimentación.

Actividad 18. De acuerdo con el texto, elabora un mapa mental, destacando ventajas y desventajas de los mismos. Se presentara al grupo, se calificara con lista de cotejo.

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 60

Desventajas

Alta inversión inicial, alto costo de operación, requiere personal especializado, de experiencia práctica y conocimientos teóricos.

Los invernaderos se pueden clasificar de distintas formas, según se atienda a determinadas características de sus elementos constructivos (por su perfil externo, según su fijación o movilidad, por el material de cubierta, según el material de la estructura, etc.).

La elección de un tipo de invernadero está en función de una serie de factores o aspectos técnicos:

Tipo de suelo. Se deben elegir suelos con buen drenaje y de alta calidad aunque con los sistemas modernos de fertirriego es posible utilizar suelos pobres con buen drenaje o sustratos artificiales.

Disponibilidad de mano de obra (factor humano)

Imperativos económicos locales (mercado y comercialización).

Tipos de invernadero

Según la conformación estructural, los invernaderos se pueden clasificar en:

2.1.2.2.1 Tipo raspa y amagado.

Su estructura es muy similar al tipo parral pero varía la forma de la cubierta. Se aumenta la altura máxima del invernadero en la cumbrera, que oscila entre 3 y 4,2 m, formando lo que se conoce como raspa. En la parte más baja, conocida como amagado, se unen las mallas de la cubierta al suelo mediante vientos y horquillas de hierro que permite colocar los canalones para el desagüe de las aguas pluviales. La altura del amagado oscila de 2 a 2,8 m, la de las bandas entre 2 y 2,5 m.

La separación entre apoyos y los vientos del amagado es de 2x4 y el ángulo de la cubierta oscila entre 6 y 20º, siendo este último el valor óptimo. La orientación recomendada es en dirección este-oeste.

Ventajas de los invernaderos tipo raspa y amagado:

· Su economía.

· Tiene mayor volumen unitario y por tanto una mayor inercia térmica que aumenta la temperatura nocturna con respecto a los invernaderos planos. · Presenta buena estanqueidad a la lluvia y al aire, lo que disminuye la humedad interior en periodos de lluvia.

· Presenta una mayor superficie libre de obstáculos.

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 61

· Permite la instalación de ventilación cenital situada a sotavento, junto a la arista de la cumbrera.

Inconvenientes:

· Diferencias de luminosidad entre la vertiente sur y la norte del invernadero. · No aprovecha las aguas pluviales.

· Se dificulta el cambio del plástico de la cubierta.

· Al tener mayor superficie desarrollada se aumentan las pérdidas de calor a través de la cubierta.

2.1.2.2.2. Asimétricos.

Difiere de los tipo raspa y amagado en el aumento de la superficie en la cara expuesta al sur, con objeto de aumentar su capacidad de captación de la radiación solar. Para ello el invernadero se orienta en sentido este-oeste, paralelo al recorrido aparente del sol.

La inclinación de la cubierta debe ser aquella que permita que la radiación solar incida perpendicularmente sobre la cubierta al mediodía solar durante el solsticio de invierno, época en la que el sol alcanza su punto más bajo. Este ángulo deberá ser próximo a 60º pero ocasiona grandes inconvenientes por la inestabilidad de la estructura a los fuertes vientos. Por ello se han tomado ángulo comprendidos entre los 8 y 11º en la cara sur y entre los 18 y 30º en la cara norte. La altura máxima de la cumbrera varía entre 3 y 5 m, y su altura mínima de 2,3 a 3 m. La altura de las bandas oscila entre 2,15 y 3 m. La separación de los apoyos interiores suele ser de 2x4 m.

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 62

Ventajas de los invernaderos asimétricos:

· Buen aprovechamiento de la luz en la época invernal.

· Su economía.

· Elevada inercia térmica debido a su gran volumen unitario.

· Es estanco a la lluvia y al aire.

· Buena ventilación debido a su elevada altura.

· Permite la instalación de ventilación cenital a sotavento.

Inconvenientes de los invernaderos asimétricos:

· No aprovecha el agua de lluvia.

· Se dificulta el cambio del plástico de la cubierta.

· Tiene más pérdidas de calor a través de la cubierta debido a su mayor superficie desarrollada en comparación con el tipo plano.

2.1.2.2.3. Capilla

Los invernaderos de capilla simple tienen la techumbre formando uno o dos planos inclinados, según sea a un agua o a dos aguas.

Este tipo de invernadero se utiliza bastante, destacando las siguientes ventajas:

· Es de fácil construcción y de fácil conservación.

· Es muy aceptable para la colocación de todo tipo de plástico en la cubierta. · La ventilación vertical en paredes es muy fácil y se puede hacer de grandes superficies, con mecanización sencilla. También resulta fácil la instalación de ventanas cenitales. · Tiene grandes facilidades para evacuar el agua de lluvia. Permite la unión de varias naves en batería.

La anchura que suele darse a estos invernaderos es de 12 a 16 metros. La altura en cumbrera está comprendida entre 3,25 y 4 metros.

Si la inclinación de los planos de la techumbre es mayor a 25º no ofrecen inconvenientes en la evacuación del agua de lluvia. La ventilación es por ventanas frontales y laterales. Cuando se trata de estructuras formadas por varias naves unidas la ausencia de ventanas cenitales dificulta la ventilación.

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 63

2.1.2.2.4. Invernadero de doble capilla

Los invernaderos de doble capilla están formados por dos naves yuxtapuestas. Su ventilación es mejor que en otros tipos de invernadero, debido a la ventilación cenital que tienen en cumbrera de los dos escalones que forma la yuxtaposición de las dos naves; estas aberturas de ventilación suelen permanecer abiertas constantemente y suele ponerse en ellas malla mosquitera. Además también poseen ventilación vertical en las paredes frontales y laterales.

2.1.2.2.5. Tipo túnel o semicilíndrico.

Se caracteriza por la forma de su cubierta y por su estructura totalmente metálica. El empleo de este tipo de invernadero se está extendiendo por su mayor capacidad para el control de los factores climáticos, su gran resistencia a fuertes vientos y su rapidez de instalación al ser estructuras prefabricadas. Los soportes son de tubos de hierro galvanizado y tienen una separación interior de 5x8 o 3x5 m. La altura máxima de este tipo de invernaderos oscila entre 3,5 y 5 m. En las bandas laterales se adoptan alturas de 2,5 a 4 m.

El ancho de estas naves está comprendido entre 6 y 9 m y permiten el adosamiento de varias naves en batería. La ventilación es mediante ventanas cenitales que se abren hacia el exterior del invernadero.

Ventajas de los invernaderos tipo túnel:

· Estructuras con pocos obstáculos en su estructura.

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 64

· Buena ventilación.

· Buena estanqueidad a la lluvia y al aire.

· Permite la instalación de ventilación cenital a sotavento y facilita su accionamiento mecanizado.

· Buen reparto de la luminosidad en el interior del invernadero.

· Fácil instalación.

Inconvenientes:

· Elevado costo.

· No aprovecha el agua de lluvia.

2.1.2.3. SOMBREADEROS.

Un umbráculo es un sitio provisto de sombra, donde se colocan las plantas en bolsas o eras, proveniente del semillero o de un sustrato de enraizamiento, su función es dar media sombra y evitar la intensa luminosidad, que es muy perjudicial para las plántulas.

Ventajas

Trasplantar la plántula de semillero o germinador a bolsas, tiene los siguientes beneficios.

� La tierra utilizada para llenado, se puede preparar con mas facilidad

� En la misma bolsa, continuara con el desarrollo de la planta hasta llegar al tamaño indicado para injertarla o para plantarla definitivamente.

� Se disminuye el daño a las raíces. las plantas sembradas en eras o en bancales, al momento de arrancarlas para llevarlas al sitio definitivo pierden gran cantidad de raíces.

� Si el piso en donde se dispondrán las bolsas se cubre con un plástico oscuro, se impide el crecimiento de malezas.

Desventajas

Su transporte al sitio de siembra puede ser un poco laborioso dependiendo de la extensión que se desea trasplantar.

Ubicación

� El terreno debe ser plano, o con una ligera pendiente que facilite el drenaje.

� Debe estar cerca de una fuente de agua

� Es necesario de protegerlos de vientos fuertes

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 65

� Se debe cercar para impedir los daños que ocasionan los animales

� El sitio debe de estar cerca de los caminos principales de la finca a fin de facilitar la movilización de las plantas al lugar definitivo de siembra.

2.1.2.4. CAMAS DE CRECIMIENTO.

Son áreas en las que, una vez germinadas, las plántulas (pequeñas) los arbolitos son llevados en bolsas y así permitir el desarrollo de las especies hasta alcanzar una altura y un vigor adecuados para su posterior trasplante. se construyen de manera similar las camas de germinación en cuando a dimensiones; la distancia entre camas por las calles no debe de ser inferior a 40 cm cuando se trabaja con material vegetal la bolsa, se demarca la cama con estacas y cuerdas, según la disponibilidad del terreno.

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 66

ActividadesActividadesActividadesActividades de aprendizajede aprendizajede aprendizajede aprendizaje GUIA GUIA GUIA GUIA DE OBSERVACIÓNDE OBSERVACIÓNDE OBSERVACIÓNDE OBSERVACIÓN

EL DESARROLLO SUSTENTABLE Y LA PRODUCCION AGROPECUARIA MAESTRO INSTITUCION

Centro de Bachillerato Tecnológico

Agropecuario No. 38

ALUMNO TEMA

2.1. El sustrato como medio de propagación.

SEMESTRE Y GRUPO FECHA DE APLICACION

III “A” agropecuario

Desempeño a evaluar: Actividad 15. De acuerdo con el texto, prepara una exposición en POWER

POINT y presentar al grupo.

Indicadores Cumplimiento Ejecución Observaciones

Si No Ponderación Calif.

1 Existe organización, orden y trabajo

en equipo.

1.00

2 Muestran dominio del tema. 1.00

3 Los contenidos del tema fueron

expuestos con orden y claridad.

2.00

4 Usaron imágenes alusivas al tema. 1.00

5 Contestaron correctamente las

preguntas de sus compañeros y

maestro.

2.00

6 Al hacer la exposición usaron

adecuadamente los recursos

didácticos.

1.00

7 Participo todo el equipo 2.00

Calificación de esta evaluación:

EVALUADOR Tabla de ponderación

1= Si cumplió 0 = No Cumplió

La calificación se obtiene multiplicando el

cumplimiento por la ponderación

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 67

LISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJO

REPRODUCCIÓN DE PLANTAS

MAESTRO INSTITUCION

Centro de Bachillerato Tecnológico

Agropecuario No. 38

ALUMNO TEMA

2.1.1. Materiales orgánicos e inorgánicos.

SEMESTRE Y GRUPO FECHA DE APLICACION

III “A” agropecuario

Producto a evaluar: Actividad 16. Investigar mezclas de sustratos, traer sustratos y realizar mezclas.

Indicadores Cumplimiento Ejecución Observaciones

Si No Ponderación Calif.

1 Entregó puntualmente 1.00

2 Tiene buena presentación 1.00

3 El contenido corresponde al tema

investigado

2.00

4 Presenta un orden y secuencia

lógica

2.00

5 Elaboró conclusiones 2.00

6 Presenta buena ortografía 1.00

7 Presenta bibliografía consultada. 1.00

Calificación de esta evaluación:

EVALUADOR Tabla de ponderación

1= Si cumplió 0 = No Cumplió

La calificación se obtiene multiplicando el

cumplimiento por la ponderación

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 68

LISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJO

REPRODUCCIÓN DE PLANTAS

MAESTRO INSTITUCION

Centro de Bachillerato Tecnológico

Agropecuario No. 38

ALUMNO TEMA

2.1.1. Materiales orgánicos e inorgánicos.

SEMESTRE Y GRUPO FECHA DE APLICACION

III “A” agropecuario

Producto a evaluar: Actividad 17. Investigar métodos de siembra y profundidad de siembra.

Indicadores Cumplimiento Ejecución Observaciones

Si No Ponderación Calif.

1 Entregó puntualmente 1.00

2 Tiene buena presentación 1.00

3 El contenido corresponde al tema

investigado

2.00

4 Presenta un orden y secuencia

lógica

2.00

5 Elaboró conclusiones 2.00

6 Presenta buena ortografía 1.00

7 Presenta bibliografía consultada. 1.00

Calificación de esta evaluación:

EVALUADOR Tabla de ponderación

1= Si cumplió 0 = No Cumplió

La calificación se obtiene multiplicando el

cumplimiento por la ponderación

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 69

LISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJO

REPRODUCCIÓN DE PLANTAS MAESTRO INSTITUCION

Centro de Bachillerato Tecnológico

Agropecuario No. 38

ALUMNO TEMA

1.1.7. Manejo de semillas.

SEMESTRE Y GRUPO FECHA DE APLICACION

III “A” agropecuario

Producto a evaluar: Actividad 18. Elabora un mapa mental, destacando ventajas y desventajas de

los mismos.

Indicadores Cumplimiento Ejecución Observaciones

Si No Ponderación Calif.

1 Entrego puntualmente. 1.00

2 Presenta limpieza y orden. 1.00

3 El mapa incluye conectores. 2.00

4 La información tiene secuencia

lógica.

2.00

5 Determina cuando las semillas son

de calidad.

2.00

6 Menciona que tratamientos se le da

a la semilla.

2.00

Calificación de esta evaluación:

EVALUADOR Tabla de ponderación

1= Si cumplió 0 = No Cumplió

La calificación se obtiene multiplicando el

cumplimiento por la ponderación

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 70

II.

ESTRUCTURAS Y MEDIOS PARA

LA PROPAGACION ASEXUAL.

2.2.

Propagación

asexual

2.2.1.

Propagación

por estacado.

2.2.2.

El acodo aéreo

y subterráneo.

2.2.3.

Propagación

por injertos de

yema y púa.

2.2.4.

Cuidado de

las plantas

injertadas

2.2.5. Mejoramiento genético de las plantas.

Se utilizan para la

Con técnicas como

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 71

Evaluación Evaluación Evaluación Evaluación DIAGNOSTICA.DIAGNOSTICA.DIAGNOSTICA.DIAGNOSTICA.

1.- ¿Tipos de acodos?

2.- ¿Acodo más común en la región?

3.- ¿Pasos para realizar el injerto de T o escudete?

4.- ¿Cómo defines al patrón o portainjerto?

5.- ¿Qué ventajas ofrece usar un patrón o portainjerto?

6.- ¿Cuidados de las plantas injertadas?

7.- ¿En cuántos grupos se dividen las estacas de tallo?

8.- ¿factores que afectan la regeneración de las plantas por acodado?

9.- ¿Ventajas de reproducir plantas por injerto?

10.- ¿Ventajas de reproducir plantas por estacas?

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 72

2.2. PROPAGACIÓN ASEXUAL.

La reproducción asexual, también llamada reproducción vegetativa, consiste en que de un organismo se desprende una sola célula o trozos del cuerpo de un individuo ya desarrollado que, por procesos mitóticos, son capaces de formar un individuo completo genéticamente idéntico a él. Se lleva a cabo con un solo progenitor y sin la intervención de los núcleos de las células sexuales o gametos.

Ventajas y desventajas.

Entre las ventajas biológicas que conlleva están su rapidez de división y su simplicidad, pues no tienen que producir células sexuales, ni tienen que gastar energía en las operaciones previas a la fecundación. De esta forma un individuo aislado puede dar lugar a un gran número de descendientes, por medios como la formación asexual de esporas, la fisión transversal, o la gemación; facilitándose la colonización rápida de nuevos territorios. Así, algunos organismos se reproducen asexualmente cuando las condiciones ambientales son favorables, mientras que lo hace sexualmente cuando son adversas.

En cambio, presenta la gran desventaja de producir una descendencia sin variabilidad genética, clónica, al ser todos genotípicamente equivalentes a su parental y entre sí. La selección natural no puede "elegir" los individuos mejor adaptados (ya que todos lo están por igual) y estos individuos clónicos puede que no logren sobrevivir a un medio que cambie de modo hostil, pues no poseen la información genética necesaria para adaptarse a este cambio. Por lo tanto esa especie podría desaparecer, salvo que haya algún individuo portador de una combinación genética que le permita adaptarse al nuevo medio.

2.2.1. METODO DE PROPAGACION POR ESTACADO.

Técnicas de la propagación por estacas

En la propagación por estacas, una parte del tallo, de la raíz o de la hoja se separa de la planta madre, se coloca bajo condiciones ambientales favorables y se le induce a formar raíces y tallos, produciendo así una nueva planta independiente, que en la mayoría de los casos es idéntica a la planta de la cual procede.

2.2.1.1. Importancia y ventajas de la propagación por estacas

Importancia:

Este es el método más importante para propagar arbustos ornamentales. Las estacas también se usan ampliamente en la propagación comercial en invernadero de muchas plantas con flores de ornato y se usa en forma común para propagar diversas especies de frutales.

Actividad 19. Investigar ventajas y desventajas de la reproducción asexual, elabore un mapa mental.

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 73

Ventajas:

• Se pueden iniciar muchas plantas en un espacio limitado, partiendo de unas pocas plantas madres.

• Es poco costoso, rápido y sencillo, no necesitando de las técnicas especiales que se emplean para el injerto.

• No tienen problemas por incompatibilidad entre patrón e injerto o por malas uniones de injerto.

• La planta progenitora suele reproducirse con exactitud sin variación genética.

2.2.1.2. Tipos de Estacas

Las estacas casi siempre se hacen de las porciones vegetativas de la planta, como los tallos modificados (rizomas, tubérculos, cormos y bulbos), las hojas o las raíces. Se pueden hacer diversos tipos de estacas, que se clasifican de acuerdo con la parte de la planta de la cual proceden:

Estacas de tallo:

• De madera dura (Especies caducifolias)

• De madera suave

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 74

• Herbáceas.

o Estacas de hoja

o Estacas de raíz.

Muchas plantas pueden propagarse con resultados satisfactorios por medio de varios de tales tipos de estacas. El ejemplar usado depende de las circunstancias específicas, empleándose de ordinario el menos costoso y el más fácil.

Si la planta específica que se desea propagar enraíza bien por estacas de madera dura en un vivero a la intemperie, se prefiere este método por su sencillez y bajo costo. En algunas especies las estacas de raíz también son satisfactorias, pero pueden ser difícil conseguir material en cantidades grandes. En especies más difíciles de propagar, es necesario hacer que enraícen estacas con hojas, lo cual requiere instalaciones más costosas y complicadas.

Al escoger material para estacas es importante usar plantas madres que estén libres de enfermedades, que sean moderadamente vigorosas y productivas y de identidad conocidas. Las plantas madres enfermas o dañadas por heladas o sequías, que han sido desfoliadas por insectos o enfermedades, que han quedado achaparradas por fructificación excesiva o que han tenido un desarrollo exuberante y demasiado vigoroso, deben evitarse.

Una práctica recomendable para el propagador es el establecimiento de bloques de plantas progenitoras como fuente del material a multiplicar, donde se mantengan plantas madres libres de parásitos, uniformes y fieles al tipo, en las condiciones nutritivas adecuadas para lograr el mejor enraizamiento de las estacas tomadas de ellas.

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 75

Estacas de Tallo

Este es el tipo más importante de estacas y puede dividirse en cuatro grupos, de acuerdo con la naturaleza de la madera usada: de madera dura, de madera semidura, de madera suave y herbácea.

En la propagación por estacas de tallo se obtienen segmentos de ramas que contienen yemas terminales o laterales, con la mira de que al colocarlas en condiciones adecuadas, produzcan raíces adventicias y, en consecuencia, plantas independientes.

El tipo de madera, el período de crecimiento usado para hacer las estacas, la época del año en que se obtengan y otros factores pueden ser de mucha importancia para asegurar el enraizamiento satisfactorio de algunas plantas. La información concerniente a esos factores se da aunque parte de ese conocimiento puede conseguirse en la práctica misma de propagar plantas.

Estacas de madera dura (Especies Caducifolias)

Este es uno de los métodos de propagación más fácil y menos costosa. Las estacas de madera dura son fáciles de preparar, no son fácilmente perecederas, de ser necesario, pueden enviarse a distancias largas y no requieren equipo especial durante el enraizado.

Las estacas se preparan en la estación de reposo (fines del otoño, el invierno, o comienzos de la primavera), de madera del crecimiento de la estación anterior (de un año), aunque en algunas especies, como la higuera, el olivo, semeruco y algunas variedades de ciruelos se usan estacas de dos o más años. Las estacas con madera dura con más frecuencia se usan en la propagación de plantas leñosas caducifolias, aunque es posible propagar ciertas especies siempreverdes de hoja ancha, como el olivo, por medio de estacas de madera dura sin hojas.

Muchos arbustos ornamentales caducifolios se multiplican con facilidad por estacas de este tipo. Algunos de los más comunes son el trueno, la forsitia, la wisteria, la madreselva y la spiraea. Los patrones de nosal, como de Rosa multiflora, se propagan en grandes cantidades por estacas de madera dura. Unas cuantas especies frutales se propagan comercialmente por este método, por ejemplo: la higuera, el membrillero, el olivo, la morera, la vid, la frambuesa, la uva crespa, el ganado y algunos ciruelos como también se puede afianzar la propagación de la acerola (Semeruco Malphia Glabra).

El material de propagación para estacas de madera dura debe obtenerse de plantas madres sanas, y moderadamente vigorosas y que crezcan a plena luz. No se debe seleccionar madera de crecimiento exuberante con entrenudos anormalmente largos o de ramas pequeñas y débiles que crezcan en el interior de la planta. La madera más conveniente es aquella de tamaño y vigor moderados. Las estacas deben tener almacenada una amplia provisión de materias alimenticias para nutrir a las raíces y tallos en desarrollo hasta que sean capaces de hacerlo por sí mismos.

Actividad 20. De acuerdo con el texto, realice la práctica de estacado con árboles frutales y ornato de temporada

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 76

De ordinario, las puntas de las ramas tienen pocos alimentos almacenados y se descartan. Las mejores estacas se obtienen de la parte central y basal.

Las estacas de madera dura varían considerablemente en longitud: de 10 a 75 cm. Las estacas largas, cuando se van a usar como patrones para árboles frutales, una vez que han enraizado, permiten que se injerten en ellas mismas las yemas varietales en vez de hacerlo en ramas más pequeña que salgan de la estaca original.

En una estaca se incluyen cuando menos dos nudos. El corte basal, de ordinario se hace justo debajo de un nudo y el corte superior de 1.5 a 3 cm arriba de otro nudo. Sin embargo, al preparar estacas de tallo de plantas con entrenudos cortos, por lo general, se presta poca atención a la posición del corte basal, especialmente cuando se preparan y cortan juntas cantidades grandes de estacas, muchas a la vez, con una sierra de cinta o con una cizalla para papel.

El diámetro de las estacas varía entre 1.5 y 2.5 o aun 5 cm, dependiendo de la especie. Se pueden preparar tres tipos de estacas:

• El tipo de "mazo"

• El tipo "con talón"

• La estaca simple

El tipo "mazo" incluye una pequeña porción de la madera más vieja, mientras que "la estaca con talón" se le deja sólo una sección aún más pequeña y "la estaca simple" se prepara sin incluir nada de la madera vieja.

En operaciones en gran escala, la plantación de las estacas se ha mecanizado.

2.2.2. ACODO AEREO Y SUBTERRANEO.

El acodado es un método de propagación en el cual se provoca la formación de raíces adventicias a un tallo que está todavía adherido a la planta madre. Luego, el tallo enraizado, acodado, se separa para convertirlo en una nueva planta que crece sobre sus propias raíces.

El acodado puede considerarse como una preparación para divisiones subsecuentes. Puede ser un medio natural de reproducción como en la frambuesa o puede inducirse por los métodos "artificiales" que se describen más adelante.

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La rama acodada sigue recibiendo agua y minerales debido a que no se corta el tallo y el xilema permanece intacto. En consecuencia, el acodado no depende del período de tiempo que una rama separada (estaca) puede mantenerse antes de que se efectúe el enraizado. Esta es una de las razones importantes por qué en muchas plantas se tiene más éxito al propagarlas por acodos que por estacas.

2.2.2.1. Factores que afectan la regeneración de las plantas por acodado

Durante el acodado la formación de la raíz es estimulada por varios tratamientos aplicados al tallo que ocasionan una interrupción de la translocación hacia debajo de materiales orgánicos, carbohidratos, auxina y otros factores de crecimiento. Esos materiales se acumulan cerca del punto de tratamiento y se efectúa enraizado en esa zona general aun cuando la rama está todavía unida a la planta madre.

Un paso común para todos los métodos de acodado es la eliminación de la luz de las partes en que se desea que se formen raíces. Esto se logra en el acodado de montículo y de trinchera, cubriendo los brotes de nuevo desarrollo a medida que crecen, de tal manera que la parte basal de las ramas acodadas nunca queda expuesta a la luz. Si la parte ya existe, como es el caso en un brote de un banquillo en un tallo en la rama de un árbol, se efectúa un proceso de blanqueado. El blanqueado difiere bastante del ahilamiento, en el cual las ramas se producen enteramente en oscuridad completa y carecen de hojas.

La aplicación de sustancias estimuladoras del enraizamiento, como el ácido indolbutírico, durante el acodado es a veces benéfico al igual que lo es en las estacas, aunque el método de aplicación es algo diferente pudiendo utilizarse de manera efectiva, aplicándolas a las cortes de anillado ya sea en polvo, en lanolina o en una solución de alcohol de 50%.

La formación de raíces en los acodos depende de la provisión continua de humedad, buena aireación y temperaturas moderadas en la zona de enraizamiento. Estas condiciones se proporcionan mejor por un medio de enraíce tal, como una mezcla de tierra ligera y de aserrín. Los períodos prolongados de sequía y los suelos compactos y pesados dificultan el desarrollo de las raíces, en especial en las etapas iniciales del enraizamiento.

2.2.2.2. Características y usos del acodado

La ventaja principal del acodado es el éxito con que las plantas se enraízan por este método. Muchos clones que no enraízan fácilmente por estaca pueden enraizar por acodo, permitiendo establecer la planta sobre sus propias raíces. La mayoría de los métodos de acodado son relativamente fáciles de llevar a cabo y puede practicarse a la intemperie en el jardín o el vivero. Cuando se trata de obtener un pequeño número de plantas, el acodado puede ser más exitoso con menos pericia, esfuerzo y equipo del que requeriría para obtenerlas por estacas.

En algunos casos se puede producir una planta más grande en un tiempo más corto que si se hiciera por estaca. Sin embargo, como a medida que aumenta el tamaño del acodo el trasplante se vuelve más difícil, se necesitan tomar precauciones especiales para tener éxito en el establecimiento de plantas grandes en sus propias raíces.

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Por otra parte, el acodado tiende a ser un método de propagación caro y no se presta para las técnicas mecanizadas de propagación en gran escala usadas en los viveros modernos. Parte del aumento en el costo de propagación se debe a los requerimientos adicionales de mano de obra. Una planta acodada exige cierta cantidad de atención individual, dependiendo del método que se use en particular, aunque las operaciones necesarias son en sí sencillas. También el número de plantas vendibles es menor que el que se obtendría haciendo la reproducción por estacas, yemas o púas. El método tiende a ser engorroso y las plantas progenitoras ocupan un área considerable, la cual es difícil de cultivar y mantener libre de malezas.

Los viveristas americanos limitan el uso del acodado a las plantas que se reproducen naturalmente en esa forma, como la frambuesa negra, la zarzamora rastrera y la uva crespa, y a las plantas muy difíciles o imposibles de propagarse por otros métodos y que son lo suficientemente valiosas para justificar los costos. Poe ejemplo, el avellano (Corylus sp.), la vid muscadina (Vitis rotundifolia) y el litchi (Litchi chinensis), se propagan comercialmente en esta forma. El acodado se usa también para propagar ciertos patrones clonales, como los patrones de manzanos Malling que no enraizan fácilmente por estaca o que requieren equipo especial, como instalaciones para niebla.

Algunos árboles y arbustos ornamentales se propagan por acodos, en especial en Europa. Hay casos en que las plantas establecidas en viveros para ser acodadas han estado muchos años produciendo y los viveristas han adquirido mucha destreza en el manejo de esas plantas.

El acodado es más indicado para el horticultor aficionado que desea propagar un número relativamente pequeño de plantas o para especialistas que desean reproducir cierta clase de plantas. En estos casos, el gasto por planta y la atención requerida por ellas no son factores a considerarse al seleccionar su método.

Procedimientos para el acodado

2.2.2.3. Acodado de punta: En el acodo de punta, el enraíce tiene lugar en la punta de las ramas de la estación en curso, las cuales se doblan hacia el suelo. La punta de la rama empieza a crecer en el suelo hacia abajo pero se curva para producir en el tallo una vuelta pronunciada en donde se desarrollan las raíces. Este método natural de reproducción es característico de la zarzamora rastreras, "dewberry" (un tipo de zarzamora) y las frambuesas púrpura y negra.

Los tallos de esas plantas son bienales en el sentido de que durante el primer año son vegetativas, fructifican en el segundo y se suprimen después de la fructificación. En el vivero es aconsejable dejar plantas madres sólo para propagación, para lo cual se

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siembran plantas sanas y jóvenes a una distancia de 3.6 m para dejar espacio para el acodado posterior. Tan pronto como se plantan se les recorta a una altura de 20 a 25 cm. En las ramas vigorosas que se originen se les hace un "despuntado de verano", cortando las puntas de 7 a 10 cm una vez que han crecido de 50 a 75 cm de altura.

La mejor época para acodar es cuando sólo parte de las ramas laterales han tomado esa forma. Si la operación se hace demasiado pronto, es posible que las ramas sigan creciendo una vez de formar una yema terminal. Si se hace demasiado tarde, el sistema radical será pequeño.

Es preferible acodar las puntas a mano, usando una pala o una cuchara para hacer un hoyo con un lado vertical y otro ligeramente inclinado hacia la planta madre. Se coloca la punta de la rama en el hoyo, apoyada sobre el lado correspondiente, llenándolo con la tierra extraída que se aprieta con firmeza contra la rama. Al colocarla así, la punta no puede seguir creciendo y se vuelve "telescópica", formando con prontitud un sistema radical abundante y desarrollando un brote vertical vigoroso.

2.2.2.4. Acodado simple: El acodado simple se efectúa doblando una rama hasta el suelo y cubriéndola parcialmente con tierra o medio para enraizarla, pero dejando descubierto su extremo vertical. La punta de la rama se curva estrechamente y se enderezan los últimos 15 a 30 cm de ella. Es posible que todo lo que requiera para inducir el enraizado sea curvar la rama, pero se puede tener un beneficio adicional torciéndola para aflojar la corteza. En ocasiones se hacen cortes o muescas en la parte inferior de la rama.

Por lo general la época para hacer el acodo es el principio de la primavera, usando ramas durmientes de un año de edad. Se usan ramas bajas, flexibles, que se pueden doblar fácilmente hasta el suelo. En algunos casos los vástagos que se producen cerca de lacorona de la planta pueden servir como ramas para acodar. El acodado también puede retardarse hasta que la estación de crecimiento se encuentre más avanzada, y hacerse una vez que las ramas de ese año han alcanzado la longitud suficiente y se han consolidado.

Las ramas acodadas en primavera por lo general habrán enraizado adecuadamente para el final de su primera estación de crecimiento y pueden ser removidas, bien sea en el otoño o en la primavera siguiente, antes de que se inicie el nuevo crecimiento. Las ramas maduras acodadas en el verano se deberán dejar durante todo el invierno y removerlas, ya sea en la

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primavera siguiente antes de que se inicie el crecimiento, o dejarlas hasta el final de su segunda estación de crecimiento. Cuando el acodo y enraizado se remueve de la planta madre, se le trata esencialmente en la misma forma que si fuera una estaca enraizada de la propia planta. Las plantas siempreverdes deberán colocarse siempre en maceta y conservarlas durante cierto tiempo frescas y húmedas. Un acodo bien enraizado decidua latente se puede plantar directamente en los surcos del vivero o en su lugar definitivo, si la copa se reduce a un tamaño que corresponda al del sistema radicular.

Se puede tener durante un período de años una producción continua de acodos enraizados, estableciendo un plantel de bancos de acodo formado con plantas progenitoras colocadas a una distancia para producir comercialmente ciertos arbustos difíciles de enraizar.

2.2.2.5. Acodado Compuesto o Serpentino: El acodado compuesto es sobre todo el mismo que el acodado simple, excepto que la rama queda alternadamente cubierta y descubierta a lo largo de su extensión. Generalmente la rama se lesiona a anilla en su parte inferior y se cubre en la misma forma que en el acodado simple.

Una vez que los acodos han enraizado o al fin de la estación de crecimiento, la rama se corta en secciones formadas por el nuevo brote y por la porción que lleva las raíces. En esta forma se pueden tener varias plantas nuevas de una sola rama.

2.2.2.6. Acodado Aéreo: En el acodado aéreo, las raíces se forman en la parte aérea de la planta en donde el tallo se ha anillado o se le ha hecho un corte angosto inclinado hacia arriba. La porción lesionada se envuelve en el punto de la herida con un medio de enraíce que se mantiene húmedo de continuo. Este procedimiento tiene más éxito en regiones con humedad elevada o en invernaderos.

El acodo aéreo se emplea para propagar cierto número de árboles y arbustos subtropicales, incluyendo en ellos al litchi y al limón persa. Con la película de polietileno como envoltura para los acodos es posible extender el método de acodo aéreo de las plantas tropicales cultivadas a la intemperie, a plantas de la zona templada.

Los acodos aéreos pueden hacerse en la primavera en madera del crecimiento del año anterior o, en algunos casos, a fines del verano en ramas parcialmente

Actividad 21. De acuerdo con el texto, realiza la práctica de acodo aéreo en arboles de ornato Bugambilia o ficus.

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endurecidas. En ocasiones, es posible usar madera más vieja que de un año, pero el enraizamiento es menos satisfactorio y las plantas más grandes que se obtienen son más difíciles de manejar después del enraíce.

El primer paso en el acodo aéreo es anillar o cortas la corteza del tallo en un lugar situado de 15 a 30 cm o más, atrás de la punta. Dependiendo de la clase de la planta, se remueve por completo alrededor de la rama una tira de corteza. Puede ser conveniente raspar la superficie para asegurarse de que se ha removido todo el floema y el cambium y retardar así la cicatrización. Otro procedimiento consiste en hacer un corte inclinado de unos 5 cm, que llegue hasta el centro del tallo, manteniendo las dos superficies separadas con musgo esfagníneo o un trozo de madera. La aplicación de algún material que estimule el enraizamiento a la herida expuesta, ha resultado benéfica. Aumentando la concentración, hasta el 4% del IBA en talco, ha incrementado el enraizamiento y la supervivencia en acodos aéreos en pecanero.

Para cubrir las superficies cortadas de la rama se colocan alrededor de ellas unos dos puñados de musgo sphagnum ligeramentehumedecido. Si el musgo está demasiado húmedo, pueden pudrirse los tejidos de la rama.

La mejor forma de determinar cuándo remover el acodo de la planta madre, es observando la formación de raíces a través del plástico transparente. En algunas plantas el enraizado se efectúa en 2 o 3 meses o menos. En el acebo, lila, azalea y magnolia, se debe dejar por un lapso de dos estaciones. En general, es conveniente remover el acodo para su trasplante cuando no esté en crecimiento activo.

Dado que las dificultades del trasplante aumentan en proporción al tamaño de la copa, de ordinario, es aconsejable practicar alguna poda para equilibrar la parte aérea con las raíces, pero puede no ser indispensable si se toman las siguientes precauciones: El acodo enraizado se debe plantar en un recipiente adecuado y colocarlo en condiciones frescas y húmedas, como en una cama cerrada donde se pueda regar con frecuencia a las plantas. Si el acodo se hace en otoño, es posible que para la primavera siguiente se haya desarrollado un sistema radical suficientemente grande que permita cultivarlo con éxito a la intemperie.

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2.2.2.7. Acodado en Montículo o Banquillo: Para hacer este tipo de acodado se necesita cortar la planta hasta el suelo, en la estación de reposo, y amontonar en primavera tierra u otro medio de enraíce alrededor de la base de los brotes nuevos para estimular en ellos la formación de raíces. Cubriendo las ramas con tierra se blanquean y se promueve en ellas la formación de raíces. Las plantas con ramas rígidas que no se doblan con facilidad y que tienen capacidad para producir en corona brotes en abundancia, son en especial adecuadas para acodar por medio de este método. Entre las plantas que es común propagar con esta técnica se encuentran los patrones clonales de manzano, el membrillero, el grosellero y la uva crespa.

El establecimiento de una cama de banquillos debe hacerse en un suelo fértil, bien drenado, un año antes de que se vaya a iniciar la propagación.

La separación de los surcos deberá ser suficiente para permitir las operaciones de cultivo y de aporcado durante la primavera y el verano.

La plantación en una trinchera de poca profundidad permitirá que los brotes de la corona salgan a un nivel bajo. Las plantas a acodar se cortan a una altura de 40 a 50 cm sobre el suelo y se dejan crecer durante una estación, manteniendo cultivado el espacio entre ellas.

Al final de la estación de crecimiento las ramas acodadas de plantas que se propagan con facilidad deben de haber formado suficientes raíces como para que se les separe del banquillo materno y se les pase a los surcos del vivero. Esta operación se debe aplazar hasta que las plantas estén latentes, ya que gran parte del desarrollo de las raíces se efectúa durante los meses húmedos de otoño. En climas severos, la operación se debe retrasar hasta que pase el peligro de daños por temperaturas bajas.

Los acodos enraizados se cortan cerca de su base para mantener baja la altura de la planta original. Después del corte de los acodos el banquillo original se debe dejar descubierto hasta que las nuevas ramas hayan crecido de 8 a 25 cm y entonces se empiezan a aporcar para el nuevo año. Las ramas que no enraizan o que lo hacen con dificultad pueden tratarse como si fueran estacas de madera dura.

2.2.2.8. Acodado en Trinchera: El acodado en trinchera (método de ahilamiento) consiste en cultivar una planta o rama de planta en posición horizontal en la base de una trinchera o surco, y cubrir con tierra los brotes nuevos a medida que crecen, de tal manera que se ahilen sus bases, de las cuales se originarán raíces.

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En este procedimiento el primer paso consiste en establecer la cama madre, la cual, como en el acodado en montículo puede usarse por varios años. Acodos enraizados o árboles injertados de un año se plantan a una distancia de 50 a 75 cm, colocándolos en el surco con una inclinación de 30º a 45º. Los surcos deben espaciarse de 1.20 a 1.50 m, a distancia suficiente para que permitan labores de cultivo y apilar tierra alrededor de la planta hasta unos 15 cm de altura. Luego las plantas se cortan a una altura uniforme –50 a 65 cm- y se les deja crecer durante una estación.

El acodado en trinchera es, de manera principal, un procedimiento usado en los viveros para propagar ciertos frutales cuya multiplicación es difícil de lograr por otros métodos. También se puede practicar con árboles o arbustos establecidos, doblando las ramas o sarmientos largos y flexibles hasta el suelo, como se hace en el acodado simple pero colocándolas planas en la trinchera. La rama se cubre en toda su longitud, pero dejando la punta expuesta.

2.2.3. PROPAGACION POR INJERTOS DE YEMA Y PUA.

“El injerto es un método de propagación vegetativa artificial de los vegetales en el que una porción de tejido procedente de una planta —la variedad o injerto propiamente dicho— se une sobre otra ya asentada —el patrón, portainjerto o pie—, de tal modo que el conjunto de ambos crezca como un sólo organismo. El injerto se emplea sobre todo para propagar vegetales leñosos de uso comercial, sean frutales u ornamentales.

El injerto se emplea para permitir el crecimiento de variedades de valor comercial en terrenos o circunstancias que les son desfavorables, aprovechando la mayor resistencia del pie usado, o para asegurarse que las características productivas de un ejemplar se mantienen inalteradas, frente a la dispersión genética que introduce la reproducción sexual. En el caso de híbridos de número cromosómico impar, que son estériles por naturaleza, la propagación vegetativa es la única manera de reproducción posible. Más raramente, el injerto se utiliza para unir más de una variedad en un mismo patrón, obteniendo así un único ejemplar que produce frutos o flores de varias características diferentes.

El injerto sólo es posible entre especies más o menos estrechamente relacionadas, puesto que de otro modo los tejidos resultan incompatibles y la conexión vascular

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necesaria para la supervivencia de la variedad no se realiza. Normalmente el límite está dado por la pertenencia a un mismo género, aunque existen excepciones; géneros estrechamente emparentados, como algunos de las rutáceas o las cucurbitáceas, pueden funcionar como pie para especies afines.

En la mayoría de los casos, una de las variedades se selecciona como raíz por su resistencia, y el tallo de la especie elegida como variedad se injerta sobre esta base. En otros casos, una yema de la variedad se injerta lateralmente en el tronco del patrón, y sólo después de asegurarse la fusión exitosa se corta este último.”

Tipos de injertos

Veamos cómo se hacen los tipos de injertos más importantes.

Injertos de púa: se injerta sobre el patrón una púa, es decir, un trozo de tallo que lleva varias yemas.

Injertos de yema: se injerta sobre el patrón una yema.

Injertos de púa

2.2.3.1. Injerto inglés o de lengüeta

• Este tipo de injerto se hace entallos finos, de 2 centímetros de diámetro como máximo (0,5-1,5 cm. es lo normal).

• Es preferible que el patrón y la púa tengan el mismo diámetro. Si la púa es considerablemente más delgada que el patrón, la púa hay que colocarla desplazada a un lado, no en el centro, como se puede ver en el dibujo de la izquierda abajo.

• Se hace a mediados o finales de invierno, es decir, cuando la púa está en reposo (sin hojas).

• La púa se prepara a partir de una ramita de 1 año de edad, cortando un trozo de 7 a 12 cm. de longitud y de un diámetro máximo de 2 centímetros. Deberá llevar 2 ó 3 yemas de madera. Como si fuera una estaquilla. • Se hace un corte en bisel, tanto en el patrón como en la púa, y sobre ese mismo corte, se le da otro a ambos elementos, obteniéndose las lengüetas (ver dibujos).

• Patrón y variedad se ensamblan por las lengüetas, debiendo quedar en contacto el cambium de ambos. Este es el secreto. Hay que poner en contacto los cambiums de las dos piezas, si no, no prenderá. Si se pone sólo un poquito en contacto, fracasa.

• Se amarra bien con rafia o con cinta adhesiva especial para injertos y se encera todo para protegerlo de la desecación.

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No se desata hasta que las yemas hayan brotado y midan unos 5-10 cm. Si los desatas demasiado pronto, el tejido de unión es muy tierno y escaso y se seca cuando parecía que ya estaba brotando. Mantener la atadura más tiempo del recomendado también es perjudicial, ya que estrangula al injerto por dificultar el paso de la savia.

2.2.3.2. Injerto de tocón de rama.

• Este método es útil para injertar ramas que son demasiado gruesas para el injerto inglés, pero no lo suficiente para ser injertadas por otros métodos, tales como el de hendidura o de corteza.

• Para este tipo de injerto los mejores patrones son ramas de alrededor de 3-5 cm. de diámetro.

• La mejor época es a finales de invierno o principios de primavera.

• La púa debe ser de 1 año de edad, contener 2 ó 3 yemas y tener unos 7,5 cm. de longitud.

• La púa sólo se afila por un lado, para que exista el máximo de cambium posible en contacto.

• Se hace sobre el patrón un corte inclinado profundizando hasta un tercio o la mitad del grosor de la rama.

• Se inserta inclinada procurando que quede en contacto el cambium del patrón y el de la variedad. Fundamental.

• Se ata firmemente con rafia o con una cinta especial para injertos y se encera sellando todas las aberturas para proteger de la desecación. El extremo de la púa también debe encerarse.

• No se desata hasta que las yemas hayan brotado y midan unos 5-10 cm. Si los desatas demasiado pronto, el tejido de unión es muy tierno y escaso y se seca cuando parecía que ya estaba brotando. Mantener la atadura más tiempo del recomendado también es perjudicial, ya que estrangula al injerto por dificultar el paso de la savia.

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2.2.3.3. Injerto de estaca lateral subcortical

• La época es a finales de invierno, cuando ya se puede despegar la corteza del patrón con facilidad.

• Se hace un corte en T en una zona lisa de la corteza del patrón y se despega la corteza.

• La púa se prepara haciéndole un bisel sólo por un lado.

• Se introduce la estaca debajo de la corteza levantada.

• Se ata con rafia y se encera con mástic para injertar.

• Tras brotar la yema de la estaca se corta la parte superior del patrón para que toda la savia vaya al injerto y crezca vigoroso. A los 15 días se quita la atadura de rafia para que no estrangule al injerto.

• Este tipo de injerto es válido para todos los árboles y arbustos, tanto de hoja caduca como perenne.

En los de hoja perenne se sustituye la estaca por un esqueje con hojas y se cubre el injerto con una bolsa de plástico transparente durante varias semanas para que no se reseque.

2.2.3.4. Injerto lateral en cuña en Coníferas.

• La época más común para injertar coníferas es durante el invierno.

• Los patrones a los 3 años ya están listos para injertar. Por ejemplo, se usan estos:

- Abies spp. sobre Abies Nordmanniana.

- Cedrus atlantica sobre pie de Cedrus deodara.

- Cupressus sempervirens sobre C. macrocarpa o C. Sempervirens.

- Picea spp. sobre Picea abies.

- Pinus spp. sobre Pinus sylvestris.

• La púa debe ser un brote con una yema terminal y poseer al menos 3 yemas laterales. Se toman del crecimiento del año y de 10-15 centímetros de largo.

• Las púas se mantienen en lugar fresco y húmedo desde la recolección hasta el momento de injertar, por ejemplo, en el frigorífico envuelto con papel de cocina y dentro de una bolsa.

• Se hace un corte inclinado de 2.5 cm de largo en el tallo y otro en la base de este corte para formar una especie de solapa.

• Se unen y ata con cinta de injertos o rafia.

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2.2.3.5. Injerto de hendidura simple

• Este tipo de injerto es el más recomendable cuando el patrón y la púa tienen el mismo diámetro, por ejemplo, entre 0,5 y 1,5 cm.

• Se corta con unas tijeras de podar el patrón a la altura deseada y se le hace un corte a lo largo por el centro de unos 6 cm de longitud.

• La púa debe tener al menos un año, el mismo tamaño que el patrón, y 2 ó 3 yemas. Si el patrón es de mayor diámetro que la púa, sólo pueden estar en contacto por un lado.

• A la púa se le corta un bisel por ambos lados.

• Se introduce de tal manera que la corteza del patrón y la de la estaca se toquen para que el cambium de ambos elementos quede en contacto.

• Se ata la unión con rafia de injertar y se encera con pasta o mástic para injertar. Se pone también cera en la punta de la púa.

• No se desata hasta que las yemas hayan brotado y midan unos 5-10 cm. Más tiempo tampoco es bueno porque puede quedar estrangulado al dificultar el paso de savia.

• Este tipo de injerto lo admiten muchos árboles de hoja caduca. Época de realización: desde mediados hasta finales de invierno.

• También se puede hacer en árboles y arbustos de hoja perenne, en esta caso, desde finales de invierno hasta finales de primavera, usando púas con hojas y cubriendo el injerto con una bolsa de plástico transparente durante varias semanas para evitar su deshidratación.

2.2.3.6. Injerto de hendidura doble

• Es uno de los tipos de injerto más antiguos y de uso más amplio.

• Se utiliza para cambiar de variedad (olivo, vid, peral, manzano, etc.) o para rejuvenecer árboles. Resulta útil en especies de larga vida, como los Manzanos, Perales, Olivos, etc., pero en otras ocasiones es mejor arrancar y plantar árboles nuevos jóvenes que reinjertar la copa.

• Válido para casi todos los árboles de hoja caduca.

• También se puede hacer en árboles y arbustos de hoja perenne, cambiando la púa por una

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ramita o esqueje con hojas y cubriendo el injerto con una bolsa transparente durante varias semanas para que se seque.

• Se practica sobre troncos de árboles pequeños de hasta 10 centímetros de diámetro, o ramas de árboles grandes de hasta 10 cm. de diámetro

• La época va desde mediados hasta finales de invierno o, incluso, en primavera.

• Se preparan dos púas haciéndoles un bisel por ambos lados.

• A la rama o tronco se le practica un corte recto y limpio y un corte longitudinal por el centro.

• Se insertan las dos púas en el tocón, una a cada lado de la hendidura.

• Las púas hay que ajustarlas bien de manera que las cortezas externas de ambas estacas contacten y se alineen con la corteza del patrón, a fin de que los cambiums se fusionen. Esto es vital.

• Se ata y encera todo con mástic o pasta selladora, incluyendo los extremos de ambas estacas.

• Si prenden las dos, se pueden conservar ambas, pero también dejar la mejor colocada o de crecimiento más vigoroso, y a la otra darle una poda dura, pero manteniéndola viva para que ayude a cicatrizar la zona del injerto. Más adelante se eliminará por la base la que no nos interese.

• No se desata el injerto hasta que las yemas hayan brotado y midan unos 5-10 cm. Dejarlo más tiempo tampoco es bueno, porque puede quedar estrangulado al dificultar el paso de savia.

• Puesto que hay que hacer una poda muy fuerte al árbol si se injerta en ramas gruesas, para atenuar este efecto, un año se puede injertar en una rama y al siguiente en otra, por ejemplo.

2.2.3.7. Injerto de corteza o de corona

• Es un tipo de injerto fácil y que tiene buen porcentaje de prendimiento.

• Se utiliza, entre otros posibles fines, para cambiar la variedad en olivo, cítricos, almendro, etc.

• Sirve para cualquier árbol o arbusto de hoja perenne o caduca.

• El patrón puede tener de 3 a 30 cm. de diámetro o incluso más.

• Se hace en primavera, cuando ya está en savia, puesto que es necesario poder separar la corteza en el patrón. • La púa se recolecta en invierno y se mantienen en el frigorífico. Antes de

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guardarlas, se deben mojar un poco, envolver en papel de cocina o de periódico y meter en una bolsa de plástico para evitar que se sequen.

• Si es un árbol de hoja perenne, como el de la fotografía derecha, se recoge y se injerta directamente, sin guardar.

• La púa debe tener 2 ó 3 yemas y 10-12 cm. de longitud.

• El patrón se corta con un serrucho y con un cuchillo se le hace un corte vertical de unos 5 cm en la corteza.

• A la púa un corte en bisel por un lado. Si es de hoja perenne, se le cortan las hojas, excepto la superior, dejando el pecíolo.

• Se insertan 2 púas (o más) por el lado biselado entre la corteza y la madera del patrón.

• Se ata y encera todo el injerto con mastic de injertar, incluyendo la parte superior de la estaquita.

• Si es un árbol de hoja perenne, se moja con agua limpia la púa y se cubre con una bolsa de plástico transparente. Esto mantiene el aire de alrededor húmedo. De no poner una bolsa, la ramita se secaría antes de que se hubiera formado la unión con el patrón. Pasados unos 15 ó 20 días, ya se puede retirar la bolsa porque la unión se habrá verificado. • Se espera a que los brotes de las yemas del injerto tengan unos 10 ó 15 cm y luego se desata la rafia para que no se ahogue por dificultar el paso de savia. • Si el injerto falla, se puede cortar la rama más abajo, si todavía es tiempo para injertar, y repetir.

2.2.3.8. Injerto de aproximación

• Consiste en soldar 2 ramas.

• Se hace a partir de dos plantas enteras.

• Tienen que estar plantadas cerca una de otra, o bien, juntarlas si es que están en macetas; o una plantada en tierra y otra en maceta.

• Se practica un rebaje en cada rama quitando unos centímetros de corteza con un poco de madera. Las partes quitadas deben ser iguales y a la misma altura.

• Luego se unen encajando perfectamente. La clave de los injertos es que queden en contacto el cambium del patrón y el cambium de la variedad. Si se pone sólo un poquito en contacto, el injerto fracasa.

• Se ata y se cubre todo con mástic o cera de injertar.

• Una vez se ha producido la unión entre las dos plantas, se corta por encima de la unión la planta que NO queremos que forme el tronco y las ramas, sino que aporte únicamente sus raíces.

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• Se puede dejar con dos pies (dos sistemas radicales) para dar más vigor al injerto, o se puede cortar el pié de la planta injertada por debajo del injerto. Este pié puede volver a brotar y servir para injertarle otra púa.

• Ejemplos para hacer injerto de aproximación: Mimosa (Acacia dealbata) con otra Acacia que sea resistente a la caliza; Pino piñonero sobre Pino carrasco, etc...

2.2.3.9. Injerto de puente

• Es un tipo especial de injerto que se usa para reparar la corteza lesionada de un tronco.

• Las púas se recolecta en invierno y se mantienen en el frigorífico. Antes de guardarlas, se deben mojar un poco, envolver en papel de cocina o de periódico y meter en una bolsa de plástico para evitar que se sequen.

• Las púas se toman de plantas de 1 año, de 6 a 12 cm. de diámetro y de la misma especie del árbol sobre las que se injertarán o de otra compatible. • El injerto se lleva a cabo a principios de primavera.

• Se recorta la herida hasta llegar a tejido sano y arriba y abajo de la herida se hacen muescas en la corteza de la misma anchura que las púas.

• Las púas se preparan realizándoles cuñas en los 2 extremos.

• Se insertan las púas debajo de cada muesca, quedando la cuña bajo la lengüeta de corteza. Los bordes quedan en contacto y por tanto ambos cambiums, que es fundamental.

• Se clavan con puntillas y se encera todo para que no se seque.

Injertos de yema

2.2.3.10 Injerto de escudete o yema en T • El injerto de yema en T o de escudete es el más utilizado para producir árboles frutales. Se injertan yemas de variedades de árboles sobre patrones obtenidos de semilla (principalmente) o bien, patrones obtenidos de estacas. Por ejemplo, se emplea este método en los viveros para obtener árboles de:

- Almendro

- Cerezo

- Naranjo, Limonero, Mandarino

- Melocotonero

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 91

- Nectarina

- Manzano

- Peral

• En ornamentales es el método para injertar los Rosales.

• Se obtienen altos porcentajes de prendimiento.

• Se hacen desde primavera a otoño, es decir, cuando la corteza del patrón se pueda despegar con facilidad y el árbol esté en crecimiento activo, fluyendo savia.

• El injerto de los cítricos y los rosales típico se hace entrada la primavera y la yema brota el mismo año. Si se hace en verano, se llama "a ojo durmiente", es decir que el escudete agarra pero la yema no brota hasta la primavera del año que viene.

• Sobre el patrón, que puede tener de 5 a 25 cm. de diámetro, se le hace un corte vertical de 2-3 cm. y luego otro horizontal en forma de "T”.

• A la variedad se le saca la yema (ver foto superior). Para ello, se coge la rama con fuerza, se pone el dedo encima de la yema, se aprieta con fuerza hacia dentro y se gira. Si lleva hoja,

córtala para disminuir la transpiración del escudete (ver foto superior).

• Luego se despega la corteza con el cuchillo y se insertar la yema hasta emparejar los 2 cortes horizontales. Los cambiums respectivos se ponen en contacto en estos cortes horizontales.

• Por último, se ata el injerto con cinta plástica transparente o rafia, dejando que asome un poco el trozo de pecíolo y la yema.

• No es necesario encerarlo (ni ningún injerto de yema).

• Se desata a los 15 ó 20 días aproximadamente si ha agarrado. Si se deja mucho tiempo atado se pueden perder por quedar ahogados una vez brotados.

Actividad 22. De acuerdo con el texto, realiza la práctica de injerto de T en plantas de rosal y cítrico.

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 92

2.2.3.11. Injerto de parche

• Es más lento y difícil que el injerto de yema en T, pero se usa con éxito en especies de corteza gruesa como el Nogal, en los que el de T va mal.

• La época mejor es a finales de verano o principios de otoño. También se puede en primavera, pero no es la ideal. La corteza del patrón se pueda despegar con facilidad y el árbol está en vegetación, fluyendo savia.

• Se puede insertar con éxito en patrones de hasta 10 cm. de diámetro. • Se extrae del patrón un parche rectangular de corteza de unos 2,5 cm. de ancho.

• Se extrae de una rama que no deberá tener mucho más de 3 cm. de diámetro.

• La yema en forma de parche rectangular debe tener las mismas medidas que el recuadro abierto en el patrón, es decir, unos 2,5 cm. de ancho para que encaje perfectamente.

• Es importante sacar el parche con un pequeño núcleo de madera que debe quedar dentro de ella si se quiere lograr el prendimiento.

• Se debe insertar de inmediato, por lo que el patrón debe estar preparado previamente.

• Del contacto preciso de los bordes de una y otra parte depende el prendimiento.

• Se ata con cinta de injertos o rafia.

• No es necesario encerarlo (ni ningún injerto de yema).

• Se desata a los 15 días aproximadamente; agarran rápidamente. Si no se desatan se pueden perder por quedar ahogados una vez brotados.

2.2.3.12. Injerto de astilla o injerto de chip

• Este tipo de injerto se hace en primavera, cuando el patrón y el injerto están en pleno crecimiento. También en verano, pero en este caso la yema no se desarrollará hasta la primavera siguiente.

• Es un método de injerto muy bueno para higueras y otros ficus. También sirve para cualquier árbol o arbusto de madera blanda.

• En primer lugar, se hace un corte pequeño en el patrón en forma de lengüeta y luego otro corte de arriba a abajo de unos 3 ó 4 centímetros.

• El escudete con madera o chip debe ser de madera tierna del mismo año, o sea, que aún no esté lignificada del todo.

Extracción de la yema

Patrón

Inserción

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 93

• El chip debe tener la misma forma exacta del corte que hemos hecho en el patrón.

• A continuación se coloca el chip en el corte del patrón, ajustándolo perfectamente para que coincidan las capas.

• Seguidamente se ata el injerto con cinta plástica transparente o con rafia de injertar. No se encera.

• Cuando los brotes del injerto midan 10 ó 15 cm. se corta el patrón por encima del injerto.

2.2.4. CUIDADO DE LAS PLANTAS INJERTADAS.

“La injertación consiste en la fusión de tejidos que se encontraban naturalmente separados, a partir de la aproximación del cambium de cada uno de ellos. En un primer momento, se produce en la zona de unión injerto - portainjerto la proliferación de un tejido indiferenciado, denominado callo, el que luego da origen a los haces vasculares y restantes tejidos que permiten generar una continuidad entre el pie y la variedad.

El proceso de encallado y restitución de la continuidad vascular es lento y delicado y la zona de unión demora tiempo en conectar la variedad con el portainjerto, durante este tiempo debe de tener los siguientes cuidados:

1. Asegurarse que la planta tenga la humedad adecuada.

2. Vigilar el injerto cada semana para controlar su progreso.

3. Eliminar los brotes tiernos que salen por debajo del injerto, para que todos los nutrientes sean dirigidos al mismo.

4. A la hora de realizar el descabezado, hacerlo con una tijera bien afilada para evitar que se desgarre la corteza.

5. Proceder a repetir el injerto si el primero no funcionó (después de ocho a 15 días). Esto se debe hacer antes del descabezado en el caso de los injertos de yema.”

2.2.5. MEJORAMIENTO GENETICO DE PLANTACIONES.

Para mejorar las plantaciones es necesario que al realizar el injerto se seleccionan los materiales vegetativos de plantas madres con excelentes características genéticas y utilizar las técnica de injerto más apropiada para cada especie.

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 94

LISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJO

REPRODUCCIÓN DE PLANTAS MAESTRO INSTITUCION

Centro de Bachillerato Tecnológico

Agropecuario No. 38

ALUMNO TEMA

2.2. Reproducción asexual.

SEMESTRE Y GRUPO FECHA DE APLICACION

III “A” agropecuario

Producto a evaluar: Actividad 19. Investigar ventajas y desventajas de la reproducción asexual,

elabore un mapa mental.

Indicadores Cumplimiento Ejecución Observaciones

Si No Ponderación Calif.

1 Entrego puntualmente. 1.00

2 Presenta limpieza y orden. 1.00

3 El mapa incluye conectores. 2.00

4 La información tiene secuencia

lógica.

2.00

5 Determina claramente las ventajas. 2.00

6 Determina claramente las

desventajas.

2.00

Calificación de esta evaluación:

EVALUADOR Tabla de ponderación

1= Si cumplió 0 = No Cumplió

La calificación se obtiene multiplicando el

cumplimiento por la ponderación

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 95

GUIA DE OBSERVACIONGUIA DE OBSERVACIONGUIA DE OBSERVACIONGUIA DE OBSERVACION

REPRODUCCIÓN DE PLANTAS MAESTRO INSTITUCION

Centro de Bachillerato Tecnológico

Agropecuario No. 38

ALUMNO TEMA

2.2.1. Método de propagación por estacado

SEMESTRE Y GRUPO FECHA DE APLICACION

III “A” agropecuario

Desempeño a evaluar: Actividad 20. De acuerdo con el texto, realice la práctica de estacado con

árboles frutales y ornato de temporada.

Indicadores Cumplimi Ejecución Observaciones

Si No Ponde Calif.

1 Presenta limpieza y orden. 1.00

2 Selecciono las herramientas adecuadas. 1.00

3 Selecciono el material vegetativo idóneo para

realizar las estacas.

1.00

4 El tamaño y grosor de las estacas son los

especificados por la metodología.

1.00

5 Los cortes en la estaca son uno recto en la

parte superior y otro inclinado en la base.

1.00

6 Utiliza el sustrato adecuado para el enraizado

en el almacigo.

1.00

7 Efectuó los riegos con frecuencia 1.00

8 Observo mediante muestreo el porcentaje de

enraizado, para llevar a trasplante.

1.00

9 Coloco las estacas enraizadas en macetas, con

el sustrato adecuado.

1.00

10 Lo coloco en una plantabanda en el vivero para

su desarrollo.

1.00

Calificación de esta evaluación:

EVALUADOR Tabla de ponderación

1= Si cumplió 0 = No Cumplió

La calificación se obtiene multiplicando el

cumplimiento por la ponderación

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 96

GUIA DE OBSERVACIONGUIA DE OBSERVACIONGUIA DE OBSERVACIONGUIA DE OBSERVACION

REPRODUCCIÓN DE PLANTAS MAESTRO INSTITUCION

Centro de Bachillerato Tecnológico

Agropecuario No. 38

ALUMNO TEMA

2.2.2. Acodo aéreo y subterraneo

SEMESTRE Y GRUPO FECHA DE APLICACION

III “A” agropecuario

Desempeño a evaluar Actividad 21. De acuerdo con el texto, realiza la práctica de acodo aéreo en

arboles de ornato Bugambilia o ficus.

Indicadores Cumplimi Ejecución Observaciones

Si No Ponde Calif.

1 Presenta limpieza y orden. 1.00

2 Selecciono las herramientas y materiales

adecuados.

1.00

3 Selecciono el material vegetativo idóneo para

realizar el acodo.

1.00

4 El tamaño y grosor de la rama son los

especificados por la metodología.

1.00

5 Los cortes en la rama es el correcto. 1.00

6 Utiliza el sustrato adecuado para el enraizado

del acodo.

1.00

7 Coloco el sustrato en el corte e hizo los

amarres de la forma sugerida por el docente.

1.00

8 Observo mediante muestreo el porcentaje de

enraizado, para determinar separación de la

planta madre..

1.00

9 Coloco las estacas enraizadas en macetas, con

el sustrato adecuado.

1.00

10 Lo coloco en una plantabanda en el vivero para

su desarrollo.

1.00

Calificación de esta evaluación:

EVALUADOR Tabla de ponderación

1= Si cumplió 0 = No Cumplió

La calificación se obtiene multiplicando el

cumplimiento por la ponderación

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 97

GUIA DE OBSERVACIONGUIA DE OBSERVACIONGUIA DE OBSERVACIONGUIA DE OBSERVACION

REPRODUCCIÓN DE PLANTAS MAESTRO INSTITUCION

Centro de Bachillerato Tecnológico Agropecuario

No. 38

ALUMNO TEMA

2.2.3. Propagación por injerto de yema y pua.

SEMESTRE Y GRUPO FECHA DE APLICACION

III “A” agropecuario

Desempeño a evaluar Actividad 22. De acuerdo con el texto, realiza la práctica de injerto de T en

plantas de rosal y cítrico.

Indicadores Cumplimi Ejecución Observaciones

Si No Ponde Calif.

1 Presenta limpieza y orden. 1.00

2 Selecciono las herramientas y materiales

adecuados.

1.00

3 Selecciono el material vegetativo idóneo para

realizar el injerto.

1.00

4 Antes de realizar los cortes elimino brotes del

patrón.

1.00

5 Realizo el corte de la yema correctamente. 2.00

6 Realizo el corte de T correctamente en el

patrón.

1.00

7 Realizo correctamente el amarre del injerto. 1.00

8 Realizo los riegos frecuentes de la maceta. 1.00

9 Observo porcentaje de prendimiento en los

injertos.

1.00

Calificación de esta evaluación:

EVALUADOR Tabla de ponderación

1= Si cumplió 0 = No Cumplió

La calificación se obtiene multiplicando el

cumplimiento por la ponderación

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 98

II.

ESTRUCTURAS Y MEDIOS PARA

LA PROPAGACION ASEXUAL.

2.3.

El vivero.

2.3.1.

Factores

abióticos a

considerar en

un vivero.

2.3.2.

Construcción

de un vivero.

2.3.3.

Producción

escalonada de

plantas.

2.3.4.

Manejo del

vivero.

Una es el

Donde existen factores

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 99

Evaluación Evaluación Evaluación Evaluación DIAGNOSTICA.DIAGNOSTICA.DIAGNOSTICA.DIAGNOSTICA.

1.- ¿Qué consideras que es un vivero?

2.- ¿Qué considera que es un vivero temporal?

3.- ¿Cómo es el manejo de las plantas en un vivero?

4.- ¿Qué partes componen un vivero?

5.- ¿Ventajas de producir plantas en un contenedor?

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 100

2.3. EL VIVERO.

Se define al establecimiento dedicado a la producción, comercialización o introducción de plantas o sus partes destinadas a la propagación o multiplicación.

Las plantas producidas se destinan para la venta o para nuevas plantaciones (frutales o forestales).

El vivero facilita el control de la temperatura, humedad, insectos y enfermedades, durante la germinación de la semilla y el crecimiento de la plántula, lo que permite lograr mayor cantidad de plantas y seleccionar las mejores para llevar a campo.

Existen diferentes tipos de viveros de acuerdo a las especies que se cultivan.

Vivero temporal o volante. Se establece en áreas de difícil acceso, pero están muy cercanos a las zonas donde se realizará la plantación; su producción predominante es la de plantas forestales. Generalmente se ubican en claros del bosque y trabajan por periodos cortos (de 2 a 4 años cuando mucho) e intermitentes, ya que la producción debe coincidir con la temporada de lluvias. Para su funcionamiento se requiere poca infraestructura y la inversión es baja. Su desventaja radica en que, como están situados en áreas de difícil acceso, no son fáciles de vigilar y por lo tanto la producción queda más expuesta a daños por animales. Además, por sus características de infraestructura, sólo pueden implementarse en zonas de bosques templados y selvas húmedas.

Vivero permanente. Es la extensión de terreno dedicado a la obtención de plantas con diferentes fines (reforestación, frutales y ornato), ya sea en áreas rurales o centros urbanos. Su instalación requiere una inversión mayor en equipo, mano de obra y extensión del terreno, y debe contar con vías de acceso que permitan satisfacer oportunamente la demanda de plantas.

2.3.1. FACTORES ABIOTICOS A CONSIDERAR EN UN VIVERO.

“Las enfermedades abióticas resultan de la interacción prolongada entre la planta y uno o más factores como la falta de espacio para el crecimiento de la raíz, la presencia de niveles crónicos o agudos de contaminantes del aire o el agua, o la presencia de condiciones extremas de humedad, calor, luz, pH del suelo, y nutrientes. La mayoría de enfermedades abióticas causan síntomas generales que se manifiestan en una gran parte del arbusto o árbol. Marchitez, amarillamiento, desarrollo de hojas más pequeñas de lo normal, crecimiento retardado, muerte de ramas, formación de brotes de agua (ramas epicórmicas), coloración de otoño prematura de las hojas y producción de semillas mas abundante de lo normal son algunos de los síntomas característicos de las enfermedades abióticas. A veces síntomas similares se desarrollan en plantas de diferentes especies en una misma localidad. Esta es otra indicación de que factores abióticos y no patógenos vivos están afectando la salud de la planta.”

Actividad 23. De manera grupal visita un vivero y observa ubicación, materiales de construcción, partes que lo componen, tipos de plantas que producen, Elabora un resumen.

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 101

2.3.2. CONSTRUCCION DE UN VIVERO.

Se necesitan algunos pasos para construir viveros que puedan desarrollar su función en su totalidad y la máxima perfección. La construcción de viveros tiene diferentes etapas y deben cumplir con diferentes requisitos. Lo primero y principal que se debe hacer cuando se plantea la construcción de viveros es encontrar la ubicación perfecta para realizar el trabajo. Dependiendo el tipo de vivero que sea, permanente o momentáneo, su ubicación aumenta en importancia.

“La ubicación del vivero debe estar cerca de los materiales que se van a necesitar a lo largo de toda la construcción y durante el funcionamiento del mismo, ya que la utilización de todo tipo de materiales deben estar disponibles al lugar y con más razón, en el caso de que no se contara con un medio de transporte para hacer llegar las cosas al lugar. También se debe considerar la distancia a la que se encuentra la construcción del vivero del lugar al cual vamos a trasladar las plantaciones. Esto sería desde la venta al público hasta el traslado de pequeños árboles para que se desarrollen en su ambiente natural. Los viveros también deben contar con un cuidador responsable, ante cualquier situación que se pueda dar en el lugar, así puede tomar las medidas necesarias frente a la dificultad por la que esté pasando el vivero. El sitio donde se escoja para la construcción de viveros debe ser un sitio donde las condiciones climáticas no sea muy desfavorables y donde el suelo y la aplicación de los sistemas de riego sean accesibles y el drenaje sea bueno para el cultivo.

Para la construcción de viveros, podemos separar en partes y describir así cada lugar del mismo. Tenemos los almácigos, los cuales son canteros especiales, que se utilizan para poner las semillas que luego van a ser trasplantadas a los envases cuando ya tengan un grado de crecimiento. Luego los canteros de envases, es el lugar más amplio de todo el vivero, en el cual se colocan las plantitas que estaban en los almácigos. Estos canteros cumplen con las características de profundidad dependiendo el tipo de tierra que se utilice para el cultivo. También están las calles y sendas, estos son los espacios que hay entre los canteros que se utilizan para el paso de carretillas, o de las mismas personas para el control de los cultivos. La media sombra por su parte, tiene la función de proteger los cultivos de los rayos del sol, principalmente cuando los cultivos se encuentran en las primera etapas de su crecimiento, que es cuando más cuidado necesitan para el desarrollo y que el sol no provoque la muerte de estos. Estas son las partes primordiales en la construcción de los vivero, donde específicamente se realiza la labor de cultivo, pero también hay otras partes que forman parte del lugar, como la utilización de árboles a los alrededores del vivero para que sirvan de protección de los vientos más cálidos que queman las plantaciones y la utilización de los cercos que delimitan el lugar correspondiente al vivero y además evita el ingreso de los animales que intenta posiblemente alimentarse de las plantaciones que se encuentran en el vivero.”

Actividad 24. Construye una maqueta de un vivero, utilizando materiales apropiados y partes que lo componen, de acuerdo a las

especificaciones técnicas.

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 102

“La mala elección del sitio donde se establece el vivero repercute directamente en una baja calidad de la producción de plántulas, lo cual a la larga se reflejará en una alta mortalidad en la plantación. Por ello es fundamental la selección del sitio donde se establecerá el vivero. Las condiciones del sitio son más determinantes cuando la producción se obtiene a raíz desnuda (por camas de crecimiento). Cuando la producción se hace por medio de envases de crecimiento es importante considerar los factores que a continuación se mencionan.

Ubicación, drenaje y suelo del vivero

Al establecerse un vivero deben considerarse cuatro puntos principales: que sea difícil acceso, el suministro de agua, su orientación en el terreno y la topografía de éste. De los dos últimos aspectos depende, en gran parte, el buen drenaje del vivero y que se minimice la erosión. El drenaje también depende de la textura del suelo del lugar, por lo que debe cuidarse su relación con la pendiente del sitio. En suelos de textura fina la pendiente deberá ser suave (de 2 a 3%) y en el caso de suelos arenosos y profundos se recomienda nivelar el terreno.

La textura del suelo es muy importante en el cultivo de plantas a raíz desnuda, ya que además de regular el drenaje y la erosión deberá facilitar la extracción de las plántulas y promover el crecimiento vegetativo. Un suelo bien drenado asegura su aireación, por lo que es conveniente verificar que no existan capas endurecidas en los primeros 75 cm de profundidad y que el suelo sea profundo, por lo menos 120 centímetros.

Independientemente del método de propagación que se emplee dentro del vivero (raíz desnuda, almácigos o envases individuales) es importante verificar que tan ácido o básico es el suelo (pH), su textura y fertilidad para los requerimientos de la especie que se va a propagar. El pH se encuentra muy relacionado con el contenido de materia orgánica y disponibilidad de nutrientes necesarios para el buen desarrollo de las plantas; por esto, el rango de pH más recomendable es de neutro (pH=7) a ligeramente ácido (pH=6.5) o ligeramente alcalino (pH=7.5).

Abastecimiento de agua y calidad de agua de riego

Los viveros necesitan un suministro de agua abundante y constante, ya que las plantas que se producen se encuentran en pleno desarrollo y un inadecuado abastecimiento podría provocar incluso la muerte por marchitamiento.

La calidad del agua de riego es importante. Cuando contiene como elementos principales calcio y magnesio (agua dura) ayuda a crear en el suelo una buena estructura. En cambio, el agua que tiene gran cantidad de sodio y bajos contenidos de calcio y magnesio provoca que la arcilla y la materia orgánica del suelo absorban rápidamente el sodio. Esto promueve una estructura edáfica indeseable, ya que el suelo disperso se asienta abajo de la superficie y forma una capa (de 10 a 20 cm de grosor) que impide el paso de las raíces o del agua. También un alto contenido de sodio en el agua de riego causa quemaduras en las hojas de algunas especies al ser absorbido por las plantas. La cantidad de sólidos en suspensión en el agua también modifica las características del suelo, ya que si tiene contenidos elevados de limo o coloides puede causar la compactación superficial del suelo reduciendo su

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 103

permeabilidad al agua y la aireación. También hay otros elementos que pueden estar presentes en cantidades tóxicas y afectar al cultivo, como el boro o algunos contaminantes.

Clima

Es muy importante conocer qué tipo de plantas se encuentran adaptadas a las condiciones climatológicas que prevalecen en la zona donde el vivero se va a establecer. Asimismo, es necesario contar con los registros climáticos que indiquen las épocas de riesgo, como las heladas, las sequías y la cantidad y distribución del periodo de lluvias. Éstos pueden ser complementados o sustituidos con la información climática que los habitantes de la zona manejan tradicionalmente. Con base en estos datos se logra una planeación del momento adecuado para llevar a cabo las labores del vivero (siembras, trasplantes, podas, fumigaciones, etcétera).

Construcción del vivero

Una vez que se elige el terreno donde se construirá el vivero se inicia una serie de actividades relacionadas con la instalación y construcción de la infraestructura necesaria para su funcionamiento. Estas actividades, varían en función del tipo de plantas que se desea propagar y de los recursos económicos disponibles. Básicamente el vivero debe contar con las siguientes instalaciones: semilleros, área de envasado, platabandas (estructuras que sombrean a las plantas), lotes de crecimiento, bodega y equipo e infraestructura de riego.

Criterios a considerar para el establecimiento de un vivero

La limpieza del terreno es una actividad muy importante ya que facilita las labores en el vivero, evita la competencia de la vegetación original del terreno con las plantas que se producen, y facilita el control de insectos (hormigas, grillos, etcétera).

Antes de iniciar la producción de plántulas es necesario detectar la presencia de malezas, nematodos, hongos, parásitos e insectos, principalmente cuando se pretende establecer el vivero en terrenos que con anterioridad se dedicaron a la agricultura. Esto permitirá elegir las técnicas de manejo y fumigación necesarias que aseguren la producción exitosa de plántulas con alta calidad, sobre todo en cultivos a pie desnudo.”

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 104

2.3.3. PRODUCCIÓN ESCALONADA DE PLANTAS.

La producción de plantas en el vivero va hacer de acuerdo a las necesidades de plantación y de acuerdo al crecimiento de la planta a desarrollar, tomando en cuenta tiempo en que las plantas permanecerán en el vivero y muy importante también el tamaño del vivero con el que contemos.

“Para calcular la cantidad de semilla se toman en cuenta los siguientes factores: Área a plantar, Lugar, especie.

Con estos factores podemos saber cuántas plantas vamos a producir en el vivero. Para ello se debe conocer el número de semillas por unidad de peso de la especie o especies a plantar.

Por ejemplo: Cuánta semillas se necesitará para reforestar 100 hectáreas con Pinus radiata.

Distanciamiento de plantación: 2.5 x 2.0 m

Determinación de semillas por hectárea

5 m2 ----------- 1 semilla

1 ha ó 10, 000 m2 ----------- X semillas

X = 1 semilla x 10, 000m2 =

5 m2

X = 2, 000 semillas/ha

Cantidad de semillas para 100 hectárea

1 ha -------------- 2 000 semillas

100 ha-------------- X semillas

X = 2, 000 semillas x 100 ha

1 h

X = 200, 000 semillas para 100 ha

Cantidad de semillas viables.

Según ADEFOR en Cajamarca - Perú por cada kg. De semillas de Pinus radiata, 25, 000 semillas son viables entonces:

1 kg. ----------------- 25, 000 semillas viables

X kg. ----------------- 200, 000 semillas

X = 1kg x 200, 000 semillas

25 000 semillas

X = 8 kg. de semillas para 100 ha.”

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 105

2.3.4. MANEJO DEL VIVERO.

“Riego

Las plantas necesitan agua para transportar los nutrientes y alimentos. Es conveniente regar al amanecer y al atardecer cuando las temperaturas son más bajas y así evitar que el agua se evapore.

Se recomienda que los almácigos se rieguen frecuentemente y con una lluvia fina, y las plantas de mayor tamaño que poseen raíz más profunda, con menor frecuencia y más cantidad de agua.

La incorporación de sistemas de riego por aspersión o goteo hace más eficiente el uso del agua y libera tiempo del productor para dedicarlo a otras actividades.

Control de malezas.

Las malezas nos deben preocupar solamente cuando están presentes, prevenir es mejor que curar, por ello hay que impedir que las malezas entren a nuestro vivero adoptando las siguientes prácticas de prevención:

a) Usar semilla y material de propagación limpios (extremar los cuidados con semilla y plántulas que se traen de otras regiones).

b) Usar equipos limpios (extremar los cuidados con las herramientas que usamos porque podemos diseminar y difundir malezas).

c) Conservar linderos limpios (extremar los cuidados con las malezas que se dispersan por acción del viento).

f) No usar tierra, arena infestadas con malezas (se puede solarizar o esterilizar).

g) No usar estiércol contaminado (dejar que fermente y así se favorece la muerte de las semillas y otros propágulos de malezas).

h) Vigilar productos de viveros

Cuando la maleza está en nuestro vivero hay que recurrir a métodos de control, que pueden ser manuales, sin la ayuda de herramientas mecánicas, o valernos de alguna para cortar las mismas.

También están los métodos químicos, en el cual según el tipo de maleza que aparezca será el herbicida.

Para esto último sólo la consulta técnica nos informará sobre aquellos productos, que lamentablemente no son muchos, registrados para su uso en viveros de plantas ornamentales.

Poda de raíces

Si los envases (sobre todo las bolsas) que están en tierra se dejan mucho tiempo, la raíz principal “sale” del envase y empieza a crecer en la cama de crecimiento, esto ocasiona un debilitamiento de la planta cuando se traslada. Para evitarlo, se pueden poner sobre alguna estructura que las separe del suelo (por ejemplo:

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 106

polietileno). Otra opción es mover cada tanto las plantitas de lugar, y podar las raíces que asoman del envase. Con esto se logra frenar el crecimiento de la raíz principal, y aumentar el crecimiento de las raíces más finitas, para que se tramen bien y ocupen todo el sustrato del envase. La poda de raíces sirve también para eliminar las raíces enruladas en el fondo de los envases.

Fertilización

Sirve para mejorar el crecimiento de las plantas, o ayudarlas a recuperarse de daños (como la poda de raíces, vientos fuertes, heladas), es recomendable utilizar abonos orgánicos como el lombricomposta que contiene una importante cantidad y variedad de nutrientes, se aconseja utilizarlo mezclado con tierra (50% de tierra y 50% de lombricomposta)

Si se usan sustancias minerales es aconsejable disolver en agua antes de aplicar.

Sombreado

En épocas de sol fuerte, es necesario brindar a los almácigos y canteros una media sombra, para proteger a las plantas de quemaduras y para conservar más agua al reducir la evaporación. No se debe exagerar ya que cuando hay demasiada sombra las plantas no crecen bien, se ponen amarillas, aparecen enfermedades, y a veces en busca de luz crecen finitas, largas y débiles. La media sombra debería reducir la cantidad de luz a la mitad entre la sombra total y rayo del sol.

Protección contra heladas

Aunque lo ideal es que en el vivero se cultiven especies adaptadas al clima de la zona, muchas veces hay plantas susceptibles a heladas. Por lo que es necesario contar siempre con algún recurso de protección contra el frío para proteger a las plantas. Cuando se espera una helada, hay que mantener bien regado el suelo para que acumule calor durante el día y no baje tanto su temperatura en la noche. Se pueden armar túneles bajos con arcos de hierro sobre los canteros, que se cubren al atardecer con polietileno, tratando de que queden bien cerrados también en los extremos. A la mañana siguiente cuando el sol comienza a calentar, los túneles deben abrirse. El polietileno se fija al suelo con grampitas de alambre fáciles de fijar y quitar. Para no perforar tantas veces el polietileno, un lado de los túneles puede quedar fijo. Otra técnica disponible es cubrir las plantas durante la noche con una tela llamada manta térmica, que es muy liviana y se apoya directamente sobre ellas, fijándola en los extremos con grampitas de alambre.

Actividad 25. De acuerdo con el texto, elabora un cuadro sinóptico, del manejo de plantas en un vivero

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 107

Tutorado

En el caso de plantas trepadoras o de gran porte, para evitar el vuelco y permitir la circulación del aire, se coloca un tutor que generalmente es de caña sobre el cual se ata la planta sin apretar demasiado para no estrangularla.

Tutorado con cañas

Tutorado en macetas

Manejo de plagas y enfermedades

Medidas preventivas

Se trata de poner en práctica medidas necesarias para impedir la aparición de plagas y enfermedades. Se tiende a aumentar la resistencia individual de las plantas y crear las condiciones desfavorables para el desarrollo de las plagas.

Diversidad

Significa cultivar distintas especies y variedades de plantas. Es importante para reducir la posibilidad de aparición de enfermedades y disminuir el riesgo, ya que si se presenta un problema grave en una especie probablemente queden otras sin dañarse y no se perderá todo.

También es bueno incorporar aromáticas que nos ayudan a repeler los insectos y las flores amarillas que atraen a ciertos insectos y así se evita que ataquen las plantas de vivero.

Rotaciones adecuadas

Hay que tener cuidado de no suceder cultivos que estén emparentados. Cuando algunos hongos atacan un cultivo, posteriormente quedan en el suelo formas de resistencia de la enfermedad hasta la próxima temporada. Si se vuelve a plantar una especie de la misma familia, ese hongo puede atacar el nuevo cultivo. Al contrario si se siembra una especie de otra familia el hongo no va a encontrar hospedero y va a morir. Lo mismo pasa con los insectos.

Abonos Compuestos

Sirve para mantener e incluso en algunos casos aumentar la fertilidad de la tierra. Con esto se logra que la planta sea fuerte y capaz de resistir mejor el ataque de plagas y enfermedades. La buena nutrición le da rusticidad.

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 108

Distancias adecuadas

Entre las plantas, dejar espacio suficiente no sólo para que ellas alcancen el máximo tamaño, sino también para que permita la circulación de aire y no se acumule humedad que favorece la aparición y propagación de algunos hongos.

Semillas y plántulas sanas

Es importante que las semillas estén libres de patógenos, lo que permitirá evitar la difusión de determinadas enfermedades, que pueden afectar la germinación y la vida de la planta. Evitar el exceso de agua y el déficit para que las semillas no tarden mucho en germinar y estén expuestas a ataques de gusanos de suelo o patógenos.

Si se observan en el almácigo plantas muy atacadas conviene no trasplantarlas y eliminarlas directamente.

Destrucción de plantas enfermas

Todas las plantas que presenten síntomas de enfermedad o tengan un ataque intenso de insectos deberán ser arrancadas y quemadas o enterradas fuera del perímetro del vivero, para que no se propaguen a otras plantas. NO DEBEN usarse como abono.

Muestreo y monitoreo

Es importante observar periódicamente el vivero para detectar la presencia de las plagas y/o enfermedades, identificarlas y según la cantidad presente tomar decisiones de manejo. Si no conoce la plaga o enfermedad visite el INTA más cercano para que lo orienten en el reconocimiento y manejo de la misma. Es importante que lleve muestras del material afectado.”

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 109

LISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJOLISTA DE COTEJO

REPRODUCCIÓN DE PLANTAS MAESTRO INSTITUCION

Centro de Bachillerato Tecnológico

Agropecuario No. 38

ALUMNO TEMA

2.3. El vivero.

SEMESTRE Y GRUPO FECHA DE APLICACION

III “A” agropecuario

Producto a evaluar: Actividad 23. De manera grupal visita un vivero y observa ubicación, materiales

de construcción, partes que lo componen, tipos de plantas que producen, Elabora un resumen.

Indicadores Cumplimiento Ejecución Observaciones

Si No Ponderación Calif.

1 Entrego puntualmente. 1.00

2 Presenta limpieza y orden. 1.00

3 Mostro interés en el recorrido 2.00

4 Realizo preguntas al instructor. 2.00

5 Mostro disciplina en el recorrido 2.00

6 Entrego resumen. 2.00

Calificación de esta evaluación:

EVALUADOR Tabla de ponderación

1= Si cumplió 0 = No Cumplió

La calificación se obtiene multiplicando el

cumplimiento por la ponderación

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 110

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REPRODUCCIÓN DE PLANTAS MAESTRO INSTITUCION

Centro de Bachillerato Tecnológico

Agropecuario No. 38

ALUMNO TEMA

2.3.2. Construcción de un vivero.

SEMESTRE Y GRUPO FECHA DE APLICACION

III “A” agropecuario

Producto a evaluar: Actividad 24. Construye una maqueta de un vivero, utilizando materiales

apropiados y partes que lo componen, de acuerdo a las especificaciones técnicas.

Indicadores Cumplimiento Ejecución Observaciones

Si No Ponderación Calif.

1 Entrego puntualmente. 1.00

2 Lo realizo a escala. 1.00

3 Utilizo materiales apropiados. 2.00

4 Coloco todas sus partes. 2.00

5 Mostro trabajo en equipo 2.00

6 Hay limpieza y orden en el trabajo. 2.00

Calificación de esta evaluación:

EVALUADOR Tabla de ponderación

1= Si cumplió 0 = No Cumplió

La calificación se obtiene multiplicando el

cumplimiento por la ponderación

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 111

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REPRODUCCIÓN DE PLANTAS

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Agropecuario No. 38

ALUMNO TEMA

2.3.4. Manejo del vivero.

SEMESTRE Y GRUPO FECHA DE APLICACION

III “A” agropecuario

Producto a evaluar: Actividad 25. De acuerdo con el texto, elabora un cuadro sinóptico, del manejo

de plantas en un vivero

Indicadores Cumplimiento Ejecución Observaciones

Si No Ponderación Calif.

1 Lo entrego puntualmente. 1.00

2 Presenta buena ortografía 1.00

3 Utiliza los datos fundamentales 2.00

4 Existe articulación entre los datos 2.00

5 Lleva una secuencia cronológica 2.00

6 Es fácilmente comprensible 2.00

Calificación de esta evaluación:

EVALUADOR Tabla de ponderación

1= Si cumplió 0 = No Cumplió

La calificación se obtiene multiplicando el

cumplimiento por la ponderación

Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 112

BIBLIOGRAFIA

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2. Wilkipedia, la enciclopedia libre, La meiosis, http://es.wikipedia.org/wiki/Meiosis ,(acceso 9 de septiembre del 2009)

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Ing. Ramón Carlos Sánchez Barrón 113

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19. www.jardinyplantas.com, Beneficios de la construcción de viveros, http://www.jardinyplantas.com/viveros/construccion-de-viveros.html, (Acceso 13 de octubre 2009).

20. www.bibliotecadigital.ilse.edu.mx, Los viveros, http://bibliotecadigital.ilce.edu.mx/sites/ciencia/volumen3/ciencia3/157/htm/sec_7.htm, (Acceso 13 de octubre 2009.

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