jurnal scientia vol 1, no 2

8/10/2019 Jurnal Scientia Vol 1, No 2

1/67


2/67


3/67

SSCCIIEENNTTIIAAJJUURRNN AALL FFAARRMMAASSII DDAANN KKEESSEEHHAATTAANN

TTEERRBBIITTDDUUAAKKAALLIISSEETTAAHHUUNN

SSEETTIIAAPPBBUULLAANNFFEEBBRRUUAARRIIDDAANNAAGGUUSSTTUUSS

DD EEWW AA NN RR EEDD AA KK SSII

Penanggung Jawab :

Prof. H. Syahriar Harun, Apt

Pemimpin Umum :

DR.H.M. Husni Mukhtar,MS, DEA, Apt

Redaktur Pelaksana :

Verawati, M.Farm, Apt

Eka Fitrianda, M.Farm, Apt

Sekretariat :Afdhil Arel, S.Farm, Apt

Khairul

Dewan Penyunting :

Prof.H. Syahriar Harun,Apt

Prof.DR.H. Amri

Bakhtiar,MS,DESS,Apt

Prof.DR.H. Almahdy, MS, Apt

DR.H.M. Husni Mukhtar, MS, DEA, Apt

Drs. Yufri Aldi, MSi, Apt

Drs. B.A. Martinus , MSi

Hj. Fifi Harmely, M.Farm ,AptFarida Rahim, M.Farm, Apt

Revi Yenti, M.Si, Apt

Verawati, M.Farm, Apt

Ria Afrianti, M.Farm ,AptEka Fitrianda, M.Farm, Apt

Penerbit :

Sekolah Tinggi Farmasi Indonesia (STIFI) Perintis Padang

ISSN : 2087-5045

Alamat Redaksi/Tata Usaha

STIFI Perintis

Jl. Adinegoro Km. 17 Simp. Kalumpang Lubuk Buaya Padang

Telp. (0751)482171, Fax. (0751)484522e-mail : [email protected]

website : www.stifi-padang.ac.id


4/67

SSCCIIEENNTTIIAAVVOOLL..11NNOO..22,,AAGGUUSSTTUUSS 22001111

IISSSSNN::22008877--55004455

1

MEMBANDINGKAN KADAR DAN LAJU DISOLUSI TABLET ASAM

MEFENAMAT NAMA DAGANG DAN NAMA GENERIK

Revi Yenti, Firmansyah, Ayu Dwi Utami

STIFI Perintis Padang

Abstract

The determination of concentration and dissolution of mefenamic acid in trade name andgeneric name tablet has been done. Dissolution test was done in phospate buffer with pH 7,2 at 50

rpm for 60 minute using paddle method, while the concentration of mefenamic acid was measuredusing spectrophotometry at 285 nm. It was found that all of tested product were qualified, that is80% of the tablet were dissolve within 30 minutes and fullfil requirement of concentration for

mefenamic acid in tablet.

Keywords : mefenamic acid, dissolution test, spectrophotometry

PENDAHULUAN

Banyaknya pabrik obat yangmemproduksi obat dengan nama dagang

yang berbeda dan berbagai formula yangberbeda maka dibutuh kan suatu pedoman

pengobatan yang bertujuan untukmeningkatkan efektifitas dan keamanansuatu obat. Jika terjadi penyimpangankadar dari yang dicantumkan (zat

khasiatnya sangat rendah bahkan ada yangsama sekali tidak mengandung zatkhasiat), maka perlu dilakukan intervensi

regulasi misalnya dengan membatasi ataumenarik obat yang memang terbukti tidakbermanfaat atau obat-obat palsu.(Anonim,

2000).

Pemakaian bahan baku dan bahanpembantu yang bervariasi serta berbagaimacam formula dapat menunjukan

perbedaan sifat karakter istik fisik padatablet dan berpengaruh terhadap stabilitaskimia, fisika dan biofarmasetiknya. Jenis

dan jumlah bahan penbantu yangdigunakan dalam pembuatan tabletharuslah dipilih dengan tepat, walaupun

bahan tersebut tidak berkhasiat tetapidapat berpengaruh terhadap ketersediaanhayati obat dalam tubuh.

Anti Inflamasi Non Steroid(AINS) merupakan salah satu golonganobat yang banyak digunakan oleh

masyarakat baik yang diresepkan olehdokter maupun yang dijual bebas.

Golongan obat AINS dapat digunakanuntuk pengobatan inflamasi dan nyeri.

Dari suatu pengukuran kuantitaspenggunaan obat golongan AINS (dengan4 jenis obat) yang dilakukan oleh penelitisebelumnya didapatkan data bahwa

golongan obat AINS yang paling banyakdigunakan adalah Asam Mefenamat(46,46%) dan yang paling rendah

penggunaannya adalah ketoprofen (5,07%)(Anonim, 2009).

Oleh karena itu berdasarkan uraiandi atas peniliti ingin untuk melihat tingkat

keamanan tablet asam mefenamat denganmengetahui berapa kadar dan laju disolusiasam mefenamat dalam tablet dengan nama

dagang dan obat generik yang beredardipasaran.

METODE PENELITIAN

Alat

Desintegrator (pharmetest),hardnesstester, alat disolusi (pharmatest),


5/67


IISSSSNN::22008877--55004455

2

friabilator (pharmatest), spektrofotometerUV-Visibel (Shimadzu), timbangan digitaldan seperangkat alat gelas standar

laboratorium,

Bahan

Tablet asam mefenamat dengannama dagang dan nama generik, asammefenamat baku, larutan alkali hidroksida

(NaOH), dapar pospat 0,2M pH 7,2 danaquadest.

Pengambilan Sampel Tablet Asam

Mefenamat.

Pengambilan sampel dari satuapotik yang kemudian tiap jenis tablet

diberi kode OPA (Obat Dagang A), OPB(Obat Dagang B), dan OPC (Obat DagangC) . OGA (Obat Generik A), OGB (Obat

Generik B), dan OGC (Obat Generik C).

Pemeriksaan Kadar tablet

Ditimbang 20 tablet asam

mefenamat kemudian gerus, timbangsetara dengan 20 mg asam mefenamat,

masukkan kedalam labu ukur 100 ml,larutkan dengan NaOH 0,2 N, tambahkandapar fosfat 0,2 M hingga tanda batas

aduk sampai larut. Kemudian dipipet 10ml, masukkan kedalam labu ukur 100 ml,tambahkan dapar fosfat 0,2 M hingga

tanda batas, sehingga didapat konsentrasi20 g/ml, ukur serapan larutan padapanjang gelombang maksimum asam

mefenamat yang sudah ditentukan

sebelumnya. Kemudian hitung kadar yangdiperoleh.

Pemeriksaan Keseragaman Bobot

Tablet

Sejumlah 10 tablet yang telahdibersihkan dari debu ditimbang satupersatu dan dihitung bobot rata-rata tab let

dan standar deviasi.

Pemeriksaan Kekerasan Tablet

Pemeriksaan dilakukan terhadap

10 tablet, dimana tiap tablet diletakkanpada alat sehingga skala menunjukkanangka nol, kemudian putar penekan maka

tablet akan tertekan dan akhirnya pecah.Tepat pada saat pecahnya tablet skala

dibaca dan dicatat sebagai kekerasantablet. Kekerasan tablet diukur dalamsatuan kg/cm2.

Pemeriksaan Kerenyahan Tablet

Dilakukan terhadap 20 tablet yangbebas dar i debu ditimbang, kemudiandimasukkan kedalam alat, jalankan alat

biarkan berputar selama 4 menit (100rpm), keluarkan tablet tersebut danbersihkan dari debu dan ditimbang

kembali dan hitung besarnya kerapuhantablet dalam satuan persen.

Pemeriksaan Waktu Hancur Tablet

Pada pemeriksaan waktu hancurdilakukan terhadap semua tablet dengan

menggunakan medium aquadest.

Pengukuran dilakukan terhadap 6 tablet,isi bejana dengan medium aquadest pada

suhu 36-37 oC, atur jumlah cairansehingga pada saat keranjang turunpermukaannya tidak tenggelam dalam

cairan dan pada saat keranjang naikpermukaan sebelah bawahnya tidakmelebihi permukaan cairan, masukkan

tablet satu persatu pada 6 tabung jalankanalat dengan kecepatan 30 rpm. Tabletdinyatakan hancur jika tidak ada bagian

yang tertinggal diatas kasa alat uji.

Penentuan Uji Disolusi Tablet Asam

Mefenamat

Pemeriksaan laju disolusi tabletasam mefenamat dilakukan berdasarkan

metoda pertama (metoda dayung) menurutUSP XXIV. Medium disolusi yangdigunakan adalah dapar pospat 0,2 M pH

7,2 dengan volume disolusi 900 ml dankecapatan putaran 50 rpm selama 60menit. Larutan dipipet sebanyak 5 ml pada

bagian tengahnya setelah menit ke 5, 10,


6/67


IISSSSNN::22008877--55004455

3

15, 30, 45, dan 60 menit. Masing-masinglarutan sample diukur serapannya denganspektrofotometer UV-Visibel pada

panjang gelombang maksimum. Kemudianditentukan kadar tablet yang terdisolusi.

Pengolahan Data

Data-data yang diperoleh dari hasilpenelitian dilakukan pengolahan datadengan metoda Anova dua arah.

HASIL DAN PEMBAHASAN

Hasil pemeriksaan mutu tablet

asam mefenamat dari beberapa namadagang dan generik dapat dilihat padatabel I.

Tabel I. Pemeriksaan Mutu Tablet Asam Mefenamat

PemeriksaanTablet

OPA

Tablet

OPB

Tablet

OPC

Tablet

OGA

Tablet

OGB

Tablet

OGC

Kadar zat aktif (%) 89,700,102 99,580,265 92,940,267 104,350,525 94,750,703 102,050,674

Keseragaman bobot(g)

0,73540,0019

0,74520,0012

0,63840,010

0,73020,006

0,71730,005

0,71040,002

Kekerasan (kg/cm2) 10,4

0,305

10,3

0,213

8,4

0,339

10,3

0,214

10,2

0,249

8,8

0,133

Kerenyahan (%) 0,79 0,82 0,98 0,82 0,87 0,92

Waktu hancur (menit) 42,16 36:14 20:16 38:12 28:27 23:51

Keterangan :

Tablet OPA = Obat nama dagang A

Tablet OPB = Obat nama dagang BTablet OPC = Obat nama dagang CTablet OGA = Obat generik A

Tablet OGB = Obat generik BTablet OGC = Obat generik C

Dari hasil tesebut kelima macamtablet tersebut memenuhi persyaratan yang

tercantum dalam Farmakope Indonesiaedisi IV adalah tidak kurang dari 90% dantidak lebih dari 110% dari yang tertera

pada etiket. Sedangkan untuk OPA tidakmemenuhi persyaratan, didapatkan hasilyang sedikit menyimpang yaitu 89,70%.

Hal ini bisa disebabkan oleh prosespembuatan dan jumlah bahan obat yangdigunakan tidak memenuhi persyaratan.

Persyaratan untuk tablet yangbobo t lebih besar dari 300 mg tidak lebih

dari 2 tablet mempunyai penyimpanganlebih besar dari 5% dan tidak boleh ada

satupun tablet yang penyimpangannyalebih besar dari 10%. Perbedaan variasi

bobo t tab let akan menyebabkankandungan zat aktif pada setiap tabletakan berbeda. Penyimpangan bobot tablet

dipengaruhi oleh jumlah bahan yangdiisikan ke dalam ruang cetakan tablet(punch dan die) (Ansel, H.C., 1989;

Firmansyah, 1989). Hasil yang didapatmemenuhi persyaratan bobot tablet.

Persyaratan kekerasan untuk tabletkecil adalah 4 7 kg/cm2, sedangkanuntuk tablet besar 4 13 kg/cm2.

Kekerasan tablet ini sangat berpengaruhiterhadap uji disolusi dan waktu hancur,


7/67


IISSSSNN::22008877--55004455

4

jik a tablet ter lalu keras maka uji disolusidan waktu hancurnya akan menjadilambat. Kekerasan tablet dapat

dipengaruhi oleh formulasi yaitu jumlahpartikel halus (kadar fine) didalam tab letterlalu banyak sehingga menyebabkan

daya ikat antar masa cetak menjadi kecil,sehingga tablet yang dihasilkan menjadi

rapuh. Jika jumlah bahan pengikat yangdigunakan dalam formulasi melebihi batasyang ditetapkan maka tablet yang

dihasilkan akan menjadi keras begitu jugasebaliknya jika bahan pengikat yangdigunakan sedikit maka tablet yang

dihasilkan akan menjadi rapuh (Ansel,H.C., 1989; Firmansyah, 1989). Hasilyang didapat tablet asam mefenamat

memenuhi persyaratan.

Uji kerenyahan merupakan uji

untuk menentukan kemampuan dan dayatahan tablet terhadap gesekan dangoncangan selama waktu proses

pengepakan dan transportasi hinggasampai ke tangan konsumen. Tablet

memenuhi persyaraatan uji kerenyahanjik a uji kerenyahan yang diperoleh adalah0,8-1% (Ansel, H.C., 1989; Firmansyah,

1989). Dari hasil yang didapat keenam

produk ini memenuhi persyaratankerenyahan tablet.

Persyaratan waktu hancur tabletmenurut Farmakope Indonesia edisi IV

yang menetapkan bahwa kecualidinyatakan lain waktu hancur untuk tabletbiasa tidak lebih dari 15 menit dan untuk

tablet bentuk salut selaput tidak bolehlebih dari 60 menit. Pengujian waktu

hancur dilakukan bertujuan supaya tabletharus hancur, kemudian melepaskankomponen obat ke dalam cairan tubuh

untuk dilarutkan, sehingga obat akandiabsorbsi dalam saluran cerna (Ansel,H.C., 1989). Waktu hancur berkaitan

dengan kekerasan tablet yaitu denganbertambah keras tablet maka waktu hancurakan menjadi lebih lama. Tablet asam

mefeamat berada dalam bentuk tablet salutselaput, dari hasil yang didapat semuatablet memenuhi persyaratan yaitu hancur

sempurna.

Tabel II. Pemeriksaan Uji Disolusi Tablet Asam Mefenamat

Waktu

% terdisolusi

OPA OPB OPC OGA OGB OGC

0 0 0 0 0 0 0

5

29.97

0.015

33.23

0.011

45.38

0.012

31.99

0.003

44.91

0.032

49.23

0.015

10

53.26

0.006

59.50

0.053

72.19

0.011

54.73

0.008

70.08

0.112

61.27

0.090

15

62.54

0.117

74.88

0.115

81.62

0.021

63.04

0.091

79.13

0.161

71.88

0.308

30 77.34 84.50 90.34 82.97 88.80 89.75


8/67


IISSSSNN::22008877--55004455

5

0.072 0.150 0.153 0.326 0.145 0.153

45

89.99

0.136

93.77

0.157

95.85

0.185

91.93

0.170

95.10

0.156

92.10

0.173

60

98.05

0.171

100.22

0.195

103.18

0.185

100.01

0.043

99.41

0.166

102.14

0.200

Gambar 1. Profil disolusi tablet asam mefenamat

Penentuan uji disolusi yaitumenghitung kadar asam mefenamat yang

terdisolusi atau terlarut pada menit menit tertentu, yang dilakukan selama 60menit dapat dilihat pada tabel II dan

gambar 1. Hasil yang diperoleh semuatablet memenuhi persyaratan Farmakope

Indonesia edisi IV kecuali OPA baruterdisolusi 77,34%.

Penetapan model kinetika

pelepasan tablet asam mefenamatdilakukan dengan menggunakan

menggunakan berbagai persamaankinetika orde. Hasil yang diperoleh dapatdikatakan bahwa model k inetika pelepasan

obat yang baik adalah mengikuti orde satukarena nilai korelasinya mendekati satuyaitu sebagai berikut tablet OPA = 0.952,

OPB = 0.964, OPC = 0.947, OGA = 0.958,OGB = 0.985, OGC = 0.973.

Dari hasil yang didapat dibuat

analisa data dengan metoda analisa yaitumetoda Anova Dua Arah. Pada antar

perlaku an dar i perbandingan tiap sampel

pada = 0,05 dan pada = 0,01,memberikan nilai bahwa F hitung

perlaku an dan waktu lebih kecil dari padaF tabel. Ini menandakan bahwa kadar

persen tase tablet asam mefenamat yangterdisolusi dalam medium tidak berbedanyata tidak signifikan. Ini membuktikan

bahwa tidak ada perbedaan mutu antaraobat nama dagang dan bentuk generik.

KESIMPULAN DAN SARAN

Kesimpulan

Dari hasil penelitian yang telah

dilakukan pada pemeriksaan kadar zataktif dan pemeriksaan uji disolusi dapatdiambil kesimpulan bahwa tablet dengan

nama dagang maupun nama generik tidakmemberikan perbedaan yang bermakna

dengan kata lain memenuhi persyaratan

terkecuali untuk tablet dagang A, kadaryang didapat sedikit menyimpang dari


9/67


IISSSSNN::22008877--55004455

6

ketentuan Farmakope Indonesia Edisi IVyaitu 89,70 % dan persen zatterdisolusinya pada waktu 30 menit yaitu

77,34 %.

Saran

Disarankan untuk peneliti

selanjutnya melakukan penelitian terhadaplaju absorbsinya secara invivo.

DAFTAR PUSTAKA

Anonim, 2000,Bagian Organisasi dan

Hukum, Volume 1 Edisi VIII,

Jakarta.

Anonim, 2009, Pengukuran Kuantitas danKualitas Peresepan Obat Golongan

AINS Pada Pasien Rawat Jalan di

RSI Surakarta Jakarta.2008 Dengan

Metoda DU 90%

http://rac.uii.ac.id/harvester/index.ph

p/record/view/3284.Diakses 10 des

2009.

Ansel H. C., 1989Introduction to

Pharmaceutical Dosege Farmasi,

Terjemahkan oleh F, Ibrahim,Pengantar Bentuk Seiaan Farmasi,

Edisi Keempat, Penerbit Universitas

Indonesia, Jakarta.

Depkes RI, 1995, Farmakope Indonesia,

Edisi IV, Jakarta.

Firmansyah, Formulasi Tablet, Departemem

Pendidikan dan Kebudayaan,

Padang, 1989.


10/67


IISSSSNN::22008877--55004455

7

PENETAPAN KADAR VITAMIN B1 PADA BERAS MERAH

TUMBUK, BERAS MERAH GILING, DAN BERAS PUTIH GILING

SECARA SPEKTROFOTOMETRI UV- VISIBEL

Regina Andayani1, Syahriar Harun2, Vica Kurnia Maya21Fakultas Farmasi Universitas Andalas Padang

2STIFI Perintis Padang

Abstract

A research about analysis of vitamin B1 on the pounded red rice, the milled red rice and

the milled rice using spectrophotometry of UV-Visible had been performed. Vitamin B1 was

reacted with a bromothymol blue to form an ion-association complex in a weak-base aqueoussolution in the presence of solubilization agent (polyvinyl alcohol). The wavelength of maximum

absorbance was 441 nm.The method has high selectivity and could be applied to direct

spectrophotometric determination of vitamin B1 in aqueous phase without organic solvent

extraction. The concentration of vitamin B1 on the pounded red rice was 0,2887 % + 0,243, on the

milled red rice was 0,2265 % + 0,198, and the milled rice was 0,2129 % + 0,190. The LSD test on

the = 0,05 and = 0,01 showed that the highest concentration of vitamin B1was found in the

pounded red rice followed by the milled red rice and the milled rice.

Keywords : Vitamin B1, pounded red rice, milled red rice, milled rice, spectrophotometry UV-

Visible

PENDAHULUAN

Vitamin B1 atau Tiamin merupakan

salah satu vitamin yang dibutuhkan untuk

menimbulkan nafsu makan dan membantu

penggunaan karbohidrat dalam tubuh dan

sangat berperan dalam sistim saraf.

Kebutuhan vitamin bagi tubuh sebenarnyasangat cukup tersedia, ada unsur-unsur

vitamin alami di dalam makanan yang di

santap setiap hari. Kebutuhan harian akan

vitamin berbeda-beda berdasarkan jenis usia,

jenis kelamin dan bisa juga berdasarkan jenis

pekerjaanya. Masing-masing jumlah vitamin

B1 yang di butuhkan untuk bayi 0,4-0,5

mg/hari, anak-anak 0,7-1,0 mg/hari, pria

dewasa 1,2-1,3 mg/hari, wanita dewasa 1,0-

1,1 mg/hari, ibu hamil 1,5 mg/hari dan ibumenyusui 1,6 mg/hari. (Andi,H.N,1987;

Murray, R.K et al.,1997; Gan, S., 1995;

Soeharto, P.K., 1991).

Tiamin terdapat hampir pada semua

tanaman dan jaringan tubuh hewan yang

lazim digunakan sebagai bahan makanan

tetapi kandungan vitamin ini biasanya kecil.

Sumber vitamin B1 contohnya sereal,gandum, kentang, ikan, telur, hati, ginjal,

jantung, otak, susu sapi dan ASI. Biji-bijian

yang tidak digiling sempurna merupakan

sumber tiamin yang baik. Tiamin dalam

makanan dalam bantuk bebas atau dalam

bentuk kompleks dengan protein atau

kompleks protein phosfat, pada prinsipnya

tiamin berperan sebagai koenzim dalam

reaksi-reaksi yang menghasilkan energi dari

karbohidrat dan memudahkan pembentukan

senyawa kaya energi yang disebut ATP (

adenosil triposfat ).


11/67


IISSSSNN::22008877--55004455

8

Dampak kekurangan vitamin B1 ini

dapat menimbulkan penyakit beri-beri .

Umumnya penyakit yang ditemukan tahun

1642 di Indonesia ini banyak menyerang

masyarakat dengan makanan pokoknya beras

giling seperti Indonesia, India, Cina, Jepang,Malaysia dan Negara lainnya. Kekurangan

vitamin tersebut dapat disebabkan karena

vitamin ini tidak stabil pada pemrosesan

tertentu dan penyimpanan, karena itu aras

kandungan vitamin dalam makanan yang

diproses dapat sangat menurun. (DepKes RI,

1974)

Penetapan kadar vitamin B1 dapat

dilakukan dengan cara gravimetri, volumetri,fluorometri, kolorimetri dan kromatografi

cair kinerja tinggi (KCKT). (DepKes

RI,1995; Garrat, D.C.,1964; Herlich,

K,1990). Penentuan kadar vitamin B1 pada

sediaan farmasi menggunakan beberapa

macam pewarna (dye) asam trifenilmetan

telah dilakukan dan diperoleh hasil yang baik

(Liu,S., et al,2002). Oleh karena itu metode

tersebut dicoba digunakan untuk menetapkan

kadar vitamin B1 pada sampel makananseperti ; beras merah tumbuk, beras merah

giling dan beras putih giling menggunakan

biru bromotimol sebagai senyawa

pengompleks yang dapat membentuk

kompleks asosiasi ion dengan vitamin B1

menggunakan polivinyl alkohol (PVA)

sebagai zat pensolubilisasi yang

menghasilkan senyawa yang larut dalam air

dan diukur dengan spektrofotometri UV

Visible pada panjang gelombang 441 nm.

METODE PENELITIAN

Alat

Spektrofotometer UV-Visibel

(Shimadzu 265), erlenmeyer, gelas piala,

gelas ukur, corong, batang pengaduk, pipet

takar, pipet tetes, karet hisap, labu semprot,

timbangan digital, labu ukur, pH meter.

Bahan

Polivinyl alkohol 1%, etanol netral

40 %, larutan biru bromotimol 0,05 %,larutan

dapar NH4CL-NH4OH 0,2 M (49:1) pH 7,6,

kalium heksasianoferat (III) 5% timbal (II)asetat 10 %, indikator fenolftalein, asam

klorida 3 N, tiamin HCL ( BDH Biochemical

), kertas saring, aquadest.

Prosedur

Persiapan sampel

Sampel yang digunakan adalah beras

merah tumbuk, beras merah giling dan berasputih giling yang diambil dari daerah Kayu

Aro Kerinci, Jambi. Sampel di haluskan

dengan blender kemudian timbang 5 gram

sampel masukan dalam erlenmeyer 50 ml

cukupkan dengan aquadest sampai tanda

batas, kocok, kemudian saring dengan kertas

saring masukan dalam labu ukur 50 ml,


batas.

Pembuatan Larutan Induk Vitamin B1500

g/ml (Liu, S.,et al.,2002)

Ditimbang 25 mg Vitamin B1

kemudian larutkan dengan air suling dalam

labu takar 50 ml tepatkan sampai tanda batas.

Pengukuran Panjang Gelombang Serapan

Maksimum (Liu, S.,et al.,2002)

Dari larutan induk di pipet 4 mlmasukkan dalam labu ukur 25 ml, sehingga

diperoleh konsentrasi 80 g/ml, tambahkan 2

ml dapar amonia, ditambah 3,3 ml biru

bromotimol 0,05 % dan 1,5 ml polivinyl

alkohol 1 %, cukupkan dengan aquadest

sampai tanda batas, kocok homogen, lalu

tentukan panjang gelombang serapan

maksimum dengan spektrofotometer VV

VISantara (400-800) nm.


12/67


IISSSSNN::22008877--55004455

9

Pengukuran Kadar Vitamin B1

Larutan induk Vitamin B1 (500

g/ml) dipipet sebanyak2; 2,5; 3; 3,5; 4 ml

dan masing-masing larutan dimasukkan

dalam labu ukur 25 ml. Ke dalam masing-masing labu ditambahkan 1,2 ml dapar

amonia, 2,7 ml biru bromotimol 0,05 % dan

0,7 ml polivinyl alkohol 1% kemudian


batas, dikocok homogen, sehingga diperoleh

konsentrasi larutan vitamin B1 berturut-turut

40,50,60,70, dan 80 g/ml. Ukur serapan

masing-masing larutan pada panjang

gelombang maksimum yaitu 441 nm

kemudian data absorban dan konsentrasilarutan standar digunakan untuk membuat

kurva kalibrasi.

Pengukuran vitamin B1 pada sampel

dilakukan dengan memipet 5 ml filtrat

sampel dan masukan dalam labu ukur 25 ml

tambahkan 1,5 ml dapar amonia, tambahkan

3 ml biru bromotimol 0,05 %, tambahkan 1

ml polivinyl alkohol 1 %, kemudian


batas, kocok homogen dan ukur serapan

dengan spektrofotometer UV-Visibel pada

panjang gelombang 441 nm.

Pengolahan Data

Kadar Vitamin B1ditentukan dengan

menggunakan kurva kalibrasi dari larutan

standar yang dihitung dengan menggunakan

rumus :

Cs ( mg/g) =w

xfpxVC

Keterangan : C = konsentrasi rata-rata (

g/g), fp = faktor

pengenceran, V = volume

filtrat (ml), W = berat

sampel ( g )


Penetapan kadar vitamin B1 yang

terdapat pada beras merah tumbuk, beras

merah giling dan beras putih giling dilakukan

dengan metoda spektrofotometer UV-VIS

menggunakan kompleks asosiasi ion antara

vitamin B1 dengan biru bromotimol. Metoda

ini sederhana, mudah dan selektif dengan

menggunakan sampel dalam jumlah yang

sedikit dengan waktu yang singkat, dan dapat

diterapkan untuk penentuan spektrofotometri

secara langsung pada vitamin B1 dalam fase

air tanpa melakukan ekstraksi dengan pelarut

organik.

Vitamin B1+ bereaksi dengan biru

bromotimol pada pH 7,6 ditunjukkan dengan

perubahan warna larutan dari tidak berwarna

menjadi kuning. Kompleks vitamin B1+

dengan biru bromotimol merupakan

kompleks asosiasi ion yang berwarna yang

dapat diamati pada panjang gelombang

serapan maksimum 441 nm (Liu, S., et

al.,2002). Keadaan pH yang lebih tinggi atau

lebih rendah dari 7,6 dapat mempengaruhiperanan biru bromotimol yang merupakan

indikator, karena keasaman larutan berperan

besar pada reaksi warna, oleh karena itu

untuk mengontrol keasaman larutan dapat

digunakan larutan dapar NH4Cl NH4OH 0,2

M agar tidak terjadi penurunan nilai serapan (

Liu, S., et al.,2002).

Untuk meningkatkan kelarutan

senyawa kompleks vitamin B1 dengan birubromotimol dalam air perlu ditambahkan

polivinyl alkohol sebagai zat pensolubilisasi

yang merubah kompleks asosiasi ion yang

bersifat hidrofob menjadi bentuk misel selain

itu penambahan polivinyl alkohol juga

membentuk larutan tetap jernih sehingga

perubahan warna yang terjadi dapat diamati

dengan jelas.

Pada pembuatan kurva kalibrasi

semakin tinggi konsentrasi vitamin B1 maka

semakin meningkat juga penambahan larutan


13/67


IISSSSNN::22008877--55004455

10

0

0.2

0.4

0.6

0.8

0 20 40 60 80 100

Konsentrasi (ppm)

Absorban

dapar serta zat pensolubilisasi yang

dibutuhkan, untuk memperoleh hasil yang

linear antara konsentrasi dengan serapan.

Standar vitamin B1 dibuat dengan

konsentrasi 40, 50, 60, 70 dan 80 g/ml

sehingga diperoleh kurva kalibrasi dengan

persamaan regresi Y = - 0,1754 + 0,0109 x

dengan harga koefisien korelasi r adalah

0,99472.

Gambar 1. Kurva kalibrasi larutan standar vitamin B1 dalam dapar amonia + PVA1 % + BBT 0,05 %

Ketelitian adalah ukuran yang

menunjukan derajat kesesuaian antara hasil

uji individual dan rata rata jika prosedur

ditetapkan secara berulangulang. Ketelitian

diukur sebagai simpangan baku dan koefisien

variasi dari masingmasing pengukuran.

Untuk pengukuran kadar vitamin B1 pada

sampel dengan 3 kali pengulangan diperoleh

SD untuk beras merah tumbuk 0,243, beras

merah giling 0,198 dan beras putih giling

0,190. Sedangkan nilai KV yang di peroleh

untuk beras merah tumbuk 0,419 %, beras

merah giling 0,437 % dan beras putih giling

0,449 % hasil ini memenuhi kriteria, karena

nilai standar deviasi atau koefisien variasi 2

% atau kurang.

Tabel 1. Penentuan kadar vitamin B1dalam sampel menggunakan spektrofotometri UV-Visibel pada panjang gelombang 441 nm

Sampel AC

(g/ml)C

(g/ml)

KadarVitamin B1

(mg/g)SD

KV

(%)

Beras merahtumbuk

1. 0,457 1. 58,018

57,743 2,887 0,243 0,4192. 0,452 2. 57,559

3. 0,453 3. 57,651

Beras merah

giling

1. 0,317 1. 45.174

45,296 2,265 0,198 0,4372. 0,318 2. 45,266

3. 0,320 3. 45,449

Beras putih 1. 0,288 1. 42,513 42,574 2,129 0,190 0,446

y = -0,1754 +0,0109 x

r = 0,99472

(g/ml)


14/67


IISSSSNN::22008877--55004455

11

giling 2. 0,287 2. 42,422

3. 0,291 3. 42,789

Hasil pemeriksaan kadar vitamin B1dalam sampel beras diperlihatkan padatabel 1. Beras merah tumbuk mengandung

vitamin B1dengan kadar tertinggi yaitu 2,887mg/g, yang diikuti dengan beras merah giling2,265 mg/g dan beras putih giling 2,129

mg/g. Pada uji statistik menggunakanANOVA satu arah dilanjutkan uji beda nyataterkecil diperoleh perbedaan yang sangat

signifikan (p


15/67


IISSSSNN::22008877--55004455

12

PEMERIKSAAN KADAR KALIUM DAN NATRIUM PADA HERBA

Centella asiatica(L) URBAN DENGAN METODA

FOTOMETRI NYALA

Roslinda Rasyid, Mahyuddin dan Miza AgustinFakultas Farmasi Universitas Andalas

Abstract

A research on potassium and sodium concentration inspection has been done to Centellaasiatica (L) Urban herbal using Flame Photometry Method, it is a method of spectrum line

intensity measurement which is transmitted by element which excitated in flame. The analysisprinciple is by altering solid or liquid form to gas form and spread it, then excitate the particles to

breed flame emission. From the research, it was found that potassium concentration of dry samplepegagan herbal was 2.58% and from wet sample was 2.14%, while sodium concentration of drysample pegagan herbal was 2.65% anf from wet sample was 2.19%.

Keyword : Centella asiatica, potassium, sodium, flame photometry

PENDAHULUAN

Bangsa Indonesia sejak dahulu telah

terbiasa dengan penggunaan obat-obattradisional. Pengetahuan ini telah diwariskansecara turun temurun berdasarkan kebiasaan

semata. Seiring dengan meningkatnyaperkembangan ilmu pengetahuan danteknologi, penelitian kearah obat-obat

tradisional semakin meningkat pula. Para ahliberusaha menyelidiki komponen apa sajayang terkandung pada tumbuhan serta

pengaruhnya terhadap penyakit (Sitakusuma,1987).

Centella asiatica (L) Urban atauyang biasa dikenal dengan nama Pegagan(family Umbeliferaceae) merupakan salah

satu tumbuhan yang digunakan sebagai obat.Kandungan kimia utama dari tumbuhan

pegagan yaitu asam asiatat, asiatikosida danasam madekasat. Kandungan kimia lainnyayaitu karotenoid, valerian, resin, tannin,

minyak menguap dan garam-garam mineralseperti kalium, natrium, magnesium, kalsiumdan besi (Widowati, et al., 1992; Schaneberg,

et al., 2003; Achyad dan Rasydah, 2000).

Kandungan kalium dan natrium

menyebabkan tumbuhan pegagan berkhasiatsebagai diuretic dan pemecah batu ginjal.

Kalium akan bereaksi dengan batu ginjal

yang berupa kalsium karbonat membentukkalium karbonat. Endapan batu ginjal ini

kemudian larut dan keluar bersama urin.Mineral natrium akan membantu pengeluaranair seni yang disebut dengan efek dieresis.

Mineral ini akan menambah kecepatanpembentukan volume urin (Mariani, 2008).

Pada penelitian ini penentuankandungan kalium dan natrium dalam herbapegagan dilakukan dengan menggunakan

metoda Fotometri Nyala. Metoda ini cocok

digunakan karena kalium dan natriummerupakan unsur yang mudah tereksitasi

dengan memancarkan sinar yangkarakteristik dengan intensitas yang cukup

tinggi untuk diukur dengan fotosel (Horwitz,1990; Vogels, 1978).

METODOLOGI PENELITIAN

Bahan yang digunakan dalam

penelitian ini antara lain herba pegagan, asamnitrat pa (merck), asam sulfat pa (merck),


16/67


IISSSSNN::22008877--55004455

13

kalium klorida pa (merck), natrium kloridapa (merck), asam klorida pa (merck), larutanstandar kalium 1000 ppm, larutan standar

natrium 1000 ppm dan aquadest. Sedangkanalat yang digunakan adalah Fotometri Nyala(140-Corning), timbangan digital, labu

Kjeldahl, desikator, blender, ayakan dan alat-alat gelas lainnya yang biasa digunakan di

laboratorium.

Sampel yang digunakan dalam

penelitian ini adalah herbal pegagan yangdiambil di daerah Batusangkar KabupatenTanah Datar dan diidentifikasi pada

Herbarium Jurusan Biologi (ANDA) FakultasMIPA Universitas Andalas. Sampeldibersihkan dari kotoran dan ditimbang

sebanyak 1 Kg, dicuci dengan aquadest,dikering anginkan dan sebagian dipotongkecil-kecil dan digunakan untuk penentuan

kandungan air. Sampel kering diblender dandiayak dengan ayakan 180 m hinggadidapatkan sampel dalam bentuk bubuk

halus.

Sampel yang telah dihaluskandidestruksi basah menggunakan pelarut asamnitrat pekat dan asam sulfat pekat. Sebanyak

1 gram sampel dimasukan ke dalam labu

kjeldahl, ditambahkan 10 ml asam sulfatpekat dan dikocok, kemudian ditambahkan 5

ml asam nitrat pekat dan beberapa buah batudidih, dikocok hingga bercampur, diamkanselama 30 menit. Kemudian dipanaskan

perlahan-lahan sampai semua sampel larutdan mendidih hingga asam nitro kuningkeluar sebanyak mungkin. Dilanjutkan

dengan penambahan asam nitrat pekat 1 2ml dan dipanaskan hingga seluruh bahanorganik terbakar, dipanaskan hingga asap

putih dari sulfat timbul, didinginkan,

diencerkan hingga volume 50 ml. Sampelhasil destruksi dipipet sebanyak 2 ml di

diencerkan hingga 25 ml dengan aquadestkemudian dilakukan pengukuran emisi nyala

sampel dengan fotometer nyala, dimanasebelumnya alat yang digunakan dikalibrasidengan deretan standar.


Penentuan kadar air sampeldilakukan sesuai dengan yang tertera pada

Farmakope Indonesia IV dan didapatkanhasil rata-rata kandungan air sampel sebesar17,21%.

Perlakuan sampel setelah dikeringanginkan adalah dengan menjadikannya

serbuk yang bertujuan untuk mempercepatproses destruksi. Bentuk serbuk memiliki

luas permukan yang lebih besardibandingkan dengan bentuk tumbuhandalam keadaan utuh sehingga larutan

pendestruksi akan lebih mudah berpenetrasi.Proses destruksi bertujuan untukmenghilangkan, merombak dan memutuskan

ikatan-ikatan senyawa organik yang terdapatdalam sampel sehingga yang tinggal hanyasenyawa anorganik saja. Metoda destruksi

yang digunakan adalah metoda destruksibasah. Metoda ini digunakan karenapengerjaannya lebih sederhana, oksidasi

kontinyu dan cepat dan unsur-unsur yangdiperoleh mudah larut sehingga dapatditentukan dengan metoda analisa tertentu

(Raimon, 1992; Lisawati, 1985).

Proses destruksi menggunakancampuran asam sulfat pekat dan asam nitratpekat sebagai pengoksidasi. Destruksi basah

menggunakan larutan pendestruksi campuran

ini memberikan hasil yang lebih baik karenadestruksi lebih sempurna dan suhu

pemanasan tidak terlalu tinggi sehinggakemungkinan kehilangan unsur renik akibatpenguapan dan retensi menjadi lebih kecil.

Destruksi dimulai dengan pemanasanrendah dan selanjutnya ditinggikan perlahan-

lahan sampai sampel larut sempurna.Sebelum pemanasan, campuran sampel danpelarut dibiarkan lebih kurang 30 menit agar

proses penetrasinya lebih sempurna.

Beberapa batu didih ditambahkan agarpemanasan lebih merata dan mencegah

terjadinya bumping. Proses destruksi ditandaidengan keluarnya asap nitro yang berwarna

kuning. Kemudiann dilanjutkan denganpenambahan 1 2 ml asam nitrat pekat yangbertujuan untuk menyempurnakan proses

destruksi. Destruksi dikatakan sempurna bilatelah diperoleh larutan jernih yangmenunjukan bahwa semua konstituen telah

larut sempurna atau perombakan senyawaorganic telah berjalan dengan baik.Selanjutnya larutan jernih ini diencerkan

dengan aquadest guna penentuan kandungan


17/67


IISSSSNN::22008877--55004455

14

kalium dan natriumnya menggunakanfotometer nyala.

Metoda fotometri nyala merupakan

metodda yang sangat tepat digunakan untukpenentuan kadar kalium dan natrium karenaunsure-unsur ini merupakan logam golongan

IA yang sangat mudah tereksitasi denganmemancarkan sinar yang karakteristik

dengan intensitas yang cukup tinggi untukdiukur dengan fotosel. Kalium akanmenghasilkan intensitas yang tinggi pada

panjang gelombang 766,5 nm sedangkannatrium pada panjang gelombang 589,0 nm.Sebelum pengukuran kadar kalium dan

natrium dari sampel terlebih dahulu dibuatlarutan standar kalium dan natrium dari

kalium klorida dan natrium klorioda dengankonsentrasi 10, 20, 30, 40 dan 50 ppm. Hasilpengukuran emisi larutan standar kalium

pada panjang gelombang 766,5 nmdidapatkan kurva kalibrasi dengan persamaanregresi Y = 0,057 + 0,0107x dan koefisien

korelasi (r) = 0,998. Sedangkan pengukuranemisi larutan standar natrium pada panjang

gelombang 589,0 nm menghasilkanpersamaan regresi Y = 0,0162 + 0,00476xdan koefisien korelasi (r) = 0,998.

Pengukuran emisi larutan sampel hasildestruksi dikonversikan pada kurva kalibrasilarutan standar

Gambar 3. Kurva kalibrasi standar kalium klorida

Gambar 4. Kurba kalibrasi standar natrium klorida


18/67


IISSSSNN::22008877--55004455

15

Hasil pengukuran emisi nyala sampelmenunjukkan bahwa terdapat kadar yanghampir sama antara kalium dan natrium yang

terkandung di dalam herba pegagan. Kadarkalium di dalam sampel kering adalahsebesar 2,58% sedangkan kadar natrium

2,65%. Kadar air sampel basah yangdidapatkan adalah sebesar 17,21%, sehingga

didapatkan kadar kalium dalam sampel basahsebesar 2,14% sedangkan kadar natriumdalam sampel basah adalah sebesar 2,19%.

Besar kecilnya kandungan mineral kaliumdan natrium diduga dipengaruhi olehberbagai factor diantaranya keadaan tanah,

letak geografis, tempat tumbuh dan keadaanmusim.

KESIMPULAN DAN SARAN

Berdasarkan penelitian yang telahdilakukan dapat disimpulkan bahwa kadarkalium yang terdapat dalam herba pegagan

kering adalah sebesar 2,58% dan pada herbapegagan segar 2,14%. Sedangkan kadar

natrium pada herba pegagan kering adalah2,65% dan pada herba pegagan segar 2,19%.Diharapkan peneliti selanjutnya untuk dapat

memeriksa kandungan kalium dan natriumdari jenis tumbuhan lain dengan metode yangsama.

DAFTAR PUSTAKA

Achyad, D.E. dan R. Rasydah, Pegagan(Centella asiatica (L) Urban),http://www. Asiamaya.com

Becker, C.A. and R.C. Bachizen, Flora of

Java, Vol. I, N.V.P. Noordhoff,Broningen, The Netherland, 1965.

Elvers, B., Wilmanns Encyclopedia ofIndustrial Chemistry, Vol. A15,

Verlags Gessell Shaft Moit,Weinheinm, 1990.

Geniswara, S.G., Farmakologi dan Terapi,Edisi IV, Bagian FarmakologiFakultas Kedokteran Universitas

Indonesia, Jakarta, 1995.

Horwitz, W., Official Methods of AnalysisAssociation of Official AnalyticalChemists, 15th Ed., Vol. Two, USA,

1990.

Lisawati, Y., Perbandingan Metoda Destruksi

Basah dan Kering TerhadapPencemaran Logam Fe, Cu dan Zn,Jurnal Universitas Andalas, 1985.

Mariani R., Mencegah Batu Ginjal dan BatuEmpedu, http://www.pikiran-

rakyat.com

Materia Medika Indonesia, Jilid I, 34 39,Departemen Kesehatan Republik

Indonesia, 1977.

Raimon, Perbandingan Metoda Destruksi

Basah dan Kering TerhadapPencemaran Logam Fe, Cu dan Zn,BPPI Palembang, Edisi BIPA,

Palembang, 1992.

Schaneberg, B.T., J.R. Mikell, E. Bedir and.

I.A. Khan, An Improve HPLCMethod for QualitativeDetermination of Six Triterpenes in

Centella asiatica Extract andCommercial Product,http://www.herbmed.org., Juni, 2003

Sitakusuma, T., Kimia dan Lingkungan,pusat Penelitian Universitas Andalas,

Padang, 1987

Tang, W. and Eisbrand, G., Chinese Drug ofPlant Origin : Chemistry

Pharmacology Use in Traditional andModern Medicine, Springer Verlag

Published, Germany, 1982.

Vogels, A., Kimia Analisis KuantitatifAnorganik, Edisi IV, diterjemahkan

oleh L. Setiono dan A.H.Pudjaatmaka, Penerbit BukuKedokteran, Jakarta, 1974.

Vogels, A Textbook of Qualitative InorganicAnalysis, 4thEd., 1978

Widowati, L., P. Astuti, D. Indrari dan D.Sundari, Beberapa Informasi Khasiat

Keamanan dan Fitokimia Tanaman


19/67


IISSSSNN::22008877--55004455

16

Pegagan, Centella asiatica (L)Urban, Prosiding Seminar Pegagandan Cabe Jawa, Vol. I, Jakarta 8 9

Januari 1992, Kelompok KerjaTanaman Obat Indonesia, Jakarta,1992.

Winarto, W.P. dan M. Surbakti, Khasiat danManfaat Pegagan : Tanaman

Penambah Daya Ingat, PenerbitAgromedia, Jakarta, 2003.


20/67


IISSSSNN::22008877--55004455

17

PENENTUAN KADAR KALSIUM PADA IKAN KERING AIR LAUT

DAN IKAN KERING AIR TAWAR DENGAN METODA

SPEKTROFOTOMETRI SERAPAN ATOM

Ria Afrianti, Syahriar HarunSTIFI Perintis

Abstract

A research has been done to determining calcium concentration on dry saltwater

and freshwater fish using atomic absorption spectrophotometry method ini 422,7 nm. From

the research, calcium concentration found in dry saltwater fish were 7,565 mg/g and 8,145

mg/g respectively for Stelophorus sp and Goura sp. Meanwhile calcium concentration indry freshwater were 19,155 mg/g and 13,775 mg/g respectively for Trichogaster

pectoralisandMystacoleuseus padangensis.

Keywords : calcium determination, Stelophorus sp, Goura sp, Trichogaster pectoralis,Mystacoleuseus padangensisAtomic Absorption Spectrophotometry

PENDAHULUAN

Ikan merupakan salah satu bahanmakanan yang mengandung nutrisi yangtinggi seperti : protein, karbohidrat, lemak,

vitamin dan mineral. Ikan berdasarkantempat hidupnya dibagi atas dua bagian yaituikan air laut dan ikan air tawar. Contoh ikan

air laut antara lain : ikan tongkol, ikantenggiri, ikan teri, ikan beledang dan ikankakap sedangkan contoh ikan air tawar antara

lain : ikan mas, ikan nila, ikan bilih, ikan

sepat dan ikan mujair. Kandungan mineralyang dibutuhkan dalam jumlah relatif banyak

antara lain : fosfor, kalsium dan magnesium(H.d. Belitz. W. Grosch, 1981).

Kalsium adalah mineral yang paling

banyak dibutuhkan oleh tubuh, terdapatdalam jumlah 1,5-2 % dari keseluruh berattubuh. Lebih 99 % kalsium terdapat dalam

tulang. Kalsium juga merupakan komponenpenting dalam pembentukkan gigi. Kalsiumsangat penting untuk mengatur sejumlah

besar aktivitas fungsi saraf dan otot, kerjahormon serta pembekuan darah. Dengan

mengkonsumsi kalsium sejak dini dapatmencegah terjadinya osteoporosis dimasa tua(Darmono, 1995; Winarno, F.G, 1997).

Kalsium dalam tulang sangat penting

dalam susunan komposisinya, berat keringmengandung sekitar 460 g Ca/kg, 360gprotein/kg dan 180g lemak/kg. Komposisi ini

bervariasi menurut umur dan susunan nutrisidari hewan. Kebutuhan kalsium dapatdiperoleh dari susu, kuning telur, keju,

kacang-kacangan, sayur-sayuran dan ikan

(Robert, K, Muray, 1990 ).

Penetapan kadar kalsium dapat

dilakukan dengan berbagai cara antara laindengan metode titrasi kompleksometri, titrasipermanganometri dan spektrofotometri

serapan atom. Prinsip penelitian adalahsampel didestruksi terlebih dahulu denganmenggunakan pelarut asam kuat dibantu

dengan pemanasan sehingga diperoleh hasildestruksi yang sempurna ditandai denganlarutan jernih. Pada penelitian ini kadar

kalsium pada ikan kering air laut dan ikankering air tawar ditentukan dengan


21/67


IISSSSNN::22008877--55004455

18

menggunakan metode spektrofotometriserapan atom (Day, A.R, A.K, Underwood,1996; Rivai. H. 1995). Pada penelitian ini

sampel dibatasi karena keterbatasan waktudan dana. Dimana ikan kering air lautdiambil dua jenis yaitu ikan teri (Stelophorus

sp) dan ikan beledang ( Goura sp) serta duajenis ikan kering air tawar yaitu ikan bilih (

Mystacoleuseus padangensis) dan ikan sepat( Trichogaster pectoralis).

METODE PENELITIAN

Alat dan Bahan

Spektrofotometri serapan atom

alfa 4 , labu Kjeldahl, timbangan analitikdigital, pipet gondok, corong, gelas ukur,labu ukur, beker glass, pipet mikro, oven,

desikator, cawan penguap, kertas saring

whatman 42. Sampel ikan kering yaitu:

ikan kering yang berasal dari laut (ikanteri dan ikan beledang) dan ikan kering

yang berasal dari air tawar (ikan bilih dan

ikan sepat), asam nitrat pekat p.a

(Merck), hidrogen peroksida pekat p.a(Merck), asam klorida pekat p.a (Merck),

kalsium karbonat (Merck), air suling.

Prosedur Penelitian

Pengambilan Sampel

Sampel diambil didaerah Pasar RayaPadang, sampel yang dianalisa adalah ikan

yang telah dibersihkan dari kotoran.

Penyiapan Sampel

Ditimbang sampel sebanyak 100 g,

kemudian dibersihkan dari kotoran. Sampeldipotong kecil-kecil kemudian diblender laludigerus dalam lumpang sampai homogen.

Penentuan Kandungan Air Sampel(Depkes RI, 1995)

1.

Cawan Penguap dipanaskan dalamoven pada suhu 105C selama 3 jam,

kemudian didinginkan dalamdesikator dan ditimbang.

2. Cara diatas diulangi pada jarak 1 jam

hingga didapat berat yang konstan.3. Ditimbang 2 gram sampel, kemudian

dimasukkan kedalam cawan

penguap, keringkan dalam oven padasuhu 105C selama 3 jam.

4. Dinginkan dalam desikator kemudianditimbang.

5. Masukkan kembali kedalam oven

pada suhu 105C selama 1 jam.Dinginkan dalam desikator kemudianditimbang. Kemudian lakukan

percobaan diatas sampai didapatkanberat yang konstan, sehinggapenentuan kandungan air sampel

dapat dihitung dengan rumus:

Keterangan:

B1= Berat cawan kosong

B2= Berat cawan dengan sampel sebelumdikeringkan

B3= Berat cawan dengan sampel setelahdikeringkan

Pemeriksaan Bahan Baku Kalsium

Karbonat

Kalsium karbonat yang digunakanterlebih dahulu diperiksa menurut cara yang

tertera pada Farmakope Indonesia edisi IV.Pemeriksaan ini terdiri dari pemerian,kelarutan dan identifikasi.

Destruksi Basah Sampel dengan

Menggunakan Pelarut Asam Nitrat Pekat

(HNO3) dan Hidrogen Peroksida Pekat(H2O2) (Helrich, k. 1990)

1. Sampel yang telah digerus ditimbangsebanyak 0,5 gram dimasukkan ke

dalam labu kjedahl.2. Tambahkan 25 ml asam nitrat pekat

biarkan setengah jam.3.

Dipanaskan mula-mula denganpemanasan yang rendah kemudian


22/67


IISSSSNN::22008877--55004455

19

dinaikkan secara perlahan-lahan,setelah 30 menit pemanasandinaikkan, dihentikan sebentar.

Kemudian diteteskan HidrogenPeroksida (H2O2) 35 % sebanyak 5tetes dan pemanasan dilanjutkan.

Penambahan tetes Hidrogenperoksida dilakukan berulang kali

sampai larutan menjadi larutan yangjernih.

4. Hasil destruksi didinginkan,

kemudian encerkan dengan air sulingsampai volume 50 ml lalu disaringdengan kertas whatman 42.

5. Sampel siap diukur dengan SSA padapanjang gelombang 422,7 nm.

6. Pengulangan dilakukan 2 kali untuk

masing-masing sampel.

Pembuatan Larutan Standar Kalsium

1000 g/ml (Haswel, S.I, 1991; Slavin, M,1986)

Timbang kalsium karbonat sebanyak2,498 g, masukkan dalam labu ukur 1000 ml,

tambahkan kira-kira 100 ml air suling,tambahkan sedikit demi sedikit 20 ml larutanHCl 12 N sampai kalsium karbonatnya larut.

Kemudian encerkan dengan air suling sampaitanda batas. Larutan ini mengandung 1000

g/ml. Dari larutan standar ini dibuat deretanlarutan standar dengan konsentrasi 0, 5, 10,

15, dan 20 g/ml.

Pengenceran Bertingkat Larutan Standar

dengan Konsentrasi 0, 5, 10, 15, dan 20

g/ml

a. Pembuatan larutan standar 100 g/ml

dari larutan standar 1000 g/ml.

Larutan standar 1000 g/ml dipipet10 ml, masukan ke dalam labu ukur100 ml, tambahkan air suling sampai

tanda batas.b. Pembuatan larutan standar dengan 5

g/ml dari larutan standar 100 g/ml.

Larutan standar 100 g/ml dipipet

1,25 ml masukkan ke dalam labu

ukur 25 ml, tambahkan air sulingsampai tanda batas.

c. Pembuatan larutan standar 10 g/ml



2,5 ml masukkan ke dalam labu ukur25 ml, tambahkan air suling sampaitanda batas.

d. Pembuatan larutan standar 15 g/ml


Larutan standar 100 g/ml dipipet3,75 ml masukkan ke dalam labuukur 25 ml, tambahkan air suling

sampai tanda batas.

e. Pembuatan larutan standar 20 g/ml



6,25 ml masukkan ke dalam labuukur 25 ml, tambahkan air sulingsampai tanda batas.

Pengukuran Larutan Standar dan Sampeldengan SSA

Pembuatan Kurva Kalibrasi

a. Pengukuran serapan dari deretanlarutan standar kalsiumSerapan diukur dari larutan standar

kalsium dengan konsentrasi 0, 5, 10,

15, dan 20 g/ml pada panjanggelombang 422,7 nm.

b. Buat kurva kalibrasi denganmenghubungkan konsentrasiterhadap absorban.

Penentuan Kadar Kalsium dengan

Spektrofotometri Serapan Atom.

Masing-masing 5 ml hasil destruksi

dipipet dan dimasukkan ke dalam labu ukur50 ml tambahkan air suling sampai tandabatas. Ukur absorban larutan sampel pada

panjang gelombang 422,7 nm denganspektrofotometri serapan atom.

Pengolahan data.

Konsentrasi larutan sampel dapatdihitung berdasarkan kurva kalibrasi

larutan standar, sehingga konsentrasilogam dalam sampel bisa dihitung.


23/67


IISSSSNN::22008877--55004455

20

Konsentrasi logam Ca dalam ikandihitung dengan rumus:

Logam Ca ( ppm ) =Z

YX.x fp

Keterangan :

X = Kosentrasi yang didapat berdasarkan

kurva kalibrasi (g/ml)Y = Volume larutan contoh (ml)Z = Berat sampel (gram)Fp = Faktor pengenceran


Sampel yang digunakan dalam

penelitian ini adalah beberapa ikan keringyang beredar di pasaran, jumlah sampel

yang dipilih adalah 4 macam ikan yaitu

ikan teri, ikan beledang, ikan bilih dan

ikan sepat.

Sampel dibersihkan lalu dipotong-

potong kecil kemudian diblender setelahitu digerus dalam lumpang sampai

homogen. Sampel yang telah digerus

ditimbang masing-masingnya sebanyak

0,5 gram. Sampel yang telah ditimbangdimasukkan dalam labu kjedahl

kemudian tambahkan HNO365 % 25 ml.

Biarkan setengah jam. Panaskan dengan

pemanasan rendah kemudian naikkansuhu secara perlahan-lahan. Setelah 30

menit pemanasan dihentikan sebentar

kemudian tambahkan 5 tetes H2O2 35 %yang dilakukan berulangkali sampailarutan menjadi jernih. Hasil destruksi

didinginkan, saring dengan kertas saring

whatman No. 42 kedalam labu ukur 50

ml, kemudian encerkan dengan air sulingsampai tanda batas. Hasil destruksi

dipipet masing-masing 5 ml masukkan

dalam labu ukur 50 ml encerkan dengan

air suling sampai tanda batas. Hasildestruksi ini siap diukur dengan

menggunakan spektrofotometer serapanatom pada panjang gelombang 422,7 nm.

Tujuan penambahan asam nitrat

adalah agar proses pendestruksian lebih

sempurna. Masing-masing sampel

dilakukan 2 kali pendestruksian dengan

tujuan untuk mengambil rata-rata kadarCa yang terdapat pada masing-masing

sampel dan juga untuk mengurangi

kesalahan dalam pengukuran sampel.

Metoda yang digunakan yaitu

metoda destruksi basah dengan pelarut

asam nitrat dan hidrogen peroksida.Proses destruksi dimulai dengan

pemanasan rendah kemudian pemanasan

dinaikkan secara perlahan-lahan sampai

pelarutan sempurna. Proses destruksiditandai dengan adanya buih dan uap

berwarna coklat. Penambahan H2O2 -secara berulang-ulang bertujuan agar

proses pendestruksian senyawa organikberjalan sempurna yang di tandai dengan

terbentuknya larutan jernih. Ini

menunjukkan bahwa semua konstituen

yang ada telah larut sempurna atau semuasenyawa organik telah dirombak.

Sampel yang diteliti adalah ikan

kering air laut dan ikan kering air tawardimana sampel yang diambil ini sering

dikonsumsi masyarakat bersamaan

dengan tulangnya karena pada tulang

banyak terdapat kandungan kalsium.Sebelum ditentukan kadar kalsium pada

ikan kering air laut dan ikan kering air

tawar terlebih dahulu dilakukan

penentuan kandungan air yang gunanya

untuk mengetahui persentase kandunganair dalam ikan kering tersebut dan untuk

mengkonversikan kadar kalsium dalam

sampel dengan kadar kalsium dalamsampel kering sehingga dapat ditentukan

kadar kalsium dalam ikan kering air laut

dan ikan kering air tawar. Kandungan air

yang diperoleh pada ikan kering air lautyaitu ikan teri 37,74 % dan ikan beledang

39,93 % sedangkan pada ikan kering air

tawar yaitu ikan sepat 25,63 % dan ikan

bilih 22,44 %. Kadar kalsium yangdiperoleh pada ikan kering air laut yaitu


24/67


IISSSSNN::22008877--55004455

21

ikan teri 756,5 mg/100g dan ikanbeledang 814,5 mg/100g sedangkan

kadar kalsium pada ikan kering air tawar

yaitu ikan sepat 1915,5 mg/100g dan ikan

bilih 1377,5 mg/100g. Dari hasil tersebut

dapat dilihat bahwa kadar kalsium padaikan kering air laut lebih rendah dari

kadar kalsiun ikan kering air tawar hal ini

disebabkan dari cara pengambilan sampeldan cara pengerjaannya.

Pada ikan kering air laut yaitu

ikan beledang bagian yang diambiladalah badannya dan bagian kepalanya

dibuang karena kepala ikan ini besar dan

tidak dikonsumsi oleh masyarakat

sedangkan ikan teri bagian yang diambilseluruhnya karena ikan ini kecil dan bisa


dengan tulangnya. Pada ikan kering air

tawar yaitu ikan sepat dan ikan bilih

bagian yang diambil juga seluruhnyakarena ikan ini kecil dan dapat


dengan tulangnya. Nilai gizi ikan keringsangat bervariasi tergantung pada jenis

dan kesegaran ikan yang digunakan, cara

penggaraman, cara penjemuran serta cara

penyimpanan. Selama penyimpanandapat saja terjadi berbagai reaksi kimia

yang dapat merusak nilai gizi ikan.

Table I. Hasil Pengukuran Absorban Larutan Standar CaCO3 pada panjang gelombang

422,7 nm dengan lampu katoda berongga Ca dalam pelarut HCl 12 N.

No Konsentrasi (x) g/ml Absorban (y)

1

2

3

45

0

5

10

1520

0,000

0,207

0,387

0,5220,668

0.000

0.100

0.200

0.300

0.400

0.500

0.600

0.700

0.800

0 5 10 15 20 25

Konse nt rasi (g/ml)

Serapan

Gambar 1. Kurva Kalibrasi Standar CaCO3dalam larutan HCl 12 N pada panjang

gelombang 422,7 nm

Persamaan regresi dan konsentrasi

yang didapat pada tabel 1, gambar 1 dari

kurva kalibrasi adalah y = 0,0266 +0,03302 x dan koefisien korelasi (r) =

0,9960. Hasil ini menunjukkan bukti

yang baik atau korelasi erat yang

menyatakan adanya hubungankonsentrasi dengan absorbsi.

y = 0,0266 +

0,03302 x


25/67


IISSSSNN::22008877--55004455

22

Ketelitian adalah ukuran yang

menunjukkan derajat kesesuaian antara

hasil uji individual yang diukur melalui

penyebaran hasil individual dan rata-rata

jika prosedur diterapkan secara berulang-ulang. Ketelitian diukur sebagai standar

deviasi dan koefisien variasi dari masing-

masing pengukuran. Untuk pengukurankadar Ca dalam sampel kering ikan teri

diperoleh SD = 0,021 dan KV = 0,28 %;

ikan beledang diperoleh SD = 0,460 dan

KV = 5,64 %; ikan sepat diperoleh SD =0,827 dan KV = 4,32 %; ikan bilih

diperoleh SD = 0,134 dan KV = 0,97 %.

KESIMPULAN

Berdasarkan hasil penelitian yang

telah dilakukan dapat diambil kesimpulan: Bahwa kadar kalsium yang terdapat

pada ikan kering air laut yaitu ikan teri

adalah 7,565 mg/g ( 756,5 mg/100g ),

ikan beledang 8,145 mg/g ( 814,5mg/100g ) dan kadar kalsium pada ikan

kering air tawar yaitu ikan sepat = 19,155

mg/g ( 1915,5 mg/100g ) dan ikan bilih =

13,775mg/g ( 1377,5 mg/100g). Hasil inimenunjukkan bahwa ikan kering

merupakan sumber kalsium yang baik.

DAFTAR PUSTAKA

Darmono, 1995, Logam Dalam Sistem

Biologi Makhluk Hidup, Penerbit

Universitas Indonesia (UI-Press),Jakarta.

Day, A.R, A.K, Underwood, 1996, AnalisisKimia Kuantitatif, Edisi Kelima,

diterjemahkan oleh AleysiusHandayana Pujaatmaka, Erlangga,Jakarta.

Depkes RI, 1995, Farmakope Indonesia,Edisi IV, Jakarta.

Haswel, S.I, 1991, Atomic AbsorptionSpectrocopy, Theory Design andApplication Elserver, New York.

H.d. Belitz. W. Grosch, 1981, Food

Chemistry, Springer-Verlog BerlinHeidenberg, Printed In Jermany.

Helrich, k. 1990, Official Methods of

Analysis, 15 th ed, volume 1, USA.

Mutschler, E, 1991, Dinamika Obat, Edisi

kelima, diterjemahkan Oleh M.B.Widianto dan A.S. Ranti, PenerbitITB, Bandung.

Rivai. H. 1995, Asas Pemeriksaan Kimia,Universitas Indonesia (UI-Press),Jakarta.

Robert, K, Muray, 1990, Biokimia, HarpersReview of Brochemestry, Edisi 20,Penerbit Buku Kedokteram EGC,

Jakarta.

Slavin, M, 1986, Atomic Absorption

Spectroscopy, ChemistryDepartemen Brookhaven NationalLaborator,New York.

Winarno, F.G, 1997, Kimia Pangan dan Gizi,PT. Gramedia Pustaka Utama,

Jakarta.


26/67


IISSSSNN::22008877--55004455

23

PERBANDINGAN AKTIVITAS ANTIBAKTERI EKSTRAK ETANOL

BAWANG PUTIH (Allium sativum L.)DAN LENGKUAS MERAH

(Alpinia purpurata K.Schum)TERHADAP MIKROBA PENYAKIT

KULIT

Emma Susanti,Musyirna Rahmah, Sumiati RahmanSekolah Tinggi Ilmu Farmasi Riau Pekanbaru

Abstract

The comparison of antimicrobial activity of garlic ethanolic extract (Allium sativumL.) and

red galangal ethanolic extract (Alpinia purpurataK. Schum) on microbial of skin disease has beenstudied. Antimicrobial activity test was done by agar diffusion method by measuring the inhibitiondiameter produced. Microbial samples used were microbes that were isolated from patients with

skin disease of tinea versicolor, ringworm and ulcer. Microbial Identification was performed byGram staining for bacteria. The isolation results showed that skin disease of tinea versicolor,ringworm and ulcer were known having Gram-negative bacteria and Gram-positive bacteria such

as coccus and bacillus shape. The test results showed that ethanol extract of garlic and ethanolextract of red galangal had medium antimicrobial activity, because it had 10-19 mm inhibition

diameter. The results showed significant difference between both of them in antimicrobial activityon every microbial sample because (P


27/67


IISSSSNN::22008877--55004455

24

metanol rimpang lengkuas pada beberapaspesies bakteri dan jamur. Lengkuas merahmengandung senyawa minyak atsiri,

galangin, kaemferid, kuersetin dan eugenolyang menyebabkan perusakan permeabilitasmembran sel (Haraguchi et al, 1996).

Lengkuas merah memiliki serat yang kasardan beraroma khas, sifatnya yang panas

dapat digunakan sebagai obat luar untukmengatasi penyakit kulit seperti panu, kurap,kudis, eksim dan borok (Soewito, 1989;

Wibisana, 1991 dan Sinaga, 2000). Penelitianmenggunakan minyak atsiri lengkuas merahpada konsentrasi 100 ppm dan 1000 ppm

aktif menghambat pertumbuhan bakteriEscherichia coli dan Staphylococcus aureusdengan diameter sebesar 7 mm dan 9 mm

(Parwata dan Dewi, 2008).

Kulit merupakan salah satu pancaindera manusia yang terletak dipermukaan

tubuh sehingga kulit merupakan organpertama yang terkena pengaruh tidakmenguntungkan dari lingkungan dan kulit

juga cenderung mengandungmikroorganisme sementara. Gangguan kulityang dapat meningkat menjadi penyakit kulit

akan sangat mengganggu bagi seseorang.Oleh sebab itu, gangguan dan penyakit kulit

tersebut harus segera diobati. Untukmengobati berbagai gangguan dan penyakitkulit tersebut dapat dilakukan denganmembuat ramuan tradisional dari bahan-

bahan yang mudah ditemukan. (Santosa et al,2004 dan Jawetz, et al, 1996).

Tujuan dari penelitian ini adalah

untuk mengisolasi bakteri dan jamur daripenderita penyakit kulit panu, kurap danbisul dan mengetahui morfologi dan

klasifikasi Gram dari isolat bakteri. Menguji

dan membandingkan aktivitas antimikrobadari ekstrak etanol bawang putih dan

lengkuas merah terhadap bakteri dan jamurhasil isolasi. Untuk mengetahui ekstrak mana

yang memiliki aktifitas terbesar dalammenghambat pertumbuhan mikroba, denganmetoda difusi agar. Mikroba yang digunakan

adalah mikroba yang diisolasi langsung daripenderita penyakit kulit panu, kurap danbisul.

METODE PENELITIAN

Alat dan Bahan

Alat alat yang digunakan adalah

Rotary evaporator (Buchi), timbangananalitik, autoklaf (Napco), hot plate,Spektrofotometer UV-Vis, Inkubator, oven,

cawan Petri, pipet mikro, tabung reaksi,erlemeyer, gelas piala, batang pengaduk,

gelas ukur, pinset, lampu spiritus, jarum Ose,kertas cakram, pipet tetes dan jangka sorong.Sedangkan bahan yang digunakan dalam

penelitian ini adalah etanol 70%, aquadest,NaCl 0,9%, bahan baku pembandingketokonazol untuk jamur dan kloramfenikol

untuk bakteri, dan media Nutrient Agar (NA)(Merck), media Sabouraud Dekstrosa Agar(SDA) (Merck ). Mikroba yang digunakan

dalam penelitian ini adalah mikroba yangdiisolasi langsung dari penderita penyakitkulit panu, kurap dan bisul. Mikroba yang

diperoleh diidentifikasi dengan pewarnaanGram dan Larutan KOH 20%.

Prosedur Kerja

Pembuatan Sampel

Bawang putih dan lengkuas merah

masing masing sebanyak 1 kg, dikupas dan

dibersihkan, kemudian dirajang. Sampeldimaserasi dengan pelarut etanol 70 %

selama 5 hari. Kemudian pelarutnyadiuapkan secara vakum sehingga diperolehekstrak kental 15,28 g (bawang putih) dan

14,67 g ( lengkuas merah)

Isolasi Dan Pemurnian Dan Identifikasi

Mikroba

Pada penyakit kulit bisul, nanah yang

keluar dikumpulkan dengan menggunakanSwab dan pada penyakit kulit panu dan kurapdikerok menggunakan spatel steril kemudian

ditanam pada media NA dan SDA kemudiandiinkubasi dalam inkubator selama 1-3minggu pada suhu 24-30C untuk

pembenihan SDA dan diinkubasi selama 24-48 jam pada suhu 35-37oC untuk pembenihanNA.

Setiap mikroorganisme yang tumbuhakan tampak berkoloni setelah diinkubasi,

kemudian dipisahkan kedalam medium agarlain dengan bantuan jarum Ose secara


28/67


IISSSSNN::22008877--55004455

25

aseptis, kemudian. Pemindahan ini dilakukansecara berulang-ulang sampai diperoleh isolatmurni. mikroba dilakukan secara

organoleptis dengan mengamati bentukkoloni yang terbentuk, warna, tepi koloni,dan bentuk permukaan koloni. Pengamatan

secara mikroskopis yaitu dengan melihatmorfologi sel mikroorganisme tersebut

setelah pewarnaan Gram

Pengujian Aktivitas Antimikroba

a. Pembuatan suspensi mikroba uji

Koloni mikroba uji disuspensikandalam NaCl fisiologis. Suspensi

mikroba diukur menggunakanspektrofotometer UV-Vis dengantransmitan 25% pada panjang

gelombang 580 nm untuk bakteri dantransmitan 90% pada panjanggelombang 530 nm untuk jamur.

b. Penentuan aktivitas antimikroba

dengan metoda difusi agarPipet 1 mL suspensi mikroba ujikemudian masukkan ke dalam tabung

reaksi yang berisi 10 mL media NA

(500C) untuk bakteri, dan media SDA(500C) untuk jamur, dihomogenkan,kemudian media dituangkan kedalamcawan Petri dan dibiarkan memadat.

Larutan sampel dengan masing-

masing konsentrasi (64%, 32% , 16%, 8%,4%, 2 % dan 1% dipipet dengan pipet mikro10 L, dan diteteskan pada cakram. Cakram

ditanam pada cawan Petri, lalu diinkubasipada suhu 37oC selama 24 jam untuk bakteri

dan pada suhu 25o selama 72 jam untukjamur. Diamati hambatan pertumbuhanmikroba uji yang terjadi dan diukur diameter

hambatan pertumbuhan yang terbentukdengan jangka sorong. Etanol 70%digunakan sebagai kontrol negatif dan

Kontrol positif digunakan ketokonazol dankloramfenikol.


Mikroba uji yang digunakan dalampenelitian ini adalah mikroba yang diambil

langsung dari penderita penyakit kulit panu,kurap dan bisul. Dengan tujuan untuk

mengetahui bakteri dan jamur penyebab padapenyakit kulit ini.

Penyakit kulit panu, disebabkan olehjamurMalassezia furfur,penyakit kulit kurap

disebabkan oleh jamur Trichophyton rubrumdan pada penyakit kulit bisul disebabkan olehbakteri Staphylococcus aureus (Djuanda et

al, 2005), setelah dilakukan isolasi danidentifikasi mikroba dengan menggunakanpewarnaan Gram berdasarkan morfologinya

pada penyakit kulit panu, ditemukan bakteriGram negatif yang berbentuk coccus, padapenyakit kulit kurap ditemukan juga bakteri

Gram positif yang bernbentuk streptobasildan streptococcus dan pada penyakit kulitbisul juga ditemukan jamur yang memiliki

hifa panjang bercabang, yang dikelilingi olehspora yang berkelompok. Hal ini disebabkan

karena terjadi kontaminasi mikroba terhadappenyakit kulit ini.

Tabel 1. Hasil Isolasi Mikroba Penyakit Kulit Panu, Kurap dan Bisul

NoPenyakit

Kulit

Media Uji

NAGambar

1 PanuBakteri (P1) tersebut adalahbakteri Gram negatif yang

berbentuk coccus


29/67


IISSSSNN::22008877--55004455

26

2 Kurap

Bakteri (K2) bakteri Grampositif yang berbentuk

streptobasil

Bakteri (K3) adalah bakteriGram positif berbentuk

streptococcus

3 Bisul

Bakteri (B1) tersebut adalahbakteri Gram positif yang

berbentuk coccus

Bakteri (B3) adalah bakteri Gram

positif berbentuk

staphylococcus

Menurut literatur diameter hambatyang beraktivitas lemah adalah < 10 mm,diameter hambat yang beraktivitas sedang

10-19 mm, dan diameter hambat yangberaktivitas kuat > 20 mm (Sukandar, 1987).

Analisa data aktivitas antimikroba dilakukansecara statistik menggunakan analisa varian

(ANOVA) dua arah. Setelah dilakukan ujistatistik terdapat perbedaan yang nyata antaraekstrak bawang putih dan lengkuas merah

terhadap bakteri panu, kurap dan bisul padakonsentrasi 2%-64% karena (P0,05)

Tabel 2. Hasil Pengujian Aktivitas Antimikroba Ekstrak etanol bawang putih dan Ekstrak EtanolLengkuas Merah

No. Perlakuan

MikrobaUji

Hasil

Isolasi

Diameter daerah hambat rata-rata ( mm)

Konsentrasi

1.

1% 2% 4% 8% 16% 32% 64% K(+)

EkstrakEtanol

P1 6 6,8 7,6 9,3 10,2 11,3 12,7 26,4K2 6 6,6 7,7 9,9, 11,5 12 13,7 22,1


30/67


IISSSSNN::22008877--55004455

27

BawangPutih

K3 6 6,9 7,2 9,3 11,2 11,8 12,5 18,3

B1 6 7,1 8,2 9,2 10,1 11,6 13,6 20,6

B3 6 6,1 7,4 10,6 11,2 12,5 13,7 20,1

2. EkstrakEtanol

LengkuasMerah

P1 7,2 9,4 11,3 12,5 13,3 13,6 14,4 26,4

K2 6,5 9,1 10,3 11,3 12,1 13,4 14,2 22,5

K3 6,9 7,9 8,8 10,7 11,9 12,8 14,6 18,6B1 6,5 8,5 9,7 11,2 12,3 13,2 14,6 20,4

B3 6,8 7,9 9,2 10,6 12,2 13,6 15,2 20,3

Keterangan :

P1 : Hasil isolasi dari bakteri panu

K2 : Hasil isolasi dari bakteri kurap

K3 : Hasil isolasi dari bakteri kurap

B1 : Hasil isolasi dari bakteri bisulB3 : Hasil isolasi dari bakteri bisul

K+ : Kontrol positif (kloramfenikol)

Pengujian aktivitas antimikroba dariekstrak bawang putih dan ekstrak lengkuasmerah dikategorikan sedang ini kemungkinan

disebabkan oleh persentase zat aktifnya yangtidak terlalu besar dalam tanaman tersebut.Perbedaan aktivitas antimikroba dari ekstrak

bawang putih dan lengkuas merah terhadapbakteri dan jamur mungkin disebabkankarena perbedaan morfologi dan biokimia

dari bakteri dan jamur, dimana secaramorfologi dinding sel bakteri terdiri ataspeptidoglikan 60-100%, lipid 1-4% dan asam

teikoat untuk bakteri Gram positif,peptidoglikan 10-20% dan lipid 11-12%untuk bakteri Gram negatif. Sedangkan

morfologi dinding sel jamur terdiri atas kitindan selulosa. Perbedaan struktur dinding sel

jamur dan bakteri ini yang menyebabkanperbedaan diameter hambat. Disamping itu,adanya faktor-faktor yang mempengaruhi

dalam pengujian aktivitas di antranya adalah

kecepatan difusi dari zat yang berbeda-bedadan kecepatan mikroba tersebut merespon zat

aktif (Pelczar and Chan, 1988).

KESIMPULAN

1. Hasil isolasi mikroba menunjukkanpada penyakit kulit panu, kurap dan

bisul diketahui ada bakteri Grampositif dan bakteri Gram negatif

berbentuk coccus dan basil

2. Pengujian aktivitas antimikroba padaekstrak etanol bawang putih danlengkuas merah dikategorikan

mempunyai aktivitas sedang dalammenghambat mikroba penyakit kulitpanu, kurap dan bisul karena

mempunyai diameter hambat 10-19(mm)

1. Analisa data menggunakan ANOVA

dua arah memperlihatkan aktivitasantimikroba berbeda secara signifikanantara ekstrak lengkuas merah dan

bawang putih terhadap bakteri panu,kurap dan bisul pada konsentrasi 2%-

64% karena (P


31/67


IISSSSNN::22008877--55004455

28

Kelamin, Edisi ke-4, FakultasKedokteran Universitas Indonesia,Jakarta.

Haraguchi, H., Y. Kuwata, K. Inada, K.

Shingu, K. Miyahara, M. Nagao,and A. Yagi, 1996, Antifungal

Activity from Alpinia galanga and

The Competition for

Incorporation of UnsaturatedFatty Acids in Cell Growth,

Planta Medica62:308-313.

Handajani, N.S, 2008, Aktivitas ekstrakrimpang lengkuas (Alpinia Galanga)

terhadap pertumbuhan jamur

aspergillus spp. penghasil aflatoksindan Fusarium Moniliforme,Biodiversitas Vol.9, nomor 3, hal161-164.

Kustanto, W. K., 2003, Aktivitas antifungibawang putih (Allium sativum Linn)terhadap Candida albicans secara in

Vitro. http://litbang.depkes.go.id.Badan Litbang Kesehatan. Diaksespada tanggal 12 Januari 2010.

Lingga, M. E dan M. M. Rustama, 2010, UjiAktivitas Antbakteri dari Ekstrak Air

dan Ekstrak Etanol Bawang putih

(Allium sativum L.) TerhadapBakteri Gram Positif dan Gram

Negatif yang Diisolasi dari Udang

Dogol Metapenaeus monoceros),

Udang Lobster (Panulirus Sp) dan

Udang Rebon (Mysis dan Aecetes),http://www.docstoc.com, Skripsi:

Universitas Padjajaran, Sumedang,Diakses pada tanggal 7 Agustus

2010.

Pelczar, M.J. and E.C.S. Chan, 1988, Dasar-dasar Mikrobiologi, Diterjemahkanoleh R.H. Oetome, dkk, Penerbit UI

Press, Jakarta.

Sukandar E.Y., 1987, Isolasi Antibiotika

Antifungi dari Streptomyces

Indosiensis ATCC 35859, DisertasiProgram Doktor, ITB, Bandung.

Soewito, D.S., 1989, Jaga Raga(Memanfaatkan Khasiat Flora),Percetakan Stella Mars, Jakarta.

Soedibyo, M.B.R.A, 1998, Alam SumberKesehatan Manfaat dan Kegunaan,

Cetakan pertama, Penerbit BalaiPustaka, Jakarta.

Sinaga, E, 2000. Botani Lengkuas merah(Alpinia purpurata K.Schum). PusatPenelitian dan Pengembangan

Tumbuhan Obat UNAS/P3TOUNAS. http;//iptek.apjii.or.id.Diakses pada tanggal 16 Januari

2010.

Santosa, D., dan Gunawan, D., 2004,Ramuan Tradisional untuk Penyakit

Kulit, Penebar Swadaya, Jakarta.

Suharti, S, 2004, Kajian Antibakteri

Temulawak, Jahe, dan Bawang putih

terhadap bakteri Salmonella

Tiphymurium serta Pengaruh

bawang putih terhadap Performans

dan Respon Imun Ayam Pedaging,http://irrc.ipb.ac.id. Skripsi: Institut

Pertanian Bogor. Diakses pada

tanggal 05 Februari 2010.

Wibisana, W., Farouq dan Muhastiningsih,1991, Pemanfaatan Tanaman ObatUntuk Kesehatan Keluarga,

Departemen Kesehatan R.I, Jakarta.

Yuharmen, Y., Y. Eryanti, dan Nurbalatif,2002, Uji Aktivitas Antimikroba

Minyak Atsiri dan Ekstrak MetanolLengkuas (Alpinia galanga).Jurnal

Nature Indonesia,4 (2): 178-183.


32/67


IISSSSNN::22008877--55004455

29

PENGARUH PEMBERIAN RUTIN DAN KUERSETIN TERHADAP

KESTABILAN PIGMEN ANTOSIANIN DARI KELOPAK BUNGA

ROSELLA

(Hibiscus sabdariffa L.)

Musyirna Rahmah Nasution1, Deddy Permana2, Mirwan Arif11Sekolah Tinggi Ilmu Farmasi Riau, 2Universitas Andalas

Abstract

Effect of Quercetin and Rutin induced the stability of Petal anthocyanin pigment

of roselle (Hibiscus sabdariffa L.) has been studied. Concentration of copigment are 1

mg/mL, 0.5 mg/mL and 0.25 mg/mL. Research was conducted using UV-Visspectrophotometry. The results showed that the addition of routine and quercetin

copigmen on concentration of 1 mg/mL, 0.5 mg/mL and 0.25 mg/mL can stabilize the

pigment anthocyanin petal roselle (Hibiscus sabdariffa L.) significantly (P


33/67


IISSSSNN::22008877--55004455

30

Bahan-bahan yang digunakan untukproses ekstraksi adalah kelopak bunga rosella

(Hibiscus sabdariffa) yang telah dikeringkan,aquades, kalium klorida, natrium asetat ,asam klorida 10 N, rutin, kuersetin, metanol

destilasi.

Identifikasi sampel

Identifikasi sampel (Hibiscussabdariffa L.) dilakukan di LaboratoriumBiologi Fakultas Matematika dan Ilmu

Pengetahuan Alam Universitas Riau.

Penyiapan sampel

1 kg sampel segar yang masih utuh

dengan bijinya disortir, kelopaknyadipisahkan dari bijinya. Kemudiankelopaknya dipisahkan menjadi 2 bagian

sama banyak, kemudian dikeringkan.Pengeringan dilakukan dengan dua cara yaitu

dengan cahaya matahari langsung dan oven.Sampel yang sudah kering dihaluskan denganmesin penggiling (Depkes RI, 1985). Sampel

ditimbang masing-masing 250 mg dan

dipanaskan dengan water batch dalam 5 mlaquadest sehingga didapatkan filtratnya. Sisa

sampel disimpan untuk persiapan ujiselanjutnya.

Evaluasi antosianin secara

spektrofotometer UV-Vis

Analisa antosianin secara

spektrofotometer UV-Vis denganpengukuran pada 2 panjang gelombang yaitu

510 nm dan 700 nm dengan pH 1dan pH 4,5(A.O.A.C, 2005).

Pembuatan dapar potassium klorida ph1.0

1,490 gram KCl dilarutkan denganaquadest dalam beker hingga 100 ml.

Siapkan HCl dilusi 0,2 N denganmemasukkan 2 ml HCl 10 N dengan pipet

volume ke dalam beker 100 ml yang berisiaquadest sepertiganya dan cukupkan hingga100 ml dengan aquadest. Campurkan 25 ml

larutan KCl dan 67 ml HCl dilusi 0,2 N, aturpH sampai 1,0.

Pembuatan dapar sodium asetat pH 4.5

1,640 gram CH3COONa 3H2Odilarutkan dengan aquadest dalam beker

hingga 100 ml. Atur pH menjadi 4,5 denganpenambahan HCl 0,2 N jika diperlukan.

Pengukuran antosianin dengan

spektrofotometer UV-Vis

Sampel dipipet 150 L denganmenggunakan pipet mikro dan ad kan dengan

aquadest sampai volume 1 mL. Kemudiantambahkan 4 mL dapar pH 1. Perlakuanyang sama juga dilakukan untuk dapar pH

4,5. Ukur absorban masing-masing sampelpada panjang gelombang 510 nm dan pada700 nm.

Jumlahkan absorban dari dilusisampel dengan cara di bawah ini :

A = (A510nm A700nm) pH 1.0 (A510nm A-700nm) pH 4.5

Sedangkan antosianin total padasampel didapatkan dengan menggunakan

rumus dibawah ini :Jumlah pigmen antosianin (mg/L) = (A xMW x DF x 1000)/( x 1)

Dimana :A = (A510nm A700nm)pH 1.0 (A510nm A-

700nm)pH 4.5

MW = Berat molekul (449,2 g/mol)DF = Faktor Dilusi

l = tebal kuvet (cm) = 26900 (l/mol cm)

Pengujian stabilitas pigmen antosianin

dengan penambahan copigmen rutin dan

kuersetin

Simplisia yang mempunyaikandungan antosianin yang paling tinggi

akan didapatkan setelah dilakukanpengukuran dengan menggunakan


34/67


IISSSSNN::22008877--55004455

31

spektrofotometer-UV. Sampel tersebutdilanjutkan dengan penambahan senyawarutin dan kuersetin untuk melihat

stabilitasnya.

Sampel kering yang mengandung

kadar antosianin yang tinggi tersebut diekstraksi menggunakan aquadest. 1,25 gram

dipanaskan dalam 25 mL aquadest denganperbandingan 1:20 pada suhu 600C selama 60menit, saring kedalam labu ukur dan

cukupkan dengan aquadest hingga volume 25mL (Chumsri, et al ). Dilakukan perlakuantersebut untuk mendapatkan 7 sampel uji

yang masing-masing 1 sampel sebagaikontrol, 3 sampel ditambahkan rutin dengankonsentasi 1 mg/mL, 0,5 mg/mL, 0,25

mg/mL, dan 3 sampel lainnya ditambahkankuersetin dengan konsentrasi yang samadengan rutin. Pengukuran stabilitas dilakukan

pada hari ke 0, hari 1, hari ke 3, 5, 7, 14, 21,dan 30 dengan perlakuan yang sama sepertipengukuran total antosianin. Sampel

disimpan di tempat gelap.


Pengumpulan dan ekstraksi kelopak

bunga rosella (hibiscus sabdariffa l.).

Sampel segar kelopak bunga roselladiperoleh dari pasar Dupa Pekanbaru, Riau.Pengeringan dilakukan dengan 2 cara

pengeringan yaitu dengan oven dan rumahkaca. Dari 1 kg sampel segar yang masihutuh dengan bijinya, didapatkan 500 g

kelopak yang sudah dipisahkan denganbijinya, setelah dikeringkan didapatkansampel kering 70 g, berat simplisia 14% dari

sampel segar.

Sampel kering kemudian dihaluskan

dengan mesin penggiling (grinder).Penghalusan sampel bertujuan untuk

memperluas permukaan dari sampel sehinggazat aktif yang terkandung di dalam sampellebih mudah tersari oleh pelarut yang

digunakan. Metoda ekstraksi adalah denganmetoda pemanasan. Metoda ini digunakankarena pengerjaannya mudah dan tidak

membutuhkan waktu yang lama. Pemanasandilakukan dengan water batch yang memilikipengatur suhu dengan tujuan agar suhu dapat

terkontrol dengan baik. Pelarut yang

digunakan untuk pemanasan adalah aquadest.Pemilihan aquadest sebagai pelarut karenadapat melarutkan senyawa-senyawa yang

terkandung didalamnya dan harga yangrelatif murah. Pemanasan dilakukan padasuhu 600 C selama 60 menit. Dengan

pemanasan pada suhu dan waktu tersebutagar senyawa-senyawa yang terkandung

didalamnya tidak mengalami kerusakan ataudegradasi.

Pengukuran absorban dan perhitungan

antosianin total dengan pengeringan

dengan oven dan rumah kaca.

Untuk pengukuran antosianin totaldengan pengeringan oven dan rumah kaca,

digunakan sampel kering yang telahdihaluskan. Sampel kering yang telahdihaluskan ditimbang 0,250 mg dan

dipanaskan dalam 5 mL aquadest, kemudiandisaring sehingga didapatkan filtratnya.

Kemudian diukur absorbannya dan dihitungkadarnya. Kadar yang diperoleh denganpengeringan di oven adalah 31,50 mg/g

sampel, sedangkan dengan pengeringan

rumah kaca adalah 32,02 mg/g sampel. Halini menunjukkan bahwa proses pengeringan

berpengaruh terhadap kadar antosianin yangterkandung dalam simplisia tersebut.

Pengukuran absorban dan uji stabilitaspigmen antosianin kelopak bunga rosella

dengan penambahan copigmen rutin dan

kuersetin

Untuk uji stabilitas pigmenantosianin kelopak bunga rosella dengan

penambahan copigmen rutin dan aglikonnyakuersetin, digunakan sampel kering yangtelah dikeringkan di rumah kaca. Sampel

yang telah dihaluskan ditimbang 1,25 gsampel dan dipanaskan dalam 25 mLaquadest pada suhu 600C selama 60 menit.

Dari hasil perhitungan didapatkanbahwa antosianin kontrol mengalami

penurunan kadar yang sangat signifikan. Hal


35/67


IISSSSNN::22008877--55004455

32

ini menunjukkan bahwa antosianin tanpadiberikan apa-apa sangat tidak stabil (Tabel1). Secara umum, dapat dilihat bahwa

penambahan copigmen dapat menstabilkan

pigmen antosianin kelopak bunga rosella, inimenunjukkan bahwa senyawa golonganflavonol dapat menstabilkan pigmen

antosianin (Rein, 2005)

Tabel 1. Kadar Antosianin Kelopak Bunga Rosella (Hibiscus sabdariffa L.) (mg/g

simplisia)

Perlakuan Kadar antosianin kelopak bunga rosella (mg/g simplisia) hari ke-

0 1 3 5 7 14 21 30

Kontrol

Rutin 1 mg/ml

Rutin 0,5 mg/ml

Rutin 0,25 mg/ml

Kuersetin 1 mg/ml

Kuersetin 0,5 mg/ml

Kuersetin 0,25mg/ml

31,98

24,88

26,56

29,99

28,75

29,03

25,79

31,35

24,34

25,11

28,92

27,79

28,39

23,98

28,77

23,63

24,38

27,42

26,92

28,02

23,08

26,24

21,96

23,01

26,08

25,19

25,55

21,55

25,24

26,20

29,77

32,03

31,89

33,20

27,25

21,83

23,58

23,25

30,16

28,60

28,66

23,56

16,43

19,89

17,78

27,83

26,13

28,27

21,39

15,64

18,35

16,43

21,78

23,34

22,70

18,37

Senyawa flavonol yang digunakan

adalah rutin (glikosida) dan kuersetin (nonglikosida). Dari hasil perhitungan terlihatbahwa penambahan glikosida dan nonglikosida dapat mempertahankan stabilitas

antosianin dengan kemampuan yang berbeda.Flavonol dalam bentuk non glikosidamemiliki kemampuan mempertahankan

pigmen antosianin yang lebih kuatdibandingkan dalam bentuk glikosidanya

karena senyawa dalam bentuk gula dapatmenurunkan stabilitas pigmen antosianin(Krifi et al. 2000).

Pada perhitungan kadar antosianin(Tabel 1), pada hari ke-0 terlihat kadar yang

bervariasi, hal ini disebabkan karena faktorpenambahan copigmen dan faktorpenyaringan setelah pemanasan serta faktor

pengenceran. Kontrol dan penambahancopigmen mengalami penurunan yangkonstan dari hari ke-0 hingga seterusnya.

Namun pada hari ke-7 kadar antosianin yangditambahankan copigmen naik, tetapi padahari selanjutnya tetap mengalami penurunan

hingga perhitungan hari ke-30. Hal inimenjadi salah satu permasalahan yang belum

bisa dipecahkan oleh penulis dan dapat

dijadikan sebagai bahan penelitian untukpeneliti berikutnya.

Penambahan rutin dan kuersetin

dengan berbagai konsentrasi yaitu 1 mg/mL,0,5 mg/mL dan 0,25 mg/mL. Dari hasilperhitungan terlihat bahwa konsentrasi juga

mempengaruhi stabilitas pigmen antosianin,perbandingan tersebut memberikan proteksi

yang bervariasi terhadap pigmen antosianin.Hasil statistik secara umum menunjukkanbahwa penambahan copigmen rutin dan

kuersetin dengan berbagai perbandinganberbeda nyata terhadap kontrol denganP


36/67


IISSSSNN::22008877--55004455

33

KESIMPULAN

1. Rutin dan kuersetin dapat

menstabilkan pigmen antosianinkelopak bunga rosella (Hibiscussabdariffa L.)

2.

Copigmen dalam bentuk aglikonmemberikan proteksi yang lebih

tinggi daripada bentuk glikosidanyadalam menstabilkan pigmenantosianin kelopak bunga rosella

(Hibiscus sabdariffa L.), konsentrasiterbaik dalam menstabilkan pigmenantosianin adalah kuersetin dengan

konsentrasi 1 mg/mL.

DAFTAR PUSTAKA

A.O.A.C., 2005, Official Method 2005.02

Total Monomeric AnthocyaninPigmen Content of Fruit Juices,Beverages, Natural Colorants, and

Wines.,J AOACInt 88.12692

Chumsri, P, Anchalee Sirichote andArunporn Itharat., 2007, Studies onthe optimum condition for the

extraction and concentration of

roselle ( Hibiscus sabdariffa Linn.)extract., Songklanakarin J.Sci.

Technol. 30 (Suppl.1), 133-139

Depkes RI, 1985, Cara Pembuatan Simplissa

yang Baik, Direktorat Jendral Obatdan Makanan

Hendry, 1996, Natural Food Colorants.,Blackie Academic & Proffesional,London

Harborne, J.B., 1967, ComparativeBiochemistry of Flavonoids.,

Academic Press, London and NewYork

Kim, C.J., Chung, M and Chi.Y.H., 1982,Pharmacological Activities of

Flavonoids Relationship of ChemicalStructur of Flavonoids and TheirInhibitor Activity of

Hipersensitivities, J. Pharm CungAng., 345, 348-364

Krifi B, Chouteau F, Boudrant J and MetcheM., 2000, Degradation ofAnthocyanins from Blood Orange

Juices,Int J Food Sci Techn, 35:275-283

Markakis P., 1982, Stability of Anthocyaninsin Foods. In: Anthocyanins as food

Colors, Markakis P (ed.), AcademicPress Inc, New York,p.163-178

Mazza G and Brouillard R., 1987, RecentDevelopments in the Stabilization ofAnthocyanins in Food Products,Food Chem, 25:207-225

Mahadevan., Shivali and Kamboj, P., 2008,

Hibiscus sabdariffa Linn.-Anoverview, Department ofPharmacognosy, Punjab, India

Rein, M., 2005, Copigmentation reaction andcolor stability of berry anthocyanins,

Disertasi, Department of AppliedChemistry and Microbiology,

University of Helsinki


37/67


IISSSSNN::22008877--55004455

34

UJI EFEK ANALGETIK HERBA SURUHAN (Peperomia Pellucida)

PADA MENCIT PUTIH BETINA

Dwi Mulyani

Akademi Farmasi Dwi Farma Bukittinggi

Abstract

A Study has been conducted to investigating the analgesic effect of Suruhan Herba(Peperomia pellucida) on female albino mice. Pain on mice was induced by injectioning 1%v/v

sterile acetic acid at a dose of 300 mg/kg body weight via the intra peritoneal route. Theinvestigation was done using 30%, 45%, and 60% Peperomia pellucidaextract. From the research,it was found that the percentage of analgesic activity of 30%, 45%, and 60% of Peperomia

pellucida extract were: 10.58%, 44.92% and 56.8%.The t test showed that t count>t table at a

concentration of 60%. So statistically the 60% Peperomia pellucida extract can be inferredefficacious analgesic on female albino mice.

Keywords: Peperomia pellucida, analgesic activity

PENDAHULUAN

Setiap manusia dapat mengalami

nyeri, yang merupakan suatu gejala adanyagangguan pada tubuh. Untuk mengat

jurnal scientia vol 1, no 2

Documents